Name: Próżniowo uszczelnione zanurzenie w gorącej wodzie do przygotowania anatomicznych i chirurgicznych modeli kości zwłok (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-12-02T14:50:00.000+00:00
Duration: 4 min 36 s
Description: Poznaj metodę próżniowo uszczelnionego zanurzenia w gorącej wodzie do przygotowania anatomicznych modeli kostnych ze zwłok. Technika ta umożliwia tworzenie dokładnych, higienicznych i niskokosztowych modeli do planowania operacji.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Kolce lędźwiowe zostały pobrane od 4-letnich dorosłych owiec rasy merynosów (Ovis aries) zgodnie z wytycznymi etycznymi Komisji ds. Opieki nad Zwierzętami i Etyki Laboratoriów Chirurgicznych i Ortopedycznych. Zgodnie z instytucjonalnie zatwierdzoną metodą humanitarnej eutanazji, kolce lędźwiowe zostały pobrane za pomocą ostrego narzędzia preparacyjnego, najpierw nacinając skórę i tkanki podskórne, a następnie powięź i mięśnie przed deartykulacją w obrębie połączenia piersiowo-lędźwiowego i lędźwiowo-krzyżowego. Pobrana próbka jest pokazana w <silna klasa="xfig">Rysunek 1A.
1. Przygotowanie do wstępnej kąpieli
<ol>
	<li>Ręcznie usuń tkankę miękką (mięśnie, tkankę łączną, tłuszcz itp.) za pomocą ostrego narzędzia do preparowania (ostrze skalpela numer 22) z próbki kości przed dalszym przetwarzaniem. 
	UWAGA: Ten krok jest opcjonalny; Jednak usunięcie jak największej ilości tkanek miękkich skraca czas maceracji tkanek w kąpieli wodnej. Rozmiar próbki (~20 cm x 10 cm x 8 cm) jest również zmniejszony; Dzięki temu do wanny można włożyć więcej próbek.</li>
	<li>Po usunięciu powietrza zamknąć próbkę w szczelnej plastikowej torbie odpornej na wysoką temperaturę. Zaleca się używanie worka próżniowego przy użyciu komercyjnego urządzenia do zgrzewania próżniowego (patrz Tabela materiałów). 
	UWAGA: Do początkowej 24 godzinnej kąpieli nie są wymagane żadne dodatki. Jeśli wszystkie powierzchnie kości pokryte są znacznymi mięśniami, a tkanka miękka jest już minimalna, a większość powierzchni kostnych próbki jest odsłonięta, przejdź do kroku 3.2 (<silna klasa="xfig">Rysunek 1B).</li>
</ol>
2. Procedura wstępnej kąpieli
<ol>
	<li>Całkowicie zanurzyć zapieczętowaną próbkę w łaźni wodnej o temperaturze 70 °C na 24 godziny.</li>
