Name: Zastosowanie cewnika Hickmana do długotrwałego dostępu naczyniowego w przedklinicznym modelu trzody chlewnej (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-03-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 51 s
Description: Poznaj technikę wszczepiania cewnika Hickmana do długotrwałego dostępu naczyniowego u świń. Ta metoda umożliwia codzienne pobieranie krwi i podawanie leków przy minimalnym ryzyku powikłań.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Chcielibyśmy podziękować za wsparcie Wojsk Lądowych, Marynarki Wojennej, NIH, Sił Powietrznych, VA i Spraw Zdrowia w odniesieniu do inicjatywy AFIRM II w ramach programu CTA05: W81XWH-13-2-0052 i CTA06: W81XWH-13-2-0053. U.S. Army Medical Research Acquisition Activity, 820 Chandler Street, Fort Detrick MD 21702-5014, jest biurem przyznającym i zarządzającym akwizycją. Opinie, interpretacje, wnioski i zalecenia są opiniami autora i niekoniecznie są zatwierdzone przez Departament Obrony. Ponadto chcielibyśmy podziękować za wsparcie ze strony Departamentu Obrony w ramach Programów Badań Medycznych Kierowanych przez Kongres (CDMRP), Programu Badań nad Przeszczepami Rekonstrukcyjnymi (RTRP), poprzez nagrody W81XWH-17-1-0280, W81XWH-17-1-0624, W81XWH-17-1-0287 i W81XWH18-1-0795. Chcielibyśmy również podziękować Wydziałowi Chirurgii Plastycznej i Rekonstrukcyjnej oraz Johns Hopkins University School of Medicine. Dodatkowo chcielibyśmy podziękować całemu personelowi weterynaryjnemu, w tym Melanie Adams, Karen Goss, Haley Smoot, Kayli Schonvisky i Victorii Manahan.

