Name: Analiza elektrokardiogramów i zachowania myszy od ciąży do okresu laktacji (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-04-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Poznaj analizę EKG i zachowania myszy od ciąży do laktacji przy użyciu systemu telemetrycznego. Ta metoda umożliwia ciągłe monitorowanie aktywności autonomicznej i naturalnych zachowań matek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

To badanie było wspierane przez JSPS KAKENHI (Granty o numerach JP 21H04981 i 30974521) oraz Center for Diversity, Equity & Inclusion, Azabu University.

Wszystkie procedury zostały zatwierdzone przez Komisję Etyki Uniwersytetu Azabu (#210319-30). Do niniejszego badania wykorzystano myszy C57B/6J w dniu ciąży (GD) 14 o masie ciała powyżej 22 g. Zwierzęta zostały pozyskane ze źródła komercyjnego (patrz tabela materiałów). Odczynniki i sprzęt potrzebne do badania są wymienione w Tabeli Materiałów.
1. Przygotowanie eksperymentalne
<ol>
	<li>Włącz grzejnik panelowy i przykryj go folią aluminiową. Przetrzyj wszystkie powierzchnie 70% etanolem.</li>
	<li>Wszystkie narzędzia chirurgiczne (nożyczki, kleszcze, cienka pęseta i pęseta) zostały wcześniej autoklawowane.</li>
	<li>Przygotuj sterylne szwy na żądaną długość i trzymaj je w gotowości.</li>
	<li>Przykryj maski anestezjologiczne gumowymi maskami, aby zapewnić sterylność i komfort pacjenta.</li>
	<li>Sprawdź telemetr biopotencjału myszy (<silna klasa="xfig">Rysunek 1A) pod kątem wszelkich nieprawidłowości lub uszkodzeń za pomocą aplikacji tBase i LabChart (oprogramowanie do analizy danych fizjologicznych) zainstalowanych na komputerze zdolnym do nagrywania.</li>
</ol>
2. Wszczepienie telemetru
<ol>
	<li>Umieść mysz w indukcyjnym pudełku anestezjologicznym z 4% izofluranem.</li>
	<li>Po osiągnięciu chirurgicznej płaszczyzny znieczulenia umieść mysz w pozycji leżącej na grzejniku panelowym. Umieść maskę anestezjologiczną na myszy, utrzymując poziom izofluranu 1%-2,0% i przepływ tlenu na poziomie 0,5-2 l/min. 
	UWAGA: W tym protokole nie zastosowano żadnych leków przeciwbólowych, biorąc pod uwagę ich wpływ na płód i obserwacje behawioralne.</li>
	<li>Użyj maszynki do strzyżenia, aby usunąć sierść między uszami i trzykrotnie zdezynfekuj skórę naprzemiennie środkami dezynfekującymi na bazie jodu i 70% alkoholu.</li>
	<li>Aby potwierdzić chirurgiczną płaszczyznę znieczulenia, uszczypnij palce tylnych łap myszy pęsetą. Wykonaj nacięcie (2-3 cm) w skórze między uszami za pomocą nożyczek. Włóż kleszcze do nacięcia, aby oddzielić skórę i mięśnie wokół szyi i strony brzusznej, tworząc przestrzeń po stronie brzusznej specjalnie do umieszczenia telemetrii.</li>
	<li>Włóż telemetr przez nacięcie między uszami i umieść go w brzusznej przestrzeni bocznej.</li>
	<li>Użyj kleszczy, aby zwinąć i związać dodatnie i ujemne przewody. Umieść przewody w przestrzeni szyjki (<silna klasa="xfig">Rysunek 1B).</li>
	<li>Zszyć nacięcie za pomocą igły 13 mm i szwu 20 cm, uważając, aby nie uszkodzić przewodów.</li>
	<li>Umieść mysz w pozycji leżącej na plecach i zerwij futro wokół obojczyka maszynką do strzyżenia. Zdezynfekuj skórę trzykrotnie naprzemiennie środkami dezynfekującymi na bazie jodu i 70% alkoholu.</li>
	<li>Wykonaj małe nacięcie wokół skóry obojczyka nożyczkami i oddziel mięśnie od skóry szyi. Wyciągnij dodatnie i ujemne przewody z tyłu szyi za pomocą kleszczy.</li>
	<li>Użyj kleszczy, aby oddzielić gruczoły ślinowe i odsłonić "V-kształtny" wygląd mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego (SCM), który pochodzi z obojczyka i przemieszcza się ukośnie po każdej stronie szyi (<silna klasa = "xfig" >Rysunek 1C, D).</li>
	<li>Dostosuj długość ujemnego przewodu, aby dotrzeć do SCM w pobliżu obojczyka. Ostrożnie wyjmij rurkę ołowianą z przewodu ujemnego, upewniając się, że zwinięta elektroda ze stali nierdzewnej wewnątrz jest rozciągnięta za pomocą cienkiej pęsety.</li>
	<li>Przełóż igłę do szycia (7 mm) z 10 cm szwem przez zagięcie SCM w kształcie litery V, aby utworzyć pętlę. Przełóż elektrodę ze stali nierdzewnej z przewodu ujemnego przez tę pętlę i umieść ją pod SCM w pobliżu obojczyka.