	<li>Po 24 godzinach wyjąć worek z kąpieli, otworzyć worek i pozostawić próbkę do ostygnięcia do momentu, gdy będzie można z nią obchodzić.</li>
</ol>
3. Przygotowanie do kolejnych kąpieli
<ol>
	<li>Usuń jak najwięcej tkanki miękkiej z kości za pomocą ostrego skalpela i bieżącej wody, jeśli to konieczne.</li>
	<li>Usuń wszystkie stawy za pomocą ostrego skalpela, aby odsłonić tkankę chrzęstną.
	<ol>
		<li>Utrzymuj rozczłonkowane elementy na miejscu za pomocą materiału, takiego jak drut ortopedyczny lub opaski kablowe (patrz Tabela materiałów), aby utrzymać pozycję anatomiczną.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Zamknij próbkę w worku próżniowym wraz z 10 ml płynu do mycia naczyń (patrz tabela materiałów) i 10 ml wody z kranu. 
	UWAGA: Objętość detergentu zależy od mocy, stężenia i wielkości próbki.</li>
</ol>
4. Procedura dla kolejnych kąpieli
<ol>
	<li>Całkowicie zanurzyć zapieczętowaną próbkę w łaźni wodnej o temperaturze 70 °C na 24 godziny.</li>
	<li>Po 24 godzinach wyjąć worek z kąpieli, otworzyć worek i pozostawić próbkę do ostygnięcia do momentu, gdy będzie można z nią obchodzić.
	<ol>
		<li>Nie dopuścić do całkowitego ostygnięcia próbki, ponieważ pozwala to zmiękczonej chrząstce stwardnieć i przylgnąć do kości, co staje się trudniejsze do usunięcia. 
		UWAGA: Czas potrzebny na przetworzenie próbki może się różnić w zależności od wielkości i rodzaju, a wielokrotne usuwanie kolejnych kąpieli może być niepotrzebne. Dodatkowo próbka może pozostawać w kąpieli przez dłuższy czas, co może pomóc w tymczasowym usunięciu tkanek.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Usuń jak najwięcej tkanki miękkiej za pomocą ostrego narzędzia do preparowania (ostrze skalpela nr 22 na dedykowanym uchwycie skalpela) i bieżącej wody.</li>
	<li>W razie potrzeby powtarzaj krok 4, aż kość będzie wolna od materiału tkanek miękkich. Z naszego doświadczenia wynika, że trzeba było to powtórzyć tylko raz.</li>
</ol>
5. Zakończenie procedury
<ol>
	<li>Umyj próbkę płynnym detergentem i dokładnie spłucz wodą. 
	UWAGA: Alkohol może być używany do przyspieszania suszenia.</li>
	<li>Pozostawić próbkę do wyschnięcia na około 48 godzin.</li>
</ol>