Hickman Catheter for Long-Term Vascular Access in Swine

<ol><li>Pontes, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incidents+related+to+the+Hickman%C2%AE+catheter%3A+identification+of+damages%5BTitle%5D)+AND+%22Revista+Brasileira+de+Enfermagem%22%5BJournal%5D)">Incidents related to the Hickman® catheter: identification of damages.</a> Revista Brasileira de Enfermagem. 71 (4), 1915-1920 (2018).</li>
<li>Kolikof, J., Peterson, K., Baker, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+Venous+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22StatPearls%22%5BJournal%5D)">Central Venous Catheter.</a> StatPearls. , StatPearls Publishing. (2022).</li>
<li>Brainard, B. Central venous catheters: how, when, why? (Proceedings). DVM 360. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.dvm360.com/view/central-venous-catheters-how-when-why-proceedings">https://www.dvm360.com/view/central-venous-catheters-how-when-why-proceedings</a> (2011).</li>
<li>Abrams-Ogg, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+an+implantable+central+venous+%28Hickman%29+catheter+for+long-term+venous+access+in+dogs+undergoing+bone+marrow+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Journal+of+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">The use of an implantable central venous (Hickman) catheter for long-term venous access in dogs undergoing bone marrow transplantation.</a> Canadian Journal of Veterinary Research. 56 (4), 382-386 (1992).</li>
<li>Florescu, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+technique+of+placement+of+an+external+jugular+tunneled+hemodialysis+catheter+in+a+large+pig+model%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Vascular+Access%22%5BJournal%5D)">Surgical technique of placement of an external jugular tunneled hemodialysis catheter in a large pig model.</a> The Journal of Vascular Access. 19 (5), 473-476 (2018).</li>
<li>Williams, K., Linklater, A. Central Venous Catheter Placement: Modified Seldinger Technique. , Available from: 
 <a target="_blank" href="https://www.cliniciansbrief.com/article/central-venous-catheter-placement-modified-seldinger-technique">https://www.cliniciansbrief.com/article/central-venous-catheter-placement-modified-seldinger-technique</a> (2015).</li>
<li>Perondi, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+colonization+of+non-permanent+central+venous+catheters+in+hemodialysis+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Heliyon%22%5BJournal%5D)">Bacterial colonization of non-permanent central venous catheters in hemodialysis dogs.</a> Heliyon. 6 (1), e03224(2020).</li>
<li>Faulkner, R. T., Czajkowski, W. P., Rayfield, E. J., Hickman, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technique+for+portal+catheterization+in+rhesus+monkeys+%28Macaca+mulatta%29%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">Technique for portal catheterization in rhesus monkeys (Macaca mulatta).</a> American Journal of Veterinary Research. 37 (4), 473-475 (1976).</li>
<li>Moss, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+venous+access+devices+for+the+delivery+of+systemic+anticancer+therapy+%28CAVA%29%3A+a+randomised+controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Central venous access devices for the delivery of systemic anticancer therapy (CAVA): a randomised controlled trial.</a> Lancet. 398 (10298), 403-415 (2021).</li>
<li>Dai, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+tunneled+and+nontunneled+peripherally+inserted+central+catheter+placement%3A+A+randomized+controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Vascular+Access%22%5BJournal%5D)">Effect of tunneled and nontunneled peripherally inserted central catheter placement: A randomized controlled trial.</a> The Journal of Vascular Access. 21 (4), 511-519 (2020).</li>
<li>Wu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tunneled+peritoneal+catheter+vs+repeated+paracenteses+for+recurrent+ascites%3A+a+cost-effectiveness+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+and+Interventional+Radiology%22%5BJournal%5D)">Tunneled peritoneal catheter vs repeated paracenteses for recurrent ascites: a cost-effectiveness analysis.</a> Cardiovascular and Interventional Radiology. 45 (7), 972-982 (2022).</li>
<li>Onwubiko, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+tunneled+central+venous+catheters+as+an+alternative+to+a+standard+hemodialysis+catheter+in+neonatal+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pediatric+Surgery%22%5BJournal%5D)">Small tunneled central venous catheters as an alternative to a standard hemodialysis catheter in neonatal patients.</a> Journal of Pediatric Surgery. 56 (12), 2219-2223 (2021).</li>
<li>da Silva, S. R., Reichembach, M. T., Pontes, L., de Souza, G. deP. E. S. C. M., Kusma, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heparin+solution+in+the+prevention+of+occlusions+in+Hickman%C2%AE+catheters+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Revista+Latino-Americana+de+Enfermagem%22%5BJournal%5D)">Heparin solution in the prevention of occlusions in Hickman® catheters a randomized clinical trial.</a> Revista Latino-Americana de Enfermagem. 29, e3385(2021).</li>
<li>Landoy, Z., Rotstein, C., Lucey, J., Fitzpatrick, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hickman-Broviac+catheter+use+in+cancer+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Oncology%22%5BJournal%5D)">Hickman-Broviac catheter use in cancer patients.</a> Journal of Surgical Oncology. 26 (4), 215-218 (1984).</li>