	<ol>
		<li>Lekko zawiąż pętlę, aby uniknąć uszkodzenia SCM i powtórz trzy razy, aby zabezpieczyć elektrodę ze stali nierdzewnej. Zabezpiecz przewód ujemny dalej, umieszczając drugi szew po stronie czaszki SCM i zawiązując go wokół rurki przewodu ujemnego (<klasa silna = "xfig">Rysunek 1E).</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wykonaj sekcję wokół wyrostka mieczykowatego i ostrożnie oddziel skórę od mięśnia od wyrostka mieczykowatego do obojczyka.</li>
	<li>Przedłuż dodatni przewód, aby dotrzeć do wyrostka mieczykowatego. Podobnie jak w przypadku przewodu ujemnego, wyjmij rurkę ołowianą z przewodu dodatniego, upewniając się, że zwinięta elektroda ze stali nierdzewnej wewnątrz jest rozciągnięta za pomocą cienkiej pęsety.</li>
	<li>Użyj igły 18 G, aby utworzyć tunel pod mięśniem wokół wyrostka mieczykowatego, a następnie umieść elektrodę ze stali nierdzewnej w igle i przepuść ją przez mięsień wokół wyrostka mieczykowatego.</li>
	<li>Po wyjęciu igły delikatnie przymocuj zwiniętą elektrodę ze stali nierdzewnej do mięśnia wokół wyrostka mieczykowatego za pomocą igły do szycia (7 mm) z 10 cm szwem (<silna klasa="xfig">Rysunek 1D). Aby dodatkowo zabezpieczyć przewód dodatni, umieść drugi szew po stronie czaszki wyrostka mieczykowatego i zawiąż go wokół rurki przewodu dodatniego.</li>
	<li>Zamknij wszystkie nacięcia za pomocą igły do szycia (13 mm) o długości szwu 20 cm (<silna klasa="xfig">Rysunek 1E,F).</li>
	<li>Po implantacji umieść mysz w czystej klatce i umieść klatkę na tBase, która działa jako odbiornik telemetrii myszy (Rysunek 1G). Włącz komputer z możliwością nagrywania i użyj zainstalowanej aplikacji do analizy danych, aby zebrać dane EKG. Sprawdź, czy dane EKG wyświetlają normalne przebiegi (<silna klasa="xfig">Rysunek 2A,B). 
	UWAGA: W przypadku nieprawidłowych przebiegów lub szumów (jak pokazano na <silna klasa="xfig">Rysunek 2C), ponownie podłącz ujemne i dodatnie przewody w znieczuleniu.</li>
	<li>Podczas dwudniowego okresu rekonwalescencji upewnij się, że mysz jest odpowiednio traktowana, umieszczając wodę, żel i jedzenie na dnie klatki. Rejestruj tylko zachowanie klatki domowej za pomocą rejestratora dysku podczas tego okresu odzyskiwania.</li>
</ol>
3. Zapis EKG i zachowania w klatce domowej od ciąży do odsadzenia
<ol>
	<li>Włącz czerwone światła w fazie ciemności, ponieważ rejestrator napędu nie może działać bez światła. Umieść rejestrator dysku przy klatce domowej, aby rejestrować zachowanie. Nagrywaj EKG za pomocą aplikacji LabChart na komputerze z możliwością nagrywania. Przed zebraniem danych EKG sprawdź częstotliwość próbkowania EKG w LabChart. 