<ol><li>Leary, O. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+printed+anatomic+modeling+for+surgical+planning+and+real-time+operative+guidance+in+complex+primary+spinal+column+tumors%3A+single-center+experience+and+case+series%5BTitle%5D)+AND+%22World+Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional printed anatomic modeling for surgical planning and real-time operative guidance in complex primary spinal column tumors: single-center experience and case series.</a> World Neurosurgery. 145, 116-126 (2021).</li>
<li>Tack, P., Victor, J., Gemmel, P., Annemans, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D-printing+techniques+in+a+medical+setting%3A+a+systematic+literature+review%5BTitle%5D)+AND+%22BioMedical+Engineering+OnLine%22%5BJournal%5D)">3D-printing techniques in a medical setting: a systematic literature review.</a> BioMedical Engineering OnLine. 15 (1), 115(2016).</li>
<li>Ventola, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Medical+applications+for+3D+printing%3A+current+and+projected+uses%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacy+and+Therapeutics%22%5BJournal%5D)">Medical applications for 3D printing: current and projected uses.</a> Pharmacy and Therapeutics. 39 (10), 704-711 (2014).</li>
<li>Wilcox, B., Mobbs, R. J., Wu, A. M., Phan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+review+of+3D+printing+in+spinal+surgery%3A+the+current+state+of+play%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Spinal+Surgery%22%5BJournal%5D)">Systematic review of 3D printing in spinal surgery: the current state of play.</a> Journal of Spinal Surgery. 3 (3), 433-443 (2017).</li>
<li>Mairs, S., Swift, B., Rutty, G. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detergent%3A+an+alternative+approach+to+traditional+bone+cleaning+methods+for+forensic+practice%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Journal+of+Forensic+Medicine+and+Pathology%22%5BJournal%5D)">Detergent: an alternative approach to traditional bone cleaning methods for forensic practice.</a> The American Journal of Forensic Medicine and Pathology. 25 (4), 276-284 (2004).</li>
<li>Husch, C., Berner, M., Goldammer, H., Lichtscheidl-Schultz, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technical+note%3A+A+novel+method+for+gentle+and+non-destructive+removal+of+flesh+from+bones%5BTitle%5D)+AND+%22Forensic+Science+International%22%5BJournal%5D)">Technical note: A novel method for gentle and non-destructive removal of flesh from bones.</a> Forensic Science International. 323, 110778(2021).</li>
<li>Couse, T., Connor, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+maceration+techniques+for+use+in+forensic+skeletal+preparations%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Forensic+Investigation%22%5BJournal%5D)">A comparison of maceration techniques for use in forensic skeletal preparations.</a> Journal of Forensic Investigation. 3, 1-6 (2015).</li>
<li>Mahon, T. J., Maboke, N., Myburgh, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+different+detergents+in+skeletal+preparations%5BTitle%5D)+AND+%22Forensic+Science+International%22%5BJournal%5D)">The use of different detergents in skeletal preparations.</a> Forensic Science International. 327, 110967(2021).</li>
<li>Hussain, M., Hussain, N., Zainab, H., Qaiser, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skeletal+preservation+techniques+to+enhance+veterinary+anatomy+teaching%5BTitle%5D)+AND+%22IJAVMS%22%5BJournal%5D)">Skeletal preservation techniques to enhance veterinary anatomy teaching.</a> IJAVMS. 1, 21-23 (2007).</li>
<li>Simonsen, K. P., Rasmussen, A. R., Mathisen, P., Petersen, H., Borup, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fast+preparation+of+skeletal+materials+using+enzyme+maceration%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Forensic+Science%22%5BJournal%5D)">A fast preparation of skeletal materials using enzyme maceration.</a> Journal of Forensic Science. 56 (2), 480-484 (2011).</li>
<li>Burkhard, M., Furnstahl, P., Farshad, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensionally+printed+vertebrae+with+different+bone+densities+for+surgical+training%5BTitle%5D)+AND+%22European+Spine+Journal%22%5BJournal%5D)">Three-dimensionally printed vertebrae with different bone densities for surgical training.</a> European Spine Journal. 28 (4), 798-806 (2019).</li>
<li>Rose, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi-material+3D+models+for+temporal+bone+surgical+simulation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Annals+of+Otology%2C+Rhinology%2C+and+Laryngology%22%5BJournal%5D)">Multi-material 3D models for temporal bone surgical simulation.</a> The Annals of Otology, Rhinology, and Laryngology. 124 (7), 528-536 (2015).</li>
<li>Werz, S. M., Zeichner, S. J., Berg, B. I., Zeilhofer, H. F., Thieringer, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+printed+surgical+simulation+models+as+educational+tool+by+maxillofacial+surgeons%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Dental+Education%22%5BJournal%5D)">3D printed surgical simulation models as educational tool by maxillofacial surgeons.</a> European Journal of Dental Education. 22 (3), 500-505 (2018).</li>
</ol>

