November 3rd, 2023
Tutaj prezentujemy kombinację skutecznych metod ograniczania szczurów i nakłuwania żył podobojczykowych, które umożliwiają szybkie, bezpieczne i wielokrotne pobieranie krwi u szczurów bez znieczulenia.
Zakres naszych badań koncentruje się na opracowaniu metod pobierania próbek krwi od szczurów w celu ich wywołania. Naszym celem jest zapewnienie szybkich i bezpiecznych procedur, które są zgodne z zasadą radaru, przy minimalnym zaangażowaniu siły roboczej i zasobów. Jednym z obecnych wyzwań eksperymentalnych jest skuteczne unieruchomienie szczura w taki sposób, aby jednocześnie żyła podobojczykowa znajdowała się blisko powierzchni skóry w celu optymalnego pobrania krwi.
Zaletą naszego protokołu jest to, że wysokiej jakości próbki krwi mogą być szybko uzyskane przez osobę bez znieczulania szczurów. W dniu pobrania próbki krwi umieścić szczura w klatce o godzinie 8:00. Zważ jedzenie i wodę i umieść je w klatce. Zdefiniuj pomyślne pobranie krwi na podstawie następujących kryteriów.
Niech zaślepiony badacz zapisuje wagę szczura, spożycie pokarmu i spożycie wody codziennie o 8:00 rano. Następnie delikatnie pogłaszcz skórę grzbietu szczura i kilkakrotnie szczyp go w szyję, aby pomóc szczurowi się zrelaksować. Używając niedominujących rąk, kciuka i palca wskazującego, chwyć i unieś skórę szyi szczura. Używając pozostałych trzech palców i dłoni ręki niedominującej, zabezpiecz skórę grzbietu szczura i przy pomocy ręki dominującej unieruchamij jego przednie kończyny.
Używając palca wskazującego ręki niedominującej, delikatnie dociśnij skórę głowy szczura. Obróć staw barkowy na zewnątrz, a pozostałe palce wzdłuż dłoni, podczas gdy dominująca ręka całkowicie wyprostuje staw barkowy. Chwyć mocno szczura ręką niedominującą, aby ustawić jego głowę i ciało w linii prostej.
Zlokalizuj obojczyk ręką dominującą i potwierdź miejsce wstrzyknięcia. Zdezynfekować miejsce alkoholem, a następnie przepłukać strzykawkę heparyną sodową. Trzymaj strzykawkę równolegle do ciała szczura i dominującej ręki z końcówką igły skierowaną do góry, a wagą strzykawki skierowaną w stronę eksperymentatora.
Włóż igłę 0,5 centymetra poniżej wcięcia obojczyka. Delikatnie wyjąć strzykawkę, aby wytworzyć podciśnienie, zbierając od 0,1 do jednego mililitra krwi ze stałą prędkością. Zastosuj bawełniany wacik do hemostazy i włóż szczura z powrotem do klatki.
Średni czas pobierania krwi dla grup A i B był podobny w ciągu 96 godzin. Wskaźniki powodzenia pobierania krwi wyniosły 93,8% dla grupy A i 95,8% dla grupy B bez istotnej różnicy. Grupa A miała krótszy średni czas pobierania krwi w drugim dniu w porównaniu z czwartym dniem.
Liczba prób udanego pobrania krwi wynosiła średnio 1,21 dla grupy A i 1,17 dla grupy B. Więcej prób i dłuższe czasy nakłucia wskazywały na wyższy odsetek niepowodzeń. Obie grupy wykazywały stały przyrost masy ciała w ciągu czterech dni. Spożycie wody i pokarmu pozostało względnie stałe wśród szczurów tej samej płci.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Niniejsza praca prezentuje protokół skutecznego pobierania krwi od szczurów z wykorzystaniem kombinacji technik unieruchamiania i nakłucia żyły podobojczykowej. Metoda umożliwia szybkie i bezpieczne pobieranie próbek krwi bez konieczności znieczulenia.
Efficient, reproducible blood sampling in conscious rats is critical for high-throughput pharmacokinetic and toxicology studies in drug discovery. The subclavian vein technique enables rapid, high-quality sample collection by a single operator, reducing resource demands and minimizing animal stress. This approach supports scalable study designs and enhances data reliability across preclinical pipelines.
This subclavian vein sampling method integrates into the preclinical workflow from early discovery through lead optimization and translational studies.