	UWAGA: W tym protokole rejestrator napędu został wybrany, ponieważ można go umieścić w dowolnym miejscu. Dodatkowo, w porównaniu z kamerą wideo, rejestratory dysków mogą nagrywać pod szerokim kątem i zużywać mniejszą pojemność pamięci masowej (na przykład nagrywanie 24 godziny za pomocą rejestratora dysku zużywa około 70 GB). W tej demonstracji częstotliwość próbkowania EKG w oprogramowaniu do analizy danych jest ustawiona na 1 k/s.</li>
	<li>Po włączeniu rejestratora dysku uruchom LabChart na komputerze, aby zarejestrować zachowanie i EKG. 
	UWAGA: W tej demonstracji wykorzystano makro do ciągłego rejestrowania EKG i automatycznego zapisywania plików co 2 godziny. Ten powtarzający się proces był wykonywany przez cały czas trwania eksperymentu. Dodatkowo do celów nagraniowych wybrano kartę SD o pojemności 256 GB, co pozwala na zbieranie danych przez około 24 godziny dziennie.</li>
	<li>Sprawdź mysz pod kątem przebiegu porodu i nieprawidłowości ciała, a następnie pobierz próbki danych z rejestratora dysku i komputera z możliwością nagrywania. Dzień, w którym mysz urodziła młode, jest uważany za dzień po urodzeniu (PD) 0. Mierz wagę szczeniąt codziennie po urodzeniu. 
	UWAGA: W tym badaniu nagranie wideo z rejestratora dysku i plik danych EKG z nagrywanego komputera były zbierane codziennie rano od 7:30 do 8:30. Dodatkowo, aby zapobiec szumowi EKG spowodowanemu wibracjami spowodowanymi dotykaniem matki przez wiele młodych, miot został podzielony na cztery młode (połowa z nich była płci męskiej, a druga połowa płci żeńskiej).</li>
	<li>Po sprawdzeniu myszy i zebraniu danych przywróć wszystko do pierwotnej pozycji. Włącz nagrywarkę napędu i komputer z możliwością nagrywania. Uruchom aplikację LabChart. 
	UWAGA: Jeśli makro jest używane do nagrywania EKG, kliknij przycisk makra i zainicjuj makro, wybierając przycisk uruchamiania z opcji zarządzaj.</li>
	<li>Raz w tygodniu wymieniaj klatkę na nową. Podczas tego procesu dołącz pościel, z której połowa jest wcześniej używana, a druga połowa jest nowa. 
	UWAGA: Proces ten, obejmujący pobieranie próbek danych i kontrole na myszach, powtarzano od GD 17 do 21 dnia po urodzeniu (PD).</li>
</ol>
4. Analiza EKG
<ol>
	<li>Aby przeanalizować dane EKG, użyj oprogramowania do analizy danych. Uruchom program LabChart i otwórz plik danych dla okresu nagrywania. Aby przeanalizować zmienność tętna (HRV), kliknij przycisk HRV i dostosuj ustawienia wykrywania dudnienia. 
	UWAGA: W tej demonstracji wybierz ustawienie niestandardowe i zmień minimalną wysokość piku na 1,2 w celu regulacji wykrywania.</li>
	<li>Po dostosowaniu ustawień przejrzyj wszystkie uderzenia i usuń wszelkie dane dotyczące szumów (jak pokazano na Rysunek 2C). 
	UWAGA: Jeśli fala R nie zostanie wykryta, dodaj ją lub zmodyfikuj za pomocą przycisku HRV.</li>
	<li>Kliknij przycisk HRV i wybierz widok klasyfikatora dudnienia. Wybierz wszystkie uderzenia w widoku klasyfikatora uderzeń, a następnie wybierz widok raportu za pomocą przycisku HRV. Skopiuj dane z widoku raportu i wklej je do pliku Excel. 
	UWAGA: Wyniki HRV, jak pokazano w Tabeli 1, wyświetlają zarówno domenę czasu, jak i widma za pomocą oprogramowania do analizy danych, umożliwiając obserwację.</li>
</ol>
5. Kategoryzacja etogramu zachowania w klatce domowej
<ol>
	<li>Przejrzyj wszystkie nagrane filmy, aby sprawdzić, czy nie ma nieprawidłowości, takich jak czerwone światło, które nie włącza się w ciemnej fazie, a rejestrator dysku nie działa. 