Autorzy muszą ujawnić.

Niniejsza uwaga techniczna ma na celu opisanie prostej, bezpiecznej i taniej metody wytwarzania anatomicznego modelu kości na potrzeby edukacji weterynaryjnej i medycznej oraz do wykorzystania w edukacji anatomicznej i planowaniu chirurgicznym. 
Testy pilotażowe wykazały, że temperatura kąpieli wynosząca 70 °C zapewnia najszybszy czas przetwarzania bez powodowania uszkodzeń próbek. Wyższe temperatury powodowały rozległy rozpad kolagenu w kości, w wyniku czego powstawały kruche próbki o kredowe...

Usuwanie tkanek miękkich i czyszczenie kości jest wymagane w kryminalistyce, badaniach medycznych i biologicznych oraz edukacji weterynaryjnej i medycznej. Większość technik została opracowana do celów kryminalistycznych, minimalizując uszkodzenia kości, aby zachować jak najwięcej szczegółów. Może to zapewnić dokładny, namacalny model kości do przedoperacyjnego planowania chirurgicznego, a także śródoperacyjnego podejmowania decyzji w celu zminimalizowania powikłań1,2,3. Jest to korzystne w chirurgii, ponieważ skraca czas operacji i utratę krwi oraz poprawia komunikację między chirurgami, w porównaniu z planowaniem za pomocą obrazów 2D4. Zastosowanie tych modeli może również zmniejszyć zależność od obrazowania śródoperacyjnego, takiego jak fluoroskopia, która może zmniejszyć narażenie personelu na promieniowanie.
Historycznie używano kości szkieletowych ze zwłok do tych modeli; jednak postęp technologiczny pchnął w kierunku korzystania z modeli produkowanych, a ostatnio także z modeli drukowanych w trzech wymiarach (3D). Modele kostne opierają się na dostępności próbek zwłok i wydajności przetwarzania tych próbek na użyteczne modele. Druk 3D ma tę zaletę, że daje swobodę twórczą, pozwalając na tworzenie modeli anatomicznych i specyficznych dla pacjenta, zwłaszcza gdy występują nieprawidłowości anatomiczne lub nowotwory, lub jeśli sprzęt musi zostać wyprodukowany lub rozszerzony, aby pasował do pacjenta1. Próbki te mogą być również sterylizowane i manipulowane przez chirurgów podczas zabiegu. Jednak ta swoboda wiąże się z kosztami, ponieważ wymaga skanów tomografii komputerowej (CT), wymagane materiały i sprzęt mogą być drogie, a wiedza specjalistyczna jest niezbędna do stworzenia modeli w wymaganym oprogramowaniu1,4. Ponadto czynniki te mogą ograniczać precyzję i jakość modelu, a tym samym planowanie chirurgiczne i sukces1. Modele drukowane w 3D mogą nie być najlepszym wyborem w przypadkach, gdy nie ma potrzeby wykonywania anatomii specyficznej dla pacjenta i gdy istnieje natychmiastowe zapotrzebowanie na model.
Powszechnie stosowane metody usuwania tkanek miękkich z kości zwłok obejmują ręczne czyszczenie, macerację bakteryjną, macerację chemiczną, gotowanie i macerację owadów5,6. Sukces tych metod zależy zazwyczaj od kosztów, czasu, pracy, sprzętu, bezpieczeństwa i jakości produktu końcowego5,7. Ręczne czyszczenie wymaga najwięcej pracy i znacznej ilości czasu, ale wymaga minimalnego sprzętu5. Maceracja bakteryjna polega na pozostawieniu próbki w zimnej lub ciepłej kąpieli wodnej na długi czas, często do 3 tygodni, co pozwala bakteriom na rozkład tkanki6. Powoduje to powstawanie nieprzyjemnych zapachów, wymaga dodatkowego sprzętu do usuwania bakterii i stwarza zagrożenie dla bezpieczeństwa biologicznego użytkownika5,6. Wykorzystanie chrząszczy dermestid jest bardzo skuteczne przy minimalnym nakładzie pracy, ale wymaga nabycia kolonii i hodowli zwierząt i nie jest uważane za inwestycję ekonomiczną, jeśli jest używane rzadko6,7. Maceracja chemiczna zwykle wiąże się z użyciem enzymów, takich jak trypsyna, pepsyna i papaina, lub komercyjnych detergentów zawierających substancje, takie jak środki powierzchniowo czynne i enzymy5,8. Chociaż ta metoda zapewnia szybsze wyniki, stosowane chemikalia, takie jak wodorotlenek sodu, amoniak, wybielacz i benzyna, mogą stanowić zagrożenie dla zdrowia i bezpieczeństwa oraz wytwarzać nieprzyjemne zapachy, które wymagają środków ochrony osobistej (PPE) i dygestoria class<sup="xref">5,7,8,9. Wreszcie, przedłużone ogrzewanie stanowi kolejną minimalnie intensywną metodę, ale może wytwarzać zapachy wymagające wentylacji10.
Prosta, bezpieczna i tania metoda przygotowania anatomicznych modeli kości dostarczyłaby użytecznego narzędzia dla chirurgów, studentów, nauczycieli i badaczy. W tym artykule opisano nowatorską metodę przygotowania modeli kości szkieletowych, która pozwala uniknąć nieprzyjemnych zapachów i szkodliwych substancji chemicznych oraz tworzy szczegółowy model chirurgiczny przy minimalnym sprzęcie i nakładzie pracy.

