Pobieranie próbek krwi z żyły podobojczykowej u przytomnych szczurów

Zakres naszych badań koncentruje się na opracowaniu metod pobierania próbek krwi od szczurów w celu ich wywołania. Naszym celem jest zapewnienie szybkich i bezpiecznych procedur, które są zgodne z zasadą radaru, przy minimalnym zaangażowaniu siły roboczej i zasobów. Jednym z obecnych wyzwań eksperymentalnych jest skuteczne unieruchomienie szczura w taki sposób, aby jednocześnie żyła podobojczykowa znajdowała się blisko powierzchni skóry w celu optymalnego pobrania krwi.

Zaletą naszego protokołu jest to, że wysokiej jakości próbki krwi mogą być szybko uzyskane przez osobę bez znieczulania szczurów. W dniu pobrania próbki krwi umieścić szczura w klatce o godzinie 8:00. Zważ jedzenie i wodę i umieść je w klatce. Zdefiniuj pomyślne pobranie krwi na podstawie następujących kryteriów.

Niech zaślepiony badacz zapisuje wagę szczura, spożycie pokarmu i spożycie wody codziennie o 8:00 rano. Następnie delikatnie pogłaszcz skórę grzbietu szczura i kilkakrotnie szczyp go w szyję, aby pomóc szczurowi się zrelaksować. Używając niedominujących rąk, kciuka i palca wskazującego, chwyć i unieś skórę szyi szczura. Używając pozostałych trzech palców i dłoni ręki niedominującej, zabezpiecz skórę grzbietu szczura i przy pomocy ręki dominującej unieruchamij jego przednie kończyny.

Używając palca wskazującego ręki niedominującej, delikatnie dociśnij skórę głowy szczura. Obróć staw barkowy na zewnątrz, a pozostałe palce wzdłuż dłoni, podczas gdy dominująca ręka całkowicie wyprostuje staw barkowy. Chwyć mocno szczura ręką niedominującą, aby ustawić jego głowę i ciało w linii prostej.

Zlokalizuj obojczyk ręką dominującą i potwierdź miejsce wstrzyknięcia. Zdezynfekować miejsce alkoholem, a następnie przepłukać strzykawkę heparyną sodową. Trzymaj strzykawkę równolegle do ciała szczura i dominującej ręki z końcówką igły skierowaną do góry, a wagą strzykawki skierowaną w stronę eksperymentatora.

Włóż igłę 0,5 centymetra poniżej wcięcia obojczyka. Delikatnie wyjąć strzykawkę, aby wytworzyć podciśnienie, zbierając od 0,1 do jednego mililitra krwi ze stałą prędkością. Zastosuj bawełniany wacik do hemostazy i włóż szczura z powrotem do klatki.

Średni czas pobierania krwi dla grup A i B był podobny w ciągu 96 godzin. Wskaźniki powodzenia pobierania krwi wyniosły 93,8% dla grupy A i 95,8% dla grupy B bez istotnej różnicy. Grupa A miała krótszy średni czas pobierania krwi w drugim dniu w porównaniu z czwartym dniem.

Liczba prób udanego pobrania krwi wynosiła średnio 1,21 dla grupy A i 1,17 dla grupy B. Więcej prób i dłuższe czasy nakłucia wskazywały na wyższy odsetek niepowodzeń. Obie grupy wykazywały stały przyrost masy ciała w ciągu czterech dni. Spożycie wody i pokarmu pozostało względnie stałe wśród szczurów tej samej płci.