	UWAGA: Film jest nagrywany w taki sam sposób jak EKG, przy czym klipy wideo są rejestrowane co 2 godziny.</li>
	<li>Kategoryzuj etogram na podstawie parametrów, takich jak postawa matki podczas zachowania, czas spędzony na zachowaniu i miejsce, w którym wystąpiło zachowanie (Tabela 2), a następnie obserwuj wideo z rejestratora napędu.</li>
</ol>

Mouse Maternal Autonomic Changes from Pregnancy to Pup-Rearing

<ol><li>Bowlby, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBowlby%2C+J+%22Attachment+and+loss.+Vol.+1%22">Attachment and loss. Vol. 1</a>. 1, Basic Books. New York. (1969).</li>
<li>Teicher, M. H., Samson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Childhood+maltreatment+and+psychopathology%3A+A+case+for+ecophenotypic+variants+as+clinically+and+neurobiologically+distinct+subtypes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Childhood maltreatment and psychopathology: A case for ecophenotypic variants as clinically and neurobiologically distinct subtypes.</a> Am J Psychiatry. 170 (10), 1114-1133 (2013).</li>
<li>Hoskins, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Consequences+of+parenting+on+adolescent+outcomes%5BTitle%5D)+AND+%22Societies%22%5BJournal%5D)">Consequences of parenting on adolescent outcomes.</a> Societies. 4 (3), 506-531 (2014).</li>
<li>Caldji, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maternal+care+during+infancy+regulates+the+development+of+neural+systems+mediating+the+expression+of+fearfulness+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Maternal care during infancy regulates the development of neural systems mediating the expression of fearfulness in the rat.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (9), 5335-5340 (1998).</li>
<li>Sakamoto, T., Ishio, Y., Ishida, Y., Mogi, K., Kikusui, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+maternal+licking%2Fgrooming+stimulation+increases+pain+sensitivity+in+male+offspring%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Anim%22%5BJournal%5D)">Low maternal licking/grooming stimulation increases pain sensitivity in male offspring.</a> Exp Anim. 70 (1), 13-21 (2021).</li>
<li>Champagne, F., Meaney, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Like+mother%2C+like+daughter%3A+Evidence+for+non-genomic+transmission+of+parental+behavior+and+stress+responsivity%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Like mother, like daughter: Evidence for non-genomic transmission of parental behavior and stress responsivity.</a> Prog Brain Res. 133, 287-302 (2001).</li>
<li>Terkel, J., Rosenblatt, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maternal+behavior+induced+by+maternal+blood+plasma+injected+into+virgin+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Physiol+Psychol%22%5BJournal%5D)">Maternal behavior induced by maternal blood plasma injected into virgin rats.</a> J Comp Physiol Psychol. 65 (3), 479-482 (1968).</li>
<li>Amenomori, Y., Chen, C. L., Meites, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serum+prolactin+levels+in+rats+during+different+reproductive+states%5BTitle%5D)+AND+%22Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Serum prolactin levels in rats during different reproductive states.</a> Endocrinology. 86 (3), 506-510 (1970).</li>
<li>Yaguchi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+modulation+of+pulsatile+activities+of+oxytocin+neurons+in+lactating+wild-type+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Dynamic modulation of pulsatile activities of oxytocin neurons in lactating wild-type mice.</a> PloS One. 18 (5), e0285589(2023).</li>
<li>Kikusui, T., Isaka, Y., Mori, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+weaning+deprives+mouse+pups+of+maternal+care+and+decreases+their+maternal+behavior+in+adulthood%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Early weaning deprives mouse pups of maternal care and decreases their maternal behavior in adulthood.</a> Behav Brain Res. 162 (2), 200-206 (2005).</li>
<li>Kodogo, V., Azibani, F., Sliwa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+pregnancy+hormones+and+hormonal+interaction+on+the+maternal+cardiovascular+system%3A+a+literature+review%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Role of pregnancy hormones and hormonal interaction on the maternal cardiovascular system: a literature review.</a> Clin Res Cardiol. 108 (8), 831-846 (2019).</li>