<table><tbody><tr><td>Drukarka 3D Dimension Elite</td><td>Stratasys, Eden Prairie, MN, Stany Zjednoczone</td><td></td><td>Drukarka 3D do produkcji chirurgicznych modeli kości na podstawie zrekonstruowanych tomografii komputerowej</td></tr><tr><td>Naśladuje pakiet Innovation Suite</td><td>Materialise NV, Leuven, Belgia</td><td>Suite 24 Oprogramowanie</td><td>do tworzenia modeli 3D na podstawie skanów obrazowych</td></tr><tr><td>Nylonowe opaski kablowe</td><td>4Cabling, Alexandria, Nowa Południowa Walia, Australia</td><td>011.060.1042/011.060.1039</td><td>Służy do utrzymywania połączenia między trzonami kręgów</td></tr><tr><td>Drut ortopedyczny</td><td>B Braun, Bella Vista, NSW, Australia</td><td></td><td>Służy do utrzymywania połączenia między trzonami kręgów</td></tr><tr><td>Aparatura do czyszczenia pomocniczego</td><td>Phoenix Analysis and Design Technologies, Tempe, AZ, Stany Zjednoczone</td><td>SCA-1200</td><td>Kąpiel w gorącej wodzie do zanurzenia zapieczętowanej próbki.</td></tr><tr><td>Ultra Strength Oryginalny płyn do mycia naczyń</td><td>Colgate-Palmolive, Nowy Jork, NY, Stany</td><td></td><td>Zjednoczone Płyn do mycia naczyń dodawany do szczelnie zamkniętej torby z próbką do czyszczenia modelu kości.</td></tr><tr><td>Worki próżniowe</td><td>Pacfood PTY LTD</td><td></td><td>Bezpieczne termicznie, zamykane worki foliowe</td></tr><tr><td>Zgrzewarka próżniowa do żywności</td><td>Tempoo (Aust) PTY LTD</td><td></td><td>Próżniowa zgrzewarka do żywności do zamykania worków próżniowych przed zanurzeniem w kąpieli</td></tr></tbody></table>

próżniowo uszczelnione zanurzenie w gorącej wodzie do przygotowania anatomicznych i chirurgicznych modeli kości zwłok

Vacuum-Sealed Hot Water Bath Immersion for the Preparation of Anatomical and Surgical Cadaveric Bone Models

Modele kostne służą wielu celom, w tym poprawie zrozumienia anatomii, przedoperacyjnemu planowaniu chirurgicznemu i śródoperacyjnym odniesieniom. Opisano kilka technik maceracji tkanek miękkich, głównie do analizy kryminalistycznej. W badaniach klinicznych i zastosowaniach medycznych metody te zostały zastąpione przez trójwymiarowe (3D) drukowane modele, które wymagają znacznego sprzętu i wiedzy specjalistycznej oraz są kosztowne. W tym przypadku kość kręgowa martwej owcy została oczyszczona poprzez próżniowe uszczelnienie próbki dostępnym w handlu płynem do mycia naczyń, zanurzenie w gorącej kąpieli wodnej, a następnie ręczne usunięcie tkanki miękkiej. Wyeliminowało to wady wcześniej istniejących metod maceracji, takie jak istnienie nieprzyjemnych zapachów, stosowanie niebezpiecznych chemikaliów, znaczny sprzęt i wysokie koszty. Opisana technika pozwoliła uzyskać czyste, suche próbki przy zachowaniu szczegółów anatomicznych i struktury w celu dokładnego modelowania struktur kostnych, które mogą być przydatne w planowaniu przedoperacyjnym i śródoperacyjnym odniesieniach. Metoda jest prosta, tania i skuteczna w przygotowywaniu modeli kostnych do celów edukacyjnych i planowania chirurgicznego w medycynie weterynaryjnej i ludzkiej.