<li>Bawazir, O. A., Altokhais, T. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hickman+central+venous+catheters+in+children%3A+open+versus+percutaneous+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Hickman central venous catheters in children: open versus percutaneous technique.</a> Annals of Vascular Surgery. 68, 209-216 (2020).</li>
<li>Cappello, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+venous+access+for+haemodialysis+using+the+Hickman+catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Nephrology+Dialysis+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Central venous access for haemodialysis using the Hickman catheter.</a> Nephrology Dialysis Transplantation. 4 (11), 988-992 (1989).</li>
<li>Shastri, L., Kjærgaard, B., Rees, S. E., Thomsen, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+central+venous+to+arterial+carbon+dioxide+gap+%28PCO2+gap%29+in+response+to+acute+changes+in+ventilation%5BTitle%5D)+AND+%22BMJ+Open+Respiratory+Research%22%5BJournal%5D)">Changes in central venous to arterial carbon dioxide gap (PCO2 gap) in response to acute changes in ventilation.</a> BMJ Open Respiratory Research. 8 (1), e000886(2021).</li>
<li>Smith, A. C., Swindle, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+swine+for+the+laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+Journal%22%5BJournal%5D)">Preparation of swine for the laboratory.</a> ILAR Journal. 47 (4), 358-363 (2006).</li>
<li>Swindle, M. M., Makin, A., Herron, A. J., Clubb, F. J., Frazier, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Swine+as+models+in+biomedical+research+and+toxicology+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Veterinary+Pathology%22%5BJournal%5D)">Swine as models in biomedical research and toxicology testing.</a> Veterinary Pathology. 49 (2), 344-356 (2012).</li>
<li>Hughes, H. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Swine+in+cardiovascular+research%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Swine in cardiovascular research.</a> Laboratory Animal Science. 36 (4), 348-350 (1986).</li>
<li>Svendsen, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+minipig+in+toxicology%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">The minipig in toxicology.</a> Experimental and Toxicologic Pathology. 57 (5-6), 335-339 (2006).</li>
<li>Tumbleson, M. E., Schook, L. B. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTumbleson%2C+ME+%22Advances+in+Swine+in+Biomedical+Research%22">Advances in Swine in Biomedical Research</a>. 2, Springer Science & Business Media. (1996).</li>
<li>Jensen-Waern, M., Kruse, R., Lundgren, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oral+immunosuppressive+medication+for+growing+pigs+in+transplantation+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Oral immunosuppressive medication for growing pigs in transplantation studies.</a> Laboratory Animals. 46 (2), 148-151 (2012).</li>
<li>Ibrahim, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+heterotopic+swine+hind+limb+transplant+model+for+translational+vascularized+composite+allotransplantation+%28VCA%29+research%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">A modified heterotopic swine hind limb transplant model for translational vascularized composite allotransplantation (VCA) research.</a> Journal of Visualized Experiments. (80), e50475(2013).</li>
<li>Nordström, C. -H., Jakobsen, R., Mølstrøm, S., Nielsen, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cerebral+venous+blood+is+not+drained+via+the+internal+jugular+vein+in+the+pig%5BTitle%5D)+AND+%22Resuscitation%22%5BJournal%5D)">Cerebral venous blood is not drained via the internal jugular vein in the pig.</a> Resuscitation. 162, 437-438 (2021).</li>
<li>Habib, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MR+imaging+of+the+yucatan+pig+head+and+neck+vasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Magnetic+Resonance+Imaging%22%5BJournal%5D)">MR imaging of the yucatan pig head and neck vasculature.</a> Journal of Magnetic Resonance Imaging. 38 (3), 641-649 (2013).</li>
<li>Flournoy, W. S., Mani, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+external+jugular+vein+catheterization+in+piglets+using+a+triangulation+technique%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+Journal+of+Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Percutaneous external jugular vein catheterization in piglets using a triangulation technique.</a> The International Journal of Laboratory Animals. 43 (4), 344-349 (2009).</li>
<li>Kotsougiani, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+angiogenesis+in+porcine+tibial+allotransplantation%3A+a+new+large+animal+bone+vascularized+composite+allotransplantation+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Surgical angiogenesis in porcine tibial allotransplantation: a new large animal bone vascularized composite allotransplantation model.</a> Journal of Visualized Experiments. (126), e55238(2017).</li>
<li>Chuang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+external+catheters+with+subcutaneous+vascular+access+ports+for+chronic+vascular+access+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Contemporary+Topics+in+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Comparison of external catheters with subcutaneous vascular access ports for chronic vascular access in a porcine model.</a> Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 44 (2), 24-27 (2005).</li>
</ol>