<li>Burke, S. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulatory+and+renal+consequences+of+pregnancy+in+diabetic+NOD+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Placenta%22%5BJournal%5D)">Circulatory and renal consequences of pregnancy in diabetic NOD mice.</a> Placenta. 32 (12), 949-955 (2011).</li>
<li>Feldman, R., Magori-Cohen, R., Galili, G., Singer, M., Louzoun, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mother+and+infant+coordinate+heart+rhythms+through+episodes+of+interaction+synchrony%5BTitle%5D)+AND+%22Infant+Behav+Dev%22%5BJournal%5D)">Mother and infant coordinate heart rhythms through episodes of interaction synchrony.</a> Infant Behav Dev. 34 (4), 569-577 (2011).</li>
<li>Yoshida, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infants+show+physiological+responses+specific+to+parental+hugs%5BTitle%5D)+AND+%22iScience%22%5BJournal%5D)">Infants show physiological responses specific to parental hugs.</a> iScience. 23 (4), 100996(2020).</li>
<li>Wass, S. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parents+mimic+and+influence+their+infant%27s+autonomic+state+through+dynamic+affective+state+matching%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Parents mimic and influence their infant's autonomic state through dynamic affective state matching.</a> Curr Biol. 29 (14), 2415-2422 (2019).</li>
<li>Esposito, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Infant+calming+responses+during+maternal+carrying+in+humans+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Infant calming responses during maternal carrying in humans and mice.</a> Curr Biol. 23 (9), 739-745 (2013).</li>
<li>Khandoker, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+the+effect+of+cholinergic+and+adrenergic+blocking+agents+on+maternal-fetal+heart+rates+and+their+interactions+in+mice+fetuses%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Open%22%5BJournal%5D)">Investigating the effect of cholinergic and adrenergic blocking agents on maternal-fetal heart rates and their interactions in mice fetuses.</a> Biol Open. 11 (4), (2022).</li>
<li>Widatalla, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlation+between+maternal+and+fetal+heart+rate+increases+with+fetal+mouse+age+in+typical+development+and+is+disturbed+in+autism+mouse+model+treated+with+valproic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Correlation between maternal and fetal heart rate increases with fetal mouse age in typical development and is disturbed in autism mouse model treated with valproic acid.</a> Front Psychiatry. 13, 998695(2022).</li>
<li>Mezzacappa, E. S., Tu, A. Y., Myers, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lactation+and+weaning+effects+on+physiological+and+behavioral+responses+to+stressors%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Lactation and weaning effects on physiological and behavioral responses to stressors.</a> Physiol Behav. 78 (1), 1-9 (2003).</li>
<li>Slangen, B. F., Out, I. C., Janssen, B. J., Peeters, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+pressure+and+heart+rate+variability+in+early+pregnancy+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Blood pressure and heart rate variability in early pregnancy in rats.</a> Am J Physiol. 273 (4), 1794-1799 (1997).</li>
</ol>

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów.

W tej metodzie, w której telemetr został wszczepiony ciężarnym myszom, EKG mogło być stale śledzone u tej samej myszy od ciąży do laktacji. Mysz wykazywała etogramy, które obejmowały ruch, wskazując na czuwanie we wszystkich okresach analizy (23:32-23:42) od GD 17 do PD 21. Dodatkowo obecne wyniki wykazały, że częstość akcji serca stopniowo zmniejszała się od ciąży do laktacji. Uważa się, że spadek ten jest spowodowany normalizacją częstości akcji serca, ponieważ kilka badań wykazało, że częstość akcji serca wzrasta u kobiet w ciąży z powodu zwiększonego przepływu krwi11,12.
Co więcej, aktywność współczulna wzrosła z PD 0 do PD 21 u tej samej myszy. Nie stwierdzono jednak zmian w aktywności współczulnej lub przywspółczulnej od GD 17 do PD 0. Podobnie jak w przypadku danych dotyczących współczulności w czasie ciąży, poprzednie badania nie wykazały żadnych zmian w aktywności współczulnej i przywspółczulnej u szczurów od 4 do 18 dnia ciąży w porównaniu z tymi u dziewiczych szczurów20. U myszy matczyna aktywność autonomiczna może być modulowana przez rozwój młodych. Potrzebne są jednak dalsze badania, aby ustalić, czy te cechy aktywności autonomicznej są powszechne wśród matek myszy, czy też ma na nie wpływ stan czuwania.