Zgodnie z niniejszym protokołem przygotowano oczyszczone i wysuszone modele odcinka lędźwiowego kręgosłupa owczego do planowania chirurgicznego i celów referencyjnych. Próbki składające się z siedmiu kręgów lędźwiowych opracowano w ciągu 4 dni przy użyciu tej metody, stosując jedną kąpiel wstępną w celu usunięcia głównej masy mięśniowej oraz trzy kolejne kąpiele. O zakończeniu procesów kąpieli świadczyła łatwość usuwania chrząstek i tkanki łącznej z kości. Czas ten różnił się w zależności od rodzaju i lokalizacji chrząst...

Obecny protokół opisuje macerację i czyszczenie kości zwłok za pomocą techniki zanurzania w gorącej wodzie próżniowej. Jest to tania, bezpieczna i skuteczna metoda wytwarzania próbek anatomicznych do planowania chirurgicznego i edukacji medycznej jako alternatywa dla trójwymiarowych (3D) drukowanych modeli.

Próżniowo uszczelnione zanurzenie w gorącej wodzie do przygotowania anatomicznych i chirurgicznych modeli kości zwłok

Bone models serve many purposes, including improving anatomical understanding, preoperative surgical planning, and intraoperative referencing. Several ...

Metoda ta pozwala uzyskać dokładne anatomiczne modele kości, które przedstawiają rodzimą anatomię, co pomaga między innymi w prowadzeniu badaczy, klinicystów i chirurgów w zakresie podejścia chirurgicznego i umieszczania implantów. Metoda ta pozwala uzyskać czyste i higieniczne anatomiczne modele kości, co jest ważne, biorąc pod uwagę, że modele te znajdują się na przykład przy łóżku pacjenta lub na sali operacyjnej. W porównaniu z anatomicznymi modelami kości drukowanymi w 3D, nasze modele są tanie, bezpieczne i skuteczne w produkcji, a także w porównaniu z tymi modelami 3D, architektura kości i natywna anatomia są lepiej reprezentowane przez te chirurgiczne modele kości.Opisana technika polega na stworzeniu dokładnych anatomicznych modeli kości kręgosłupa, ale technikę tę można łatwo ekstrapolować na inne struktury kostne ciała. Metoda lepiej informuje chirurgów, badaczy i klinicystów o tym, jak planować i wykonywać techniki chirurgiczne, a także informuje ich o tym, jaka jest normalna anatomia kości, co pomoże im rozpoznać patologię. Technikę tę można jednak łatwo ekstrapolować na szereg innych struktur kostnych należących do wielu różnych gatunków.Aby rozpocząć, ręcznie usuń tkankę miękką, taką jak mięśnie, tkanka łączna, tłuszcz i tak dalej, za pomocą ostrego narzędzia do preparowania próbki kości, a po usunięciu powietrza zamknij próbkę w szczelnej plastikowej torbie odpornej na ciepło. Całkowicie zanurz szczelnie zamkniętą próbkę w łaźni wodnej o temperaturze 70 stopni Celsjusza na 24 godziny, a następnie wyjmij worek z kąpieli, otwórz worek i pozwól próbce ostygnąć do momentu, gdy będzie można z nią obchodzić. Usuń jak najwięcej tkanki miękkiej z kości za pomocą ostrego skalpela i bieżącej wody, jeśli to konieczne.Aby rozdzielić stawy w celu odsłonięcia tkanki chrzęstnej, utrzymuj rozczłonkowane części na miejscu, używając materiałów takich jak drut ortopedyczny lub opaski kablowe, aby utrzymać anatomiczną pozycję. Zamknij próbkę w worku próżniowym wraz z 10 mililitrami płynu do mycia naczyń i 10 mililitrami wody z kranu i zanurz zapieczętowaną próbkę w łaźni wodnej o temperaturze 70 stopni Celsjusza na 24 godziny. Po wyjęciu worka z kąpieli powtórz czynności pokazane wcześniej, aby usunąć jak najwięcej tkanki miękkiej, aż kość będzie wolna od materiału tkanek miękkich.Na koniec pozostawić próbkę do wyschnięcia na około 48 godzin. Przedstawiono tutaj jakościowe porównanie modeli kości wydrukowanych w 3D i modeli kości zwłok. Obrazy te pokazują, że model wydrukowany w 3D nie oddaje dokładnie drobnych szczegółów kostnych próbek zwłok, z utratą drobniejszych szczegółów, takich jak kontury kości, zwłaszcza na wyrostkach poprzecznych.Pokazano tutaj modele kręgosłupa lędźwiowego owiec przetworzone z detergentem i bez niego na tym samym etapie przetwarzania. Na tych dwóch obrazach można zauważyć wyraźną różnicę w kolorze i fakturze. Aby odtworzyć tę metodę, osoba lub grupa badawcza potrzebuje dostępu do próbek anatomicznych, kąpieli w gorącej wodzie i sprzętu do uszczelniania próżniowego.Preparacja tkanek miękkich przed i po kąpieli w gorącej wodzie nie jest wymagająca technicznie, ale wymaga pewnych umiejętności motorycznych i pewnego doświadczenia w posługiwaniu się ostrym sprzętem do preparacji i innym sprzętem chirurgicznym.

