24 marca 2023
W tym protokole opisujemy procedury techniczne do generowania myszy z nokautem specyficznym dla brązowej tkanki tłuszczowej (BAT), wykorzystując połączony system Cre-LoxP, CRISPR-Cas9 i systemu jednoprowadnicowego RNA (sgRNA) związanego z adenowirusem (AAV). Opisane etapy obejmują projektowanie sgRNA, przygotowanie cząstek AAV-sgRNA oraz mikroiniekcję AAV do płatów BAT.
Protokół ten generuje myszy z nokautem specyficznym dla brązowego tłuszczu przy użyciu Cre-LoxP, CRISPR-Cas9 i systemu jednoprzewodnikowego RNA wirusa związanego z adenowirusem. Obejmuje technikę chirurgiczną umożliwiającą bezpieczne podawanie AAV do brunatnej tkanki tłuszczowej. Główną zaletą tej techniki jest to, że może szybko generować specyficzne tkankowo nokauty bez konieczności selektywnego rozmnażania myszy.
Podejście do wykonywania specyficznego tkankowo nokautu lub knockdownów można dostosować do innych tkanek, jeśli procedura chirurgiczna wstrzykiwania AAV jest modyfikowana w zależności od narządu docelowego. Na początek podawaj środek przeciwbólowy podskórnie znieczulonej myszy UCP1 Cre Cas9, aby zminimalizować i zapobiec pooperacyjnemu bólowi i stresowi. Następnie ogol sierść w obszarze międzyłopatkowym za pomocą golarki i wysterylizuj obszar chirurgiczny za pomocą co najmniej trzech naprzemiennych rund peelingu na bazie jodu lub chlorheksydyny, a następnie 70% etanolu.
Za pomocą skalpela wykonaj dwucentymetrowe nacięcie w skórze nad brązową tkanką tłuszczową między łopatkami, aby odsłonić tłuszcz międzyłopatkowy. Po wykonaniu pojedynczego nacięcia należy przeciąć tkanki tłuszczowe na granicy między dystalnym obszarem tkanek tłuszczowych a mięśniami. Następnie za pomocą nożyczek chirurgicznych w ręce dominującej oderwij tkankę tłuszczową tępo i pionowo, aby odsłonić brązową tkankę tłuszczową, jednocześnie ściskając tkanki tłuszczowe, w tym brązową tkankę tłuszczową, ręką niedominującą.
Użyj żyły Sulzera jako punktu orientacyjnego, aby wskazać dokładną lokalizację brązowej tkanki tłuszczowej. Następnie, dla każdej myszy, wstrzyknij powoli 20 mikrolitrów wirusa związanego z adenowirusem lub AAV do każdego płata dwóch brązowych tkanek tłuszczowych za pomocą ostrej igły o rozmiarze 32 podłączonej do 100-mikrolitrowej strzykawki Hamiltona. Potwierdzić pomyślne wstrzyknięcie, na co wskazuje brak wycieków z miejsca wstrzyknięcia podczas podawania AAV.
Po zapewnieniu homeostazy umieść odsłonięte tkanki tłuszczowe z powrotem w ich normalnej pozycji, aby zszyć krawędź tkanki tłuszczowej i mięśni za pomocą wchłanialnej nici monofilamentowej 5-0. Na koniec zszyj otwartą skórę niebarwionymi plecionymi niciami VICRYL pokrytymi 5-0. Dokładna lokalizacja brunatnej tkanki tłuszczowej nie może być zidentyfikowana bez jej odsłonięcia, jednak nadmierna ekspozycja powoduje uszkodzenie tkanki.
Potencjalne wady, które mogły doprowadzić do nieudanych wstrzyknięć, obejmowały wstrzyknięcie roztworu AAV w niewłaściwy obszar, penetrację igły przez tkankę i balonowanie tkanek z powodu nadmiernej objętości roztworu AAV. Precyzyjne dostarczenie pojedynczego przewodnika RNA AAV do brunatnej tkanki tłuszczowej miało kluczowe znaczenie dla powodzenia protokołu. Kluczem do sukcesu przy odsłanianiu brunatnej tkanki tłuszczowej jest chirurgiczna technika nożycowa, w tym kierunek i głębokość nożyczek oraz umiejscowienie strzykawki Hamiltona.
Technika ta wykorzystuje zwierzęta nokautujące specyficzne dla tkanki, aby zrozumieć molekularne regulatory metabolizmu energetycznego związanego z brunatnym tłuszczem.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół opisuje metodę generowania myszy z wybiórczym znokautowaniem genu w brunatnej tkance tłuszczowej (BAT), wykorzystującą kombinację technik Cre-LoxP, CRISPR-Cas9 oraz wektorów AAV (wirusa towarzyszącego adenowirusom) z pojedynczym przewodnim RNA. Dzięki zastosowaniu tych metod badacze mogą szybko tworzyć tkankowo specyficzne nokauty bez konieczności prowadzenia selektywnego rozchowu.
Szybka generacja myszy z knockoutem specyficznym dla brunatnej tkanki tłuszczowej (BAT) z wykorzystaniem połączonych technologii Cre-LoxP, CRISPR-Cas9 oraz AAV-sgRNA umożliwia przyspieszoną genomikę funkcjonalną w badaniach nad metabolizmem. Podejście to usprawnia walidację celów i ograniczanie ryzyka mechanistycznego dla genów zaangażowanych w regulację energii, skracając czas cykli w porównaniu z tradycyjną hodowlą. Metoda ta wspiera decyzje portfelowe, dostarczając specyficznych dla tkanki informacji, które są kluczowe dla wczesnego etapu odkryć i ciągłości translacyjnej.
Metoda ta jest stosowana na wczesnych etapach odkrywania leków i walidacji celów terapeutycznych, stanowiąc pomost do opracowania modeli przedklinicznych dla portfeli badawczych z zakresu metabolizmu i endokrynologii.