Niektóre wcześniejsze badania na myszach mierzyły EKG podczas ciąży i laktacji z ograniczeniami ruchu i naturalnego zachowania, ponieważ matka była odizolowana od młodych lub pod narkozą 17,18,19. Wręcz przeciwnie, metoda zastosowana w tym badaniu pozwoliła matce na swobodne poruszanie się podczas zapisu EKG, ponieważ telemetria i przewód elektrody połączone z mięśniem zostały wszczepione podskórnie. W szczególności EKG było rejestrowane, gdy matka jadła i obracała głowę do góry, mimo że ujemne odprowadzenia były podłączone do SCM.
Dodatkowo wszczepienie urządzenia in vivo pozwoliło na stabilne nagrywanie, nawet przy kontakcie ze współżyjącymi ze sobą młodymi lub wibracjach spowodowanych aktywnością matki. Na przykład EKG mierzono nawet wtedy, gdy matka wykazywała samodzielną pielęgnację (dane nie pokazano) i kucanie nad młodymi w klatce domowej. Opierając się na tych wynikach, metoda ta jest skuteczna w śledzeniu EKG matek, które spędzają codzienne życie ze swoimi młodymi bez żadnych ograniczeń dotyczących ich zachowania. Jednak EKG nie było rejestrowane, gdy telemetria użyta w tym badaniu znajdowała się w pewnej odległości od tBase; Na przykład, gdy matki poruszały się w kierunku uchwytu na pokarm lub wspinały się na klatkę. Dlatego konieczne są ulepszenia w środowisku klatek domowych.
Metoda ta pozwala również na rejestrację EKG podczas wykonywania czynności, takich jak zachowania matczyne i ogólne. Aby jednocześnie rejestrować zachowanie i EKG w klatce domowej przez długi czas, zamiast kamery wideo użyto rejestratora dysku5 . Dodatkowo, aby szczegółowo przeanalizować zarejestrowane zachowania, etogramy podzielono na podstawie parametrów, takich jak postawa, spędzony czas i inne warunki zarówno dla zachowań matczynych, jak i ogólnych. EKG matek dla każdego zachowania można podzielić i porównać tego samego dnia. To porównanie pokazuje, jak autonomiczna aktywność matki różni się między zachowaniami matczynymi i ogólnymi w zależności od okresu ciąży do laktacji.
Podsumowując, protokół ten śledzi interakcję między trzema czynnikami: aktywnością autonomiczną, zachowaniem matki i rozwojem szczeniąt, a także może zapewnić wgląd w cechy i mechanizmy zmian, które zachodzą u matek od ciąży do odsadzenia.

Relacja matka-potomstwo jest wyjątkowa wśród relacji nawiązanych przez różne gatunki zwierząt, ze względu na jej ogromny wpływ na przyszłość potomstwa1. U ludzi na rozwój i wewnętrzne/zewnętrzne zachowania dzieci ma wpływ styl rodzicielstwa, a także zakres znęcania się i zaniedbywania2,3. Podobnie u gryzoni jakość zachowania matki ma znaczący wpływ na rozwój i zachowanie młodych4,5,6. Dlatego szczegółowe śledzenie i badanie zachowań opiekuńczych matek może dostarczyć wglądu w mechanizmy indywidualnych różnic w rozwoju i zdrowym wsparciu ich potomstwa.
Badania behawioralne i fizjologiczne wykazały, że matki ssaków przechodzą dynamiczne zmiany behawioralne i fizjologiczne od ciąży do laktacji. Kiedy samice ssaków zachodzą w ciążę, wydzielanie estrogenu i innych hormonów zmienia się na zachowanie matki7. Wraz ze wzrostem potomstwa i spadkiem częstości laktacji, wydzielanie hormonów dynamicznie zmienia się w kierunku stanu sprzed ciąży, kładąc kres ekspresji zachowań matczynych8,9,10. Odkrycia te sugerują, że interakcja między układem hormonalnym, zachowaniem matki i rozwojem potomstwa odgrywa ważną rolę w zmianach, których doświadczają matki ssaków podczas ciąży i laktacji.
Zmiany behawioralne i fizjologiczne u matek ssaków od ciąży do laktacji są ściśle związane nie tylko z układem hormonalnym, ale także z autonomicznym układem nerwowym11,12. Badania na ludziach sugerują, że kontakt matki z dzieckiem wywołuje zmiany w autonomicznym układzie nerwowym zarówno matek, jak i niemowląt13. W kilku badaniach mierzono elektrokardiogram (EKG) i zmienność rytmu serca u ludzkich matek i niemowląt, wykazując, że każde zachowanie zmienia tętno i interwał RR u pozostałych14,15,16. Nie jest jednak jasne, w jaki sposób te trzy czynniki – autonomiczny układ nerwowy, zachowanie matki i rozwój potomstwa – oddziałują na siebie nawzajem od ciąży do laktacji. Co więcej, trudno jest monitorować te interakcje u ludzi przez długi czas, ponieważ okres laktacji u człowieka wynosi około dwóch lat.
