14 lipca 2023
Analiza żywej tkanki w czasie rzeczywistym dostarcza ważnych danych funkcjonalnych i mechanistycznych. W tym artykule opisano protokoły i zmienne krytyczne w celu zapewnienia dokładnego i powtarzalnego generowania danych przez nowatorski i niewymagający pompowania wielokanałowy system fluidyki, który utrzymuje i ocenia szeroką gamę modeli tkanek i komórek.
Najczęściej spotykane urządzenia służące do pomiaru zużycia tlenu nie obsługują jednoczesnego zbierania frakcji odpływowych. Bardzo ważne jest, aby oznaczyć odpływ w celu skorelowania metabolizmu z funkcją tkanek. Technologie mierzące oba te czynniki mogą lepiej oceniać mechanizmy komórkowe pośredniczące w funkcjonowaniu tkanek i chorobach.
Kluczowym wyzwaniem w pomiarze zużycia tlenu w żywej tkance jest dostarczenie odpowiedniej ilości tlenu w celu utrzymania żywotności i funkcji tkanek. Najlepiej osiągnąć to za pomocą systemów przepływowych. Zastosowanie ciśnienia gazu zamiast standardowych pomp perystaltycznych znacznie upraszcza procedurę, a także eliminuje tworzenie się pęcherzyków.
Użyteczność pomiaru metabolicznego jest tylko tak dobra, jak jego zdolność do ilościowego określania i odtwarzania wyników. Nasz protokół wykorzystuje połączenie precyzyjnie kontrolowanego natężenia przepływu ze stabilnym wykrywaniem tlenu rozpuszczonego w całym okresie eksploatacji zarówno na wlocie, jak i odpływie. Takie podejście może w powtarzalny sposób rozwiązać zmiany w zużyciu tlenu nawet o kilka procent.
Procesy biochemiczne pośredniczące w funkcjonowaniu siatkówki są wynikiem wzajemnego oddziaływania metabolicznego między różnymi tkankami oka. Zdolność naszego systemu przepływu do oceny wielu typów tkanek o różnych geometriach ułatwia badanie unikalnych wewnętrznych właściwości każdego typu komórek i ich skoordynowanych funkcji. Wiele chorób dotykających oko jest spowodowanych upośledzonymi szlakami metabolicznymi i sygnalizacją.
Koncentrujemy się na pomiarze zużycia tlenu i uwalniania metabolicznych produktów ubocznych przez tkanki oka w celu scharakteryzowania, zrozumienia i leczenia rozwoju chorób siatkówki i zwyrodnień. Aby skonfigurować nowatorski, wielokanałowy system hodowli przepływowej bez pompy po zmontowaniu modułu zbiornika pożywki lub MRM, włóż do niego zespoły przewodów i umieść MRM w podgrzewaczu. Po zabezpieczeniu grzałki na miejscu przystąp do wkładania zespołów komory tkankowej lub TCA do modułu komory perfuzyjnej lub PCM Za pomocą narzędzia do wprowadzania TCA włóż każdy z ośmiu TCA pojedynczo do otworów PCM.
Upewnij się, że mocno dociśniesz adapter narzędziem, aż górna część tulei rurki wokół każdej komory dotknie powierzchni, opisując otwory w PCM. Odłóż częściowo zmontowany PCM na bok wraz z klamrą PCM i sześcioma. 30 minut po złożeniu obudowy i po osiągnięciu żądanej temperatury przez MRM, za pomocą pipety o pojemności 50 mililitrów, przenieś wstępnie zrównoważony perfuzat do podgrzanej wkładki MRM, delikatnie rozpraszając ciecz po bokach.
Następnie, aby umieścić PCM na MRM, włóż rurki oporowe TCA wychodzące z dolnej części PCM do wkładek MRM, po cztery z każdej strony rozdzielacza MRM. Ustaw moduł tak, aby komory tkankowe opierały się o detektor tlenu po ustawieniu. Przymocuj PCM do wspornika za pomocą sześciu i śrubokręta elektrycznego.
Następnie zamocuj TCA w żebrach nośnych PCM za pomocą dołączonej elastycznej taśmy, rozciągając ją wokół żeber na poziomie gumowych uszczelek. Umieść detektor tlenu na stojaku detektora, upewniając się, że jego powierzchnia opiera się o żebra PCM. Dopasuj pary fotodetektora LED do barwnika wrażliwego na tlen w komorach tkankowych, poluzowując ustawione z boku uchwytu detektora i w razie potrzeby regulując boczne prowadnice detektora.
Na koniec umieść pokrywę na górze obudowy. Aby załadować tkankę do komór, poczekaj, aż poziom podłoża znajdzie się 0.5 cala od góry. Aby załadować pobraną siatkówkę lub twardówkę naczyniówkową RPE, za pomocą kleszczy precyzyjnych, delikatnie umieść siatkówkę bez składania jej do każdej komory.
W międzyczasie użyj chusteczki higienicznej, aby zapobiec kapaniu płynu z komory tkankowej na czujnik tlenu. Pozwól tkance opaść w kierunku i na FRET. Aby załadować komórki RPE na membrany Transwell, po przepaskowaniu przygotowanych komórek 0,25% trypsyny EDTA, umieść je na filtrach trawionych z politereftalanu etylenu o wielkości porów 0,4 milimetra.
W dniu eksperymentu pokrój błony na trzy paski o równej szerokości i załaduj je do komór tkankowych za pomocą kleszczy. Wskaźnik zużycia tlenu lub OCR siatkówki był stały w czasie wstrzykiwania badanych związków, co wskazuje na stabilny stan i funkcję tkanki oraz potwierdza ważność metody. Zgodnie z danymi uzyskanymi przy użyciu konwencjonalnych metod perfuzji zarówno dla siatkówki, jak i twardówki naczyniówki, OCR zmniejszył się w odpowiedzi na oligomycynę i zwiększył się w odpowiedzi na FCCP.
Zaobserwowane zmiany w szybkości produkcji mleczanu lub LPR były odwrotne do obserwowanych w przypadku OCR. Komórki RPE, które nie były wcześniej analizowane za pomocą systemów przepływowych, zareagowały podobnie do twardówki naczyniówki RPE przy użyciu tej metody.
Niniejsze badanie przedstawia nowatorski bezpompowy wielokanałowy system mikrofluidyczny do analizy tkanek żywych w czasie rzeczywistym, koncentrujący się na zużyciu tlenu i produktach przemiany materii w tkankach oka. Zastosowana metodologia zapewnia dokładne i powtarzalne generowanie danych, co jest kluczowe dla zrozumienia funkcji tkanek oraz mechanizmów chorobowych.
Stabilne utrzymanie i ocena tkanek oka w czasie rzeczywistym z wykorzystaniem bezpompowego wielokanałowego systemu mikroprzepływowego wypełnia krytyczną lukę w analizach metabolicznych na etapie odkrywania leków. Platforma ta umożliwia powtarzalną kwantyfikację zużycia tlenu oraz produkcji metabolitów, co zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej walidacji celów terapeutycznych i redukcji ryzyka mechanistycznego w procesie poszukiwania leków związanych z zaburzeniami widzenia. Możliwość jednoczesnej analizy wielu tkanek poprawia ciągłość translacyjną oraz proces podejmowania decyzji w ramach portfolio w badaniach i rozwoju (R&D) w dziedzinie okulistyki.
Ten bezpompowy system mikroprzepływowy integruje się z continuum od etapu odkryć do badań przedklinicznych, umożliwiając analizę metaboliczną opartą na hipotezach, opracowywanie testów oraz badania translacyjne w modelach okulistycznych.