Żaden z autorów nie ma interesu finansowego w żadnym z produktów, urządzeń lub leków wymienionych w tym manuskrypcie.

Podczas gdy CVC pełnią szereg funkcji w badaniach na dużych zwierzętach, w obecnej literaturze brakuje jednomyślnego podejścia do bezpiecznego i zrównoważonego stosowania w długoterminowych badaniach trwających ponad 30 dni. Wieloetapowa procedura wprowadzania HC, zabezpieczania skóry i przechowywania w ręcznie robionym woreczku w tym protokole została poddana znaczącym korektom w celu poprawy jakości. W związku z tym protokół ten przedstawia technikę stosowania HC, która umożliwia wydajny i skuteczny dostęp dożylny, zap...

Nieodzowna rola cewników do żył centralnych (CVC) w opiece nad pacjentem wynika z ich wygody, korzystnego profilu bezpieczeństwa i wszechstronności1. Funkcje CVC obejmują niezawodny dostęp do całkowitego żywienia pozajelitowego, przeszczep krwiotwórczych komórek macierzystych, plazmaferezę/aferezę oraz skuteczne podawanie płynów, krwi lub leków jednocześnie2. W medycynie weterynaryjnej CVC minimalizują również dyskomfort zwierząt poprzez szybkie rozcieńczanie leków drażniących i pobieranie próbek krwi bez wielokrotnego nakłucia żyły3. Pomimo ich szerokiego zastosowania, wykorzystanie CVC w badaniach na dużych zwierzętach nadal stanowi kilka poważnych wyzwań4.
Przezskórne umieszczenie CVC za pomocą prowadnika lub cewnika wprowadzającego może być trudne dla badaczy niebędących specjalistami weterynaryjnymi, szczególnie u zwierząt ze strukturami żył głębokich5. Niewłaściwa technika instalacji CVC może spowodować przypadkowe umieszczenie w pobliskich strukturach, co wymaga umieszczenia pod kontrolą ultradźwięków lub radiografii pozabiegowej pozycjonowania6. Jednak w porównaniu z salami operacyjnymi dla ludzi, ultradźwięki nie są łatwo dostępne w wielu dużych laboratoriach badawczych na zwierzętach. Co więcej, długotrwałe stosowanie cewników na stałe może prowadzić do załamania linii, przebicia, infekcji lub wydostania się zwierząt, co może spowodować zakłócenie szybkiego leczenia, monitorowania klinicznego i wyników badań4,7. Wymiana CVC wymaga dodatkowych zasobów, w tym zaopatrzenia w materiały, planowania operacji, czasu postu i dostępu do badań radiologicznych. Powikłania związane z CVC mogą zatem stwarzać znaczne bariery techniczne i finansowe lub zakłócać produktywne badania translacyjne, szczególnie w odniesieniu do trzody chlewnej. Zanieczyszczenie żywnością lub kałem, drapanie ścian klatki i kopanie miejsc podrażnień może zagrozić CVC, a ryzyko powikłań związanych z CVC jest zwiększone przez długotrwałe stosowanie. Tak więc bezpieczne i nieskomplikowane utrzymanie CVC u świń wymaga starannego rozważenia wyboru CVC, umieszczenia, zabezpieczenia, ochrony, warunków sanitarnych i nadzoru.
Cewnik Hickmana (HC) używany w tym protokole to tunelowany CVC z poliestrowym mankietem i jednym do trzech lumenów, który jest powszechnie używany do długotrwałego dostępu dożylnego u ludzi i zwierząt1,4,8,9. Podejście z cewnikiem tunelizowanym wiąże się z niższymi wskaźnikami powikłań i kosztami konserwacji w porównaniu z wariantami nietunelizowanymi10,11,12. Mankiet zmniejsza wydostanie się HC poprzez wbudowanie się w tkanki podskórne otaczające miejsce wyjścia skóry. Konstrukcja wielostrumieniowa umożliwia również oddzielenie podawania leków od pobierania krwi, minimalizując w ten sposób zanieczyszczenie i niedokładność próbki krwi. Mimo to korzystanie z HC nie jest pozbawione wyzwań, z których najczęstsze to złamania, migracja, okluzja i infekcje13,14,15,16. Właściwa instalacja i konserwacja HC są zatem niezbędnymi umiejętnościami, gdy są wykorzystywane w badaniach translacyjnych. Jednak obecna literatura zawiera niewiele wskazówek dotyczących najlepszych praktyk stosowania HC u trzody chlewnej podczas długoterminowych prób5,6,17.
Celem tego badania jest nakreślenie zoptymalizowanego podejścia do wprowadzania HC do żyły szyjnej wewnętrznej (IJV), zabezpieczenia skóry i trwałej ochrony, która minimalizuje długotrwałe powikłania związane z cewnikiem i dyskomfort u świń. Uwzględniono omówienie ważnych kwestii związanych ze stosowaniem HC, potencjalnych wyzwań, które można napotkać, oraz modyfikacji, które mogą poprawić jakość tego podejścia.