Gryzonie są często używane zamiast ludzi w takich badaniach. Autonomiczny układ nerwowy gryzoni został zmierzony w znieczuleniu lub po odizolowaniu od szczeniąt, aby zapobiec niestabilnemu zapisowi i uszkodzeniu urządzenia pomiarowego; W związku z tym pomiar jest czasowy w sytuacjach ograniczonych behawioralnie<klasa SUP="xref">17,<klasa SUP="Xref">18,<klasa SUP="Xref">19. Niezbędna jest obserwacja autonomicznego układu nerwowego w środowisku, w którym gryzonie mogą się swobodnie poruszać i komunikować z innymi, ponieważ interakcje matka-szczenię mogą zmienić zachowanie i fizjologię matek8,9,10,15.
Ta eksperymentalna metoda została opracowana, aby umożliwić matce swobodne poruszanie się. W tej metodzie telemetr EKG został podłączony podskórnie do ciężarnej matki, aby zapobiec uszkodzeniu urządzenia i umożliwić stabilny, długoterminowy zapis EKG od ciąży do laktacji. Matki myszy mogą wykazywać ogólne zachowania (samopielęgnacja, przyjmowanie pokarmu itp.) i zwykłe zachowania matczyne w swojej domowej klatce; dzięki temu każde zachowanie i EKG można łatwo obserwować i porównywać w tej samej myszy. Rejestrator dysku rejestrował zachowanie myszy przez 24 godziny przez okres czterech tygodni. Ten eksperymentalny protokół pozwolił nam śledzić dynamiczne zmiany w aktywności i zachowaniu autonomicznym od ciąży do okresu macierzyństwa.

<table><tbody><tr><td>24-godzinny zegar powtarzalny</td><td>Panasonic</td><td>WH3311BP</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Nylonowy szew</td><td>Natsume Seisakusho</td> <td>Co-23s-N2</td><td></td></tr><tr><td>Pudełko anestezjologiczne</td><td>Natsume Seisakusho Co</td><td>KN-1010</td><td>W110 razy; D110 razy; </td></tr><tr><td>Maska anestezjologiczna</td> H110mm <td>Natsume Seisakusho Co</td><td>KN-1019-1</td><td></td></tr><tr><td>Maszyna anestezjologiczna</td><td>Natsume Seisakusho Co</td><td>KN-1071-E</td><td></td></tr><tr><td>C57BL6/J myszy</td><td>Clea Japan, Inc</td><td></td><td>Mysz ciążowa w 14 dniu</td></tr><tr><td>Clip light</td><td>Yazawa corporation</td><td>CLX60X02WH</td><td></td></tr><tr><td>Konfigurator System</td><td>Adinstruments</td><td>TR190</td><td></td></tr><tr><td>rejestrator napędu</td><td>Transcend</td><td>TS-DP250A-32G</td><td></td></tr><tr><td>Uchwyt na żywność</td><td>Clea Japan, Inc</td><td>CL-2802</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>FujiFilM</td><td>099-06571</td><td></td></tr><tr><td>LabChart Pro V8</td><td>Adinstituments</td><td>MLU260/8</td><td></td></tr><tr><td>LabChart8</td><td>Adinstituments</td><td>MLS060/8</td><td></td></tr><tr><td>Adiunkty</td><td>telemetru biopotencjału myszy</td><td>MT10B</td><td></td></tr><tr><td>Igła 18 G 1 1/2</td><td>Terumo</td><td>NN-1838R</td><td></td></tr><tr><td>Grzejnik panelowy</td><td>SANKO</td><td>4976285145407</td><td></td></tr><tr><td>PowerLab 4/26</td><td>Dodatki</td><td>PL2604</td><td></td></tr><tr><td>Mysz komputerowa z możliwością nagrywania</td><td>Mysz komputerowa</td><td>Mysz komputerowa K7-H</td><td></td></tr><tr><td>czerwona żarówka</td><td>ELPA</td><td>LDG1R-G-GWP254</td><td></td></tr><tr><td>Gumowa maska</td><td>Natsume Seisakusho Co</td><td>Karta SD KN-1019-M</td><td></td></tr><tr><td>(256 GB)</td><td>Transcend</td><td>TS256GUSD350V</td><td>Może nagrywać około 24 godzin</td></tr><tr><td>Igła do szwów 13 mm</td><td>Natsume Seisakusho Co</td><td>C-24-540-NO.0</td><td></td></tr><tr><td>Igła do szwów 7 mm</td><td>Natsume Seisakusho Co</td><td>C-24-540-NO.0000</td><td></td></tr><tr><td>tBase</td><td>Adinstituments</td><td>MT110</td><td></td></tr></tbody></table>

