9 lutego 2024
Genetycznie kodowane wskaźniki wapnia (GECI) umożliwiają solidną analizę na poziomie populacji sygnalizacji neuronów czuciowych. W tym miejscu opracowaliśmy nowatorskie podejście, które pozwala na wizualizację in vivo GECI aktywności neuronów zwojów nerwu trójdzielnego szczurów.
Ogólnym celem naszego laboratorium jest zrozumienie obwodowych mechanizmów bólu. Mój projekt skupia się na bólu związanym z uszkodzeniem nerwu trójdzielnego. Preparat, który dzisiaj pokazuję, pozwala nam scharakteryzować zmiany w kodowaniu sensorycznym i zidentyfikować subpopulacje aferentne przyczyniające się do bólu neuropatycznego.
Wykazaliśmy więc, że istnieją różnice między aferentami trójdzielnymi i somatycznymi w odpowiedzi na uszkodzenie nerwów. W szczególności Nav 1.1 jest preferencyjnie regulowany w górę w nerwie trójdzielnym, co sugeruje, że selektywne blokery dla Nav 1.1 mogą być stosowane do identyfikacji różnych subpopulacji aferentnych, które przyczyniają się do bólu neuropatycznego. Tak więc myszy transgeniczne są obecnie najszerzej stosowane w połączeniu z różnymi strategiami obrazowania i opartymi na omii.
Tłumaczenie danych generowanych u myszy na inne gatunki, jeśli nie ludzi. Myszy są naprawdę małe, trudno je wytresować, a lista różnic między myszami, szczurami i ludźmi rośnie. Tak więc wykorzystanie szczurów może pomóc w rozwiązaniu kilku z tych problemów.
Mechanizmy bólu i potencjalne cele terapeutyczne różnią się w strukturach twarzoczaszki, takich jak te nad szyją oraz inne struktury somatyczne i trzewne, tj. te poniżej szyi. Wyniki uzyskane dzięki temu preparatowi sugerują, że istnieje składnik bólu neuropatycznego, który wcześniej uważano, że odzwierciedla zmiany w ośrodkowym układzie nerwowym, ale w rzeczywistości może również odzwierciedlać zmiany w obwodowym układzie nerwowym.
Na początek użyj 25-mikrolitrowej strzykawki Hamiltona, aby dootrzewnowo wstrzyknąć znieczulonym szczeniętom szczurów 15 mikrolitrów agenu. Następnie zgol włosy i wąsy znieczulonych sześcio- lub ośmiotygodniowych szczeniąt, zamontuj szczura na stereotaktycznej ramie z nausznikami i umieść pod spodem poduszkę grzewczą, aby utrzymać temperaturę ciała zwierzęcia. Następnie umieść gazę zanurzoną w lodowatej soli fizjologicznej na głowie szczura, aby zminimalizować krwawienie.
Za pomocą skalpela w rozmiarze 15 wykonaj nacięcie na linii środkowej skóry i mięśnia nad czaszką. Odciągnij skórę i mięśnie, aby odsłonić czaszkę za pomocą okrągłego wiertła jeden na cztery, ostrożnie przebij nasadkę czaszki, aby odsłonić przodomózgowie. Następnie użyj rongeurs, aby przeciąć czaszkę.
Za pomocą skalpela w rozmiarze 15 wykonaj nacięcie w mózgu i opuszki węchowej. Użyj szpatułki, aby ostrożnie odłączyć oponę twardą od czaszki. Następnie delikatnie podnieś odcięty mózg, aby wyświetlić zwój nerwu trójdzielnego i podstawę czaszki.
Kauteryzuj wszelkie krwawienia za pomocą długopisu do kauteryzacji. Aby zobrazować GCaMP6s, umieść jamę czaszki pod obiektywem mikroskopu. Następnie ustaw ostrość na zwoju końcowym.
Następnie nałóż bodźce mechaniczne na jeden centymetr kwadratowy twarzy. Użyj obiektywu 20x, aby zwizualizować neurony zwoju nerwu trójdzielnego, które reagują na bodziec. Aby zebrać stato fluorescencyjne w czasie za pomocą oprogramowania do akwizycji, naciśnij przycisk akwizycji strumienia w menu akwizycji, a następnie ustaw liczbę klatek na 300 i czas akwizycji na 90 sekund.
Ustaw parametry aparatu, aby rejestrować obrazy z szybkością klatek. Uzyskano stabilne zapisy linii bazowej przez trzy minuty. Większa objętość miana wirusa powodowała zwiększoną infekcję neuronalną młodych szczurów.
Lekka symulacja mechaniczna aktywowała tylko obszar V2 zwoju nerwu trójdzielnego. Fluorescencja spoczynkowa była stosunkowo niska w większości neuronów, z niewielkimi spontanicznymi wzrostami. Naturalne bodźce, w szczególności stymulacja punktowa, wywoływały najsilniejsze reakcje neuronalne.
Bodźce szczotkowe w modelach przewlekłych urazów zwężonych wywołały dwukrotny wzrost wielkości szczytowej odpowiedzi po stronie zranionej w porównaniu ze stroną przeciwległą. Gdy dwa bodźce zostały zastosowane szeregowo, nastąpiło znaczne wzmocnienie w odpowiedzi na drugi bodziec.
W niniejszym badaniu zastosowano nowatorskie podejście do wizualizacji in vivo genetycznie kodowanych wskaźników wapnia (GECI) w celu analizy sygnalizacji neuronów czuciowych w zwojach trójdzielnych szczura. Badania koncentrują się na charakterystyce zmian w kodowaniu sensorycznym oraz subpopulacjach aferentnych w związku z bólem neuropatycznym po uszkodzeniu nerwu trójdzielnego.
Obrazowanie wapnia in vivo na poziomie populacji w neuronach zwoju trójdzielnego szczura umożliwia bezpośrednią kwantyfikację aktywności neuronów sensorycznych w odpowiedzi na określone bodźce, co wspiera mechanistyczne ograniczanie ryzyka w procesie odkrywania celów terapeutycznych w leczeniu bólu. Podejście to zapewnia pewność prognostyczną w walidacji celów w szlakach bólu neuropatycznego, szczególnie tam, gdzie różnice międzygatunkowe mogą wpływać na ciągłość translacyjną. Metoda ta wzmacnia wczesne punkty zwrotne w procesie odkrywania poprzez umożliwienie funkcjonalnej charakterystyki subpopulacji aferentnych istotnych dla zespołów bólu twarzowo-żuchwowego.
Ten schemat obrazowania in vivo integruje etapy od wczesnego odkrywania po walidację przedkliniczną, umożliwiając testowanie hipotez, redukcję ryzyka związanego z celami terapeutycznymi oraz dostosowanie translacyjne dla portfolio badań nad bólem.