<table><tbody><tr><td>#10 ostrze</td><td>Medline</td><td>MDS15110</td><td></td></tr><tr><td>0,9% sterylny chlorek sodu</td><td>Baxter&nbsp;</td><td>2F7123</td><td></td></tr><tr><td>0-0 Powlekany i pleciony szew niewchłanialny</td><td>Covidien</td><td>S-196</td><td></td></tr><tr><td>0-0 Syntetyczny, monofilamentowy, niewchłanialny szew polipropylenowy</td><td>Ethicon</td><td>8690H</td><td></td></tr><tr><td>1-calowa taśma medyczna</td><td>3M</td><td>1548S-1</td><td></td></tr><tr><td>10 jednostek USP / ml Heparyny do płukania</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>306424</td><td></td></tr><tr><td>3-0 Pleciony szew wchłanialny</td><td>Covidien</td><td>SL-636 (igła do cięcia), GL-122 (igła stożkowa)</td><td></td></tr><tr><td>3-0 Monofilamentowy szew wchłanialny</td><td>Covidien</td><td>SM-922 (igła do cięcia), CM-882 (igła stożkowa)</td><td></td></tr> <tr><td>4-0 Powlekane i plecione niewchłanialne opaski do szwów</td><td>Ethicon</td><td>A303H</td><td></td></tr><tr><td>70% etanolu</td><td>Vedco</td><td>VINV-IPA7</td><td></td></tr><tr><td>Kleszczyki do tkanek Adson</td><td>MPM Zaopatrzenie medyczne</td><td>132-508</td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze Adson-Brown</td><td>MPM Zaopatrzenie medyczne</td><td>106-2572</td><td></td></tr><tr><td>Koc i podkładka ocieplająca powietrze</td><td>3M Bair Hugger</td><td>Zacisk do ręczników UPC 00608223595770</td><td></td></tr><tr><td>Backhaus</td><td>Zaopatrzenie medyczne MPM</td><td>117-5508</td><td></td></tr><tr><td>Brązowy uchwyt na igły</td><td>MPM Zaopatrzenie medyczne</td><td>110-1513</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>PAR Farmaceutyczny</td><td>3003408B</td><td></td></tr><tr><td>Cefazolin</td><td>Hikma Farmacuetica (Portugalia)</td><td>PLB 133-WES/1</td><td></td></tr><tr><td>Chlorheksydyna</td><td>Vet One</td><td>501027</td><td></td></tr><tr><td>Clave</td><td>Baxter</td><td>7N8399</td><td></td></tr><tr><td>Bawełniana wyściółka</td><td>Medline</td><td>NON6027</td><td></td></tr><tr><td>Debakey kleszcze</td><td>MPM Medical Supply</td><td>106-5015</td><td></td></tr><tr><td>Elastyczna samoprzylepna taśma bandażowa</td><td>3M</td><td></td><td></td>XH002016489</tr><tr><td>Kleszczyki do komarów Halstead</td><td>Zaopatrzenie medyczne MPM</td><td>115-4612</td><td></td></tr><tr><td>Systemy dostępu</td> do<td>cewnika Hickmana</td><td>603710</td><td></td></tr><tr><td>Zestaw naprawczy cewnika Hickmana, 7Fr, złącza czerwone i białe Systemy</td><td>dostępu Bard</td><td>0601690 (czerwony), 0601680 (biały), 502017</td><td></td></tr><tr><td>Kleszcze hemostatyczne Kelly</td><td>Zaopatrzenie medyczne MPM</td><td>115-7014</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina</td><td>Vet One</td><td>383010-03</td><td></td></tr><tr><td>Dzwonki z mleczanami</td><td>Baxter</td><td>2B2324X</td><td></td></tr><tr><td>Cytrynian maropitanu</td><td>Nożyczki Zoetis</td><td>106</td><td></td></tr><tr><td>Mayo</td><td>Zaopatrzenie medyczne MPM</td><td>103-5014</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki Metzenbaum</td><td>Zaopatrzenie medyczne MPM</td><td>132-711</td><td></td></tr><tr><td>Pantoprazol</td><td>JH Apteka</td><td>NDC 0143-9284-10</td><td></td></tr><tr><td>Rękojeść ostrza skalpela</td><td>Medline</td><td>MDS10801</td><td></td></tr><tr><td>Vein Pick</td><td>SAI Technologie infuzyjne</td><td>VP-10</td><td></td></tr><tr><td>Weterynaryjna maść okulistyczna</td><td>Dechra</td><td>IS4398</td><td></td></tr><tr><td>Ksylazyna</td><td>Vet One</td><td>510004</td><td></td></tr></tbody></table>

zastosowanie cewnika hickmana do długotrwałego dostępu naczyniowego w przedklinicznym modelu trzody chlewnej

Hickman Catheter Use for Long-Term Vascular Access in a Preclinical Swine Model

Cewniki do żył centralnych (CVC) są nieocenionymi urządzeniami w badaniach na dużych zwierzętach, ponieważ ułatwiają szeroki zakres zastosowań medycznych, w tym monitorowanie krwi i niezawodne dożylne podawanie płynów i leków. W szczególności tunelizowany wielokanałowy cewnik Hickmana (HC) jest powszechnie stosowany w modelach trzody chlewnej ze względu na mniejsze wskaźniki wydobycia i powikłań. Pomimo mniejszej liczby powikłań w porównaniu z innymi CVC, zachorowalność związana z HC stanowi poważne wyzwanie, ponieważ może znacznie opóźnić lub w inny sposób negatywnie wpłynąć na trwające badania. Prawidłowe wprowadzanie i utrzymywanie HC ma zasadnicze znaczenie w zapobieganiu tym powikłaniom, ale nie ma zgody co do najlepszych praktyk. Celem tego protokołu jest kompleksowe opisanie podejścia do wprowadzania i utrzymywania tunelizowanego HC u świń, które łagodzi powikłania i zachorowalność związane z HC. Zastosowanie tych technik u >100 świń zaowocowało wolnymi od powikłań liniami patentowymi do 8 miesięcy i brakiem śmiertelności związanej z cewnikiem lub infekcji brzusznego miejsca operowanego. Ten protokół oferuje metodę optymalizacji żywotności HC i wskazówki dotyczące zbliżających się problemów podczas użytkowania.

