28 czerwca 2024
Kwantyfikacja zarówno utlenionych, jak i zredukowanych form glutationu (odpowiednio GSSG i GSH) została osiągnięta dzięki zastosowaniu aldehydu ortoftaldehydu (OPA). OPA staje się wysoce fluorescencyjny po sprzęgnięciu z GSH, ale nie jest w stanie sprzęgnąć GSSG, dopóki nie zostanie zredukowany. W tym miejscu opisujemy test wieloparametryczny do ilościowego określenia obu przy użyciu kwantyfikacji białka w celu normalizacji.
Naszym celem jest zaoferowanie nowatorskiego sposobu ilościowego określania stężenia tio, ze szczególnym uwzględnieniem stężeń GSH i GSSG w różnych liniach komórkowych, które można przeprowadzić in situ. Uważamy, że jest to użyteczny protokół dla społeczności naukowej. Podjęto liczne wysiłki w celu wykrycia niszowych i specyficznych biomarkerów będących przedmiotem zainteresowania reaktywnych form tlenu.
Kilka z nich wykazało duże zainteresowanie wykrywaniem krótkożyciowych reaktywnych form tlenu, takich jak detekcja rodników i małych cząsteczek, takich jak hydroksyle i tlen singletowy. Jednym z kluczowych wyzwań stojących przed kilkoma instytucjami była możliwość dokładnego i precyzyjnego wykrywania interesujących biomarkerów bez konieczności stosowania drogiego sprzętu lub pracochłonnych procesów. Protokół ten pozwala na analizę wieloparametryczną, pozwalając na normalizację danych bez konieczności stosowania oddzielnych protokołów.
I usuń kilka etapów znalezionych w innych testach, które są bardzo czasochłonne, zawierają niekompatybilne odczynniki lub używają odczynników niebezpiecznych dla zdrowia. Grupa ds. Bezpieczeństwa Nanomateriałów będzie nadal oceniać różne nanomateriały i polimery pod kątem wpływu, jaki mogą mieć na zdrowie ludzi. Uważamy ten protokół za istotną część naszego zestawu narzędzi do osiągnięcia tego celu, ponieważ protokół ten może być potencjalnie multipleksowany w celu wykrycia dodatkowych biomarkerów.
Aby rozpocząć, przygotuj wszystkie wymagane materiały do testu. W przypadku standardów GSH dodaj 40 mikrolitrów całkowitego buforu glutationu do każdej studzienki. Następnie odessać pożywkę z każdej studzienki płytki zawierającej osad komórek i trzykrotnie umyć komórkę lodowatym PBS.
Przygotuj zakres kalibracji z 10 mikrolitrami glutationu i podwójnie destylowaną wodą w postaci ślepej próby w trzech egzemplarzach. W celu uzyskania pożądanej docelowej kwantyfikacji należy inkubować umyte komórki z odpowiednimi mieszaninami w wytrząsarce orbitalnej z prędkością 300 obr./min przez dwie minuty. Następnie dodaj pięć mikrolitrów 0,01-molowego roztworu 2-karboksyetyfosfiny Tris do każdej studzienki i ponownie inkubuj przez 10 minut.
Następnie odwirować płytkę o sile 200 G przez pięć minut. I przenieś 25 mikrolitrów z każdej studzienki na oddzielną, przezroczystą 96-dołkową płytkę w celu ilościowego określenia białka. Następnie dodaj 170 mikrolitrów roboczego roztworu ortoftaldehydu do każdej studzienki zawierającej 30 mikrolitrów próbek.
Aby osłonić płytkę przed światłem, przykryj ją dokładnie folią i inkubuj w wytrząsarce orbitalnej przez 15 minut. Na koniec odczytaj fluorescencję za pomocą czytnika płytek przy wzbudzeniu 340 nanometrów i emisji 450 nanometrów. Komórki A-549 potraktowane różnymi nanomateriałami wykazały różne proporcje dwusiarczku glutationu w tym teście.
Najwyższą wartość zaobserwowano dla komórek, którym podawano 125 mikrogramów na mililitr srebra.
Niniejsze badanie przedstawia nowy protokół ilościowego oznaczania stężeń zredukowanego (GSH) i utlenionego (GSSG) glutationu w różnych liniach komórkowych. Metoda ta wykorzystuje ortoftalaldehyd (OPA) do detekcji fluorescencyjnej, co umożliwia efektywną normalizację danych bez konieczności stosowania rozbudowanych procedur.
Ilościowa ocena zredukowanego i utlenionego glutationu w hodowlach komórek ssaków jest kluczowa dla oceny stanu redoks komórek oraz odpowiedzi na stres oksydacyjny we wczesnych etapach odkrywania leków. Ten test oparty na OPA umożliwia szybką, multipleksową kwantyfikację GSH i GSSG, wspierając rzetelną analizę biomarkerów bez konieczności stosowania specjalistycznej aparatury. Zgodność protokołu z testami normalizacji i cytotoksyczności usprawnia integrację danych w ramach procesów odkrywania leków oraz badań przedklinicznych.
Ta metoda ilościowego oznaczania glutationu oparta na OPA wpisuje się w kontinuum od wczesnego etapu odkrywania do badań przedklinicznych, umożliwiając płynną integrację analizy biomarkerów redoks z identyfikacją związków wiodących oraz badaniami mechanistycznymi.