vacuum-sealed-hot-water-bath-immersion-for-preparation-anatomical

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Pokazujemy tutaj in-vivo wprowadzenie pompy osmotycznej do stałego miejscowego dostarczania leków i tworzenie niedokrwienia kończyn tylnych w modelu mysim. Ponadto unaczynienie kończyn tylnych jest perfundowane za pomocą Microfilu, silikonowego środka nieprzepuszczającego promieni rentgenowskich, w celu przygotowania do obrazowania mikrotomografii komputerowej (mikro-CT).

Osmotyczne podawanie leków do niedokrwionych kończyn tylnych i perfuzja naczyń krwionośnych za pomocą mikrofilu do obrazowania mikrotomografii komputerowej

Prezentujemy protokół wykorzystujący mikroskopię poklatkową z wzbudzeniem dwufotonowym do jednoczesnej wizualizacji dynamiki uszkodzeń aksonów i mielin w czasie rzeczywistym. Ten proponowany protokół pozwala na badanie zarówno wewnętrznych, jak i zewnętrznych czynników, które mogą wpływać na los centralnego mielinizowanego aksonu po urazie i przyczyniać się do trwałej niepełnosprawności klinicznej.

Model uszkodzenia rdzenia kręgowego indukowany laserem ex vivo do oceny mechanizmów zwyrodnienia aksonów w czasie rzeczywistym

Przedstawiono strategię ilościowej analizy danych histologicznych w szpiku kostnym. Mikroskopia konfokalna znakowanych fluorescencyjnie komórek w skrawkach tkanek daje 2-wymiarowe obrazy, które są automatycznie analizowane. Analizy kolokalizacyjne różnych typów komórek są porównywane z danymi z symulowanych obrazów, dostarczając ilościowych informacji o interakcjach komórkowych.