W naszym laboratorium pomyślnie przeprowadzono implantację HC u ponad 100 świń. HC może zostać bezpiecznie i prawidłowo umieszczone oraz zabezpieczone w czasie krótszym niż 1 h przez zespół składający się z chirurga, asystenta, osoby odpowiedzialnej za obieg instrumentów oraz anestezjologa. Wykonanie kieszeni na cewnik zajmuje około 15-20 min. Technika ta jest prosta, łatwa do nauki i była wykonywana przez lekarzy weterynarii, rezydentów chirurgii oraz studentów medycyny pod nadzorem instruktora.
<p class="jove_conte...

Opisano niezawodne i powtarzalne podejście do wprowadzania i konserwacji tunelizowanego cewnika Hickmana do długoterminowego dostępu naczyniowego u świń. Umieszczenie centralnego cewnika żylnego pozwala na wygodne codzienne pobieranie próbek krwi pełnej od obudzonych zwierząt oraz dożylne podawanie leków i płynów.

Zastosowanie cewnika Hickmana do długotrwałego dostępu naczyniowego w przedklinicznym modelu trzody chlewnej

Central venous catheters (CVCs) are invaluable devices in large animal research as they facilitate a wide range of medical applications, including blood ...

Protokół ten opisuje niezawodną i powtarzalną technikę wprowadzania i utrzymywania tunelizowanego cewnika Hickmana w celu zapewnienia długotrwałego dostępu naczyniowego w dużym modelu zwierzęcym. Podejście to pozwala na wygodne codzienne pobieranie próbek krwi pełnej od obudzonych zwierząt oraz dożylne podawanie leków i płynów. Niektóre z głównych wyzwań związanych z długoterminowymi centralnymi liniami żylnymi u dużych zwierząt to infekcje i uszkodzenia, ponieważ duże zwierzęta czasami są w stanie uzyskać dostęp do linii i spowodować uraz mechaniczny.Aby złagodzić te wyzwania, nasza grupa wynalazła specjalne woreczki, które chronią linię, a jednocześnie umożliwiają łatwy dostęp do cewnika. Cewniki do żył centralnych są nieocenionymi urządzeniami w badaniach na dużych zwierzętach, ponieważ ułatwiają szeroki zakres zastosowań medycznych, ale nie ma zgody co do najlepszych praktyk w zakresie ich wprowadzania i konserwacji. W odpowiedzi zaproponowaliśmy protokół, który kompleksowo opisuje podejście do prawidłowego umieszczania tunelizowanego cewnika Hickmana u świń, które minimalizuje powikłania i zachorowalność związaną z cewnikiem.Zastosowanie naszego podejścia u ponad 100 świń zaowocowało długotrwałą drożnością i minimalnymi wskaźnikami powikłań. Protokół ten oferuje metodę optymalizacji żywotności cewnika Hickmana oraz wskazówki dotyczące zbliżania się problemów podczas jego użytkowania. Na początek połóż znieczuloną świnię na stole operacyjnym.W polu brzusznym wykonaj czterocentymetrowe nacięcie między tchawicą a przyśrodkową granicą mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego. Podziel platysmę i wypreparuj tkankę łączną, aby odsłonić żyłę szyjną wewnętrzną lub IJV na bocznej granicy mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego. Następnie odizoluj od trzech do czterech centymetrów IJV, dzieląc jego gałęzie za pomocą powlekanych i plecionych niewchłanialnych opasek szwowych 4-0.Odciąć obwodowo od otaczającej tkanki łącznej. Na czaszkowym końcu IJV przełóż dwukrotnie pod naczyniem powlekaną i plecioną, niewchłanialną opaskę do szwów, aby utworzyć wokół niej pętlę. Na końcu ogonowym przełóż opaskę szwową raz pod naczyniem, aby utworzyć zawiesie.W celu przygotowania miejsca wyjścia cewnika należy przestawić świnię poprzez boczne przechylenie w kierunku strony niechirurgicznej, aby odsłonić ipsilateralne grzbietowe pole chirurgiczne. Po ponownym zabezpieczeniu kończyn skalpelem z ostrzem numer 10 wykonaj 0,5-centymetrowe nakłucie skóry w żądanym miejscu wyjścia cewnika, trzy centymetry w bok od kręgosłupa i pięć centymetrów ogonowo do głowy. W celu tunelowania cewnika usuń mokrą gazę i ponownie zidentyfikuj izolowany segment IJV.Następnie wybierz docelowe miejsce wejścia do cewnika podskórnie na tej samej głębokości co IJV głębiej niż mostkowo-obojczykowo-sutkowy i między dwoma powlekanymi i plecionymi niewchłanialnymi opaskami szwowymi. Trzymaj wprowadzacz cewnika Hickmana w dominującej ręce w grzbietowym polu operacyjnym i zawieś pozostałą długość cewnika w powietrzu nad sterylnym polem. Ręka niedominująca powinna znajdować się w brzusznym polu operacyjnym.Włóż wprowadzacz do miejsca nakłucia wyjściowego z dominującą ręką, kierując końcówkę urządzenia w stronę ręki niedominującej w polu brzusznym. Popchnij końcówkę wprowadzającego powierzchownie i przyśrodkowo, aby tunelować cewnik przez tkankę tłuszczową, wyczuwając pojawienie się końcówki ręką niedominującą. Gdy końcówka wyłoni się w docelowym miejscu wejścia, przeciągnij wprowadzacz i cewnik przez tunel podskórny, aż mankiet głównej linii znajdzie się tuż pod powierzchnią skóry pola grzbietowego.Przyciąć koniec cewnika do mniej więcej takiej długości, na jakiej sięgałby do 1/3 długości mostka świni. Za pomocą kleszczy Addison Brown chwyć środek izolowanego segmentu IJV i wykonaj cięcie w połowie naczynia zakrzywionymi nożyczkami Metzenbaum. Trzymając segment IJV, włóż kilof do żyły w segmencie ogonowym naczynia.Utrzymując napięcie na opasce szwu czaszkowego, włóż i wkręć koniec cewnika do naczynia doogonowo. Po całkowitym wprowadzeniu cewnika, nie należy raz zawiązać szwu ogonowego, aby tymczasowo zabezpieczyć cewnik Hickmana. Po potwierdzeniu drożności należy dwukrotnie zawiązać szew ogonowy, aby zabezpieczyć dystalny odcinek IJV wokół cewnika dożylnego.Następnie raz zawiąż węzeł szwu czaszkowego, aby zablokować przepływ krwi w segmencie IJV. Po zakończeniu, aby zamknąć brzuszne miejsce operacji, najpierw zszyj platysma proste szwy przerywane za pomocą plecionego szwu wchłanialnego 3-0. Następnie zamknij podskórne szwy biegowe szwem wchłanialnym z monofilamentu 3-0.Aby przymocować cewnik Hickmana do skóry zwierzęcia, ustaw cewnik Hickmana tak, aby tworzył kształt litery U. Następnie zidentyfikuj trzy punkty. Pierwszy punkt znajduje się w odległości dwóch centymetrów od miejsca wyjścia.Drugi punkt znajduje się nad rozwidloną częścią cewnika, gdzie rozchodzą się czerwone i białe linie. A trzeci punkt znajduje się na górze litery U między pierwszymi dwoma punktami. W każdym miejscu umieść trzycentymetrowy kawałek jednocalowej taśmy medycznej na cewniku, aby utworzyć skrzydło z każdej strony.Za pomocą syntetycznego monofilamentu, niewchłanialnego szwu polipropylenowego, przymocuj każde skrzydło do skóry za pomocą pojedynczego prostego przerywanego szwu. W drugim punkcie nad rozwidloną częścią dodaj pojedynczy przerywany szew przez szczelinę między dwiema liniami i upewnij się, że węzeł leży na wierzchu taśmy, aby zapobiec podrażnieniu. Przetestuj drożność białych i czerwonych linii na zewnątrz sterylnego pola poprzez pobieranie krwi i płukanie przy użyciu 10 mililitrów 0,9% soli fizjologicznej i 10 mililitrów soli fizjologicznej heparynizowanej.Po utworzeniu woreczka cewnika z żądaną liczbą płatków, wyrównaj otwór i klapkę z punktem, w którym linie wychodzą z kołnierza, ustawiając go tak, aby jego otwór był ogoniasty. Upewnij się, że worek znajduje się na linii środkowej lub nieco bocznie do szyi grzbietowej. Następnie przeciągnij czerwoną i białą linię przez otwór w klapie pierwszej, upewniając się, że linie leżą płasko między klapami pierwszym i drugim klapką trzecią skierowaną do góry.Używając syntetycznego monofilamentu, niewchłanialnego szwu polipropylenowego 0, przymocuj worek do kołnierza za pomocą prostego przerywanego szwu w każdym rogu i w połowie każdego końca. Nie zszywać przez skórę. W reprezentatywnej kohorcie 32 świń z punktem końcowym od ośmiu do 132 dni, 78,13 cewników Hickmana pozostało opatentowanych do eksperymentalnego punktu końcowego.Drobne naprawy były wymagane w 9,38% przypadków, podczas gdy wskaźniki demontażu lub wymiany przed i po 30 dniach wynosiły odpowiednio 9,38% i 12,5%. Powodem naruszenia linii było przemieszczenie, przebicie i blokada wewnętrzna. Jednak terminowa naprawa i wymiana wykazały 100% skuteczność działania bez znaczącej ingerencji w gromadzenie danych.

hickman-catheter-use-for-long-term-vascular-access-preclinical-swine

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Tutaj prezentujemy protokół oceny funkcji krążeniowo-oddechowej u obudzonych świń, w spoczynku i podczas stopniowanych ćwiczeń na bieżni. Przewlekła aparatura pozwala na wielokrotne pomiary hemodynamiczne bez wpływu kardiodepresyjnych środków znieczulających.