Zautomatyzowana kwantyfikacja interakcji komórek krwiotwórczych – komórek zrębu w obrazach histologicznych kości nieodwapnionej

Przedstawiamy solidny protokół, jak starannie zabezpieczyć i przygotować kość udową zwłok do testów złamań i ilościowego obrazowania tomografii komputerowej.  Metoda zapewnia precyzyjną kontrolę nad warunkami wejściowymi w celu określenia zależności między gęstością mineralną kości, wytrzymałością na złamania oraz zdefiniowaniem geometrii i właściwości modelu elementów skończonych.

Przygotowanie bliższej części kości udowej do badania wytrzymałości na pękanie i ilościowej analizy elementów skończonych opartej na tomografii komputerowej

Zaprojektowaliśmy procedurę, w której utrwalone formaldehydem ludzkie zwłoki są używane do pomocy neurochirurgom w szkoleniu do wszczepiania układów mikroelektrod do kory nowej ludzkiego mózgu.

Szkolenie chirurgiczne w zakresie implantacji układów mikroelektrod kory nowej przy użyciu modelu zwłok ludzkich utrwalonych formaldehydem

Ten protokół opisuje trzy metody pozyskiwania i wykorzystywania zarodków kurczaków w wieku od 5 do 8 dni oraz ich błony kosmówkowo-omoczniowej (CAM) jako modelu in vivo do badania obrazowania ultrasonograficznego z kontrastem i dostarczania leków za pośrednictwem mikropęcherzyków.

Przygotowanie zarodków ex ovo kurczaków i naczyń błony moczowo-omoczniowej jako modelu in vivo do obrazowania ultrasonograficznego ze wzmocnieniem kontrastowym i badań nad dostarczaniem leków za pośrednictwem mikropęcherzyków

Opisujemy procedurę przetwarzania skanów tomografii komputerowej (CT) na wysokiej wierności, odzyskiwalne i tanie trenażery zadań proceduralnych. Opisano procesy identyfikacji tomografii komputerowej, eksportu, segmentacji, modelowania i drukowania 3D, wraz z problemami i wnioskami wyciągniętymi w tym procesie.

Stworzenie wysokiej jakości, taniego trenera zadań do umieszczania linii doszpikowej za pomocą druku 3D

Ten protokół przedstawia ustandaryzowany model myszy do rozszerzania szwów oraz metodę wizualizacji 3D do badania mechanobiologicznych zmian szwu i przebudowy kości pod wpływem siły rozciągającej.

Technika wizualizacji 3D do przebudowy kości w mysim modelu rozszerzania szwów

Umieszczenie implantów w modelu szczurzym jest niezbędną procedurą eksperymentalną dla badań klinicznych. W badaniu przedstawiono kompleksowy protokół chirurgiczny do wszczepiania implantów tytanowych do kości piszczelowej modeli szczurzych z cukrzycą i osteoporozą.

Technika chirurgicznej implantacji kości w modelach cukrzycy i osteoporozy kości piszczelowej szczura

Przedstawiamy tutaj protokół do wykonywania Oxygen Sensitive – Dynamic Contrast Enhanced Optoacoustic Imaging (OS-DCE OAI) w celu oceny przedklinicznych modeli raka i gojenia się ran. OS OAI może obrazować oksysyhemoglobinę i oksyhemoglobinę, mapując natlenowanie tkanek. DCE-OAI może obrazować farmakokinetykę egzogenicznego środka kontrastowego, mapując tym samym perfuzję naczyniową.

Oceny tlenowania i perfuzji naczyniowej w przedklinicznych modelach nowotworów i gojenia ran z wykorzystaniem OS-DCE OAI

Poznaj metodę próżniowo uszczelnionego zanurzenia w gorącej wodzie do przygotowania anatomicznych modeli kostnych ze zwłok. Technika ta umożliwia tworzenie dokładnych, higienicznych i niskokosztowych modeli do planowania operacji.

Próżniowo uszczelnione zanurzenie w gorącej wodzie do przygotowania anatomicznych i chirurgicznych modeli kości zwłok

Przeglądaj więcej filmów