Chirurgiczne umieszczanie cewników do długotrwałych testów wysiłkowych układu sercowo-naczyniowego u świń

Film szczegółowo opisuje cewnikowanie dystalnej tętnicy ramiennej u świń. Ta procedura dokładnie mierzy ciśnienie tętnicze krwi i jest prostą i szybką metodą pobierania próbek do pomiarów gazometrii krwi tętniczej.

Cewnikowanie tętnicy ramiennej u świń

Tutaj prezentujemy podejście zamknięte w klatce piersiowej do zapisów pętli ciśnienia i objętości w dwóch komorach u świń z ostrą dysfunkcją prawej komory.

Zamknięte dwukomorowe nagrania pętli ciśnieniowo-objętościowej klatki piersiowej z cewnikami wstępnymi w modelu wieprzowym

Ten protokół opisuje minimalnie inwazyjną procedurę chirurgiczną dla wstępującego pasma aorty u świń.

Małoinwazyjny model zwężenia zastawki aortalnej u świń

To badanie przedstawia hybrydowy model ilościowy krwotoku ze skrzyżowania pachowego u świń, poprawiając ocenę przedszpitalnej interwencji hemostatycznej.

Nowy hybrydowy model oceny ilościowej krwotoku ze skrzyżowania pachowego u świń

W pracy przedstawiono model świni do oceny przeszczepów o małej średnicy w tętnicach udowych. Model naśladuje dynamikę naczyń krwionośnych człowieka i kompleksowo ocenia drożność przeszczepów, hemodynamikę i przebudowę naczyń. Stanowi cenną platformę do badania przeszczepów naczyniowych i monitorowania ich za pomocą ultrasonografii dopplerowskiej i angiografii.

Implantacja przeszczepu naczyniowego kości udowej w modelu trzody chlewnej w celu przetestowania przeszczepów naczyniowych o małej średnicy

Opisano metodę transferu genów w leczeniu niedokrwiennej niewydolności serca z wykorzystaniem modelu zawału mięśnia sercowego u świń. Nasza prosta i powtarzalna metoda pozwala na łatwą ocenę skuteczności różnych transferów genów w sposób bardzo prosty i odtwarzalny.

Transfer genów w przedklinicznym modelu niedokrwiennej niewydolności serca

Modele dużych zwierząt mają wysoką wartość translacyjną w badaniu fizjologii i farmakologii niedotlenienia okołoporodowego. Wykorzystując noworodki prosiąt, opracowaliśmy eksperymentalny protokół symulacji niedotlenienia okołoporodowego, który umożliwia badanie hemodynamicznych parametrów systemowych i regionalnych, transportu tlenu wraz z szlakami biochemicznymi i patologicznymi oraz ich korelacji.

Model niedotlenienia okołoporodowego u świń

Dokładne naśladowanie sposobu leczenia oparzeń wymaga współgrania między obserwacją kliniczną a badaniami na modelach zwierzęcych. W tym badaniu ustalono model ciężkiego oparzenia u świń w celu oceny eksperymentalnego opatrunku w warunkach fizjologicznych i patofizjologicznych.

Ciężkie oparzenia w modelu trzody chlewnej do klinicznej oceny opatrunku

Opisujemy zabieg chirurgiczny stosowany do wywołania niedokrwienia obwodowego u królików z hiperlipidemią i cukrzycą. Operacja ta działa jako model przedkliniczny dla stanów doświadczanych w chorobie tętnic obwodowych u pacjentów. Angiografia jest również opisywana jako sposób pomiaru stopnia wprowadzonego niedokrwienia i odzyskania perfuzji.

Przedkliniczny model niedokrwienia kończyn tylnych u królików z cukrzycą

Poznaj technikę wszczepiania cewnika Hickmana do długotrwałego dostępu naczyniowego u świń. Ta metoda umożliwia codzienne pobieranie krwi i podawanie leków przy minimalnym ryzyku powikłań.

Zastosowanie cewnika Hickmana do długotrwałego dostępu naczyniowego w przedklinicznym modelu trzody chlewnej

Przeglądaj więcej filmów