analiza elektrokardiogramów i zachowania myszy od ciąży do okresu laktacji

Analysis of Electrocardiograms and Behavior in Mice from Pregnancy to Lactation Period

Zmianom w relacji matka-potomstwo prawdopodobnie towarzyszą dynamiczne zmiany w autonomicznym układzie nerwowym. Chociaż przeprowadzono czasowe pomiary aktywności autonomicznej u ludzkich matek i niemowląt, analiza długoterminowych zmian pozostaje niezbadana. Mysie matki mogą tworzyć więzi społeczne ze swoimi młodymi i mają krótki okres ciąży i laktacji, co czyni je przydatnymi do badania zmian fizjologicznych od ciąży do wychowywania młodych. W związku z tym przez kilka tygodni stosowano system telemetryczny do pomiaru zmian w autonomicznym układzie nerwowym i zachowaniu mysich matek. Obecne wyniki pokazały, że elektrokardiogram (EKG) może być stabilnie rejestrowany niezależnie od ruchów matki i porodu. Analiza EKG wykazała, że częstość akcji serca stopniowo zmniejszała się od ciąży do laktacji, a aktywność współczulna gwałtownie wzrastała wraz z rozwojem młodych. Co więcej, jednoczesny zapis zachowania i EKG w klatce domowej pozwolił nam zrozumieć zależne od zachowania wpływy na EKG, ujawniając w ten sposób charakterystykę autonomicznej aktywności nerwowej podczas każdego zachowania. W związku z tym niniejsza metoda eksperymentalna pomaga zrozumieć, w jaki sposób zmieniają się cechy fizjologiczne matek od ciąży do wychowu młodych, wspierając zdrowy rozwój młodych.

Po implantacji telemetru u ciężarnej myszy rejestrowano sygnały EKG od okresu ciąży do laktacji w klatce domowej. Częstotliwość próbkowania ustawiono na 1 k/s. Aby porównać EKG dla każdego stanu fizjologicznego myszy matki, unikając wpływu rytmu okołodobowego, z 2-godzinnego pliku danych wybrano 10-minutowe fragmenty z godzin 23:32 do 23:42 w dniach: GD 17, podczas porodu, PD 0 oraz PD 21 (Rysunek 3, Tabela 1) poddano analizie. Wybrano przedział czasowy od 23:32 do 23:42, ponieważ obejmuje on 10 minut poprzedzających narodziny pierwszego młoduszka podczas porodu. Wybrano ten konkretny okres, aby wykazać możliwość przeprowadzenia analizy danych w trakcie porodu, przy jednoczesnym występowaniu skurczów mięśni. W wszystkich fazach analizy mysz wykazywała zarówno zachowania ogólne (picie, kopanie, jedzenie, pielęgnacja własna), jak i zachowania macierzyńskie (budowa gniazda, lizanie/pielęgnacja młodych), co zaobserwowano w 6 z 16 etogramów wymienionych w Tabela 2.
EKG matki rejestrowano bez zakłóceń w GD17, gdy płód znajdował się w organizmie (Ryc. 3A), oraz podczas porodu, kiedy występowały zmiany fizyczne, takie jak skurcze mięśni (Ryc. 3B). Dodatkowo, zapisy EKG były stabilne od narodzin potomstwa (PD 0) do PD 21 (Ryc. 3C,D), pomimo różnych zachowań związanych z opieką nad młodymi. Analiza EKG wykazała, że częstość akcji serca stopniowo spadała, podczas gdy odstęp RR stopniowo zwiększał się od GD 17 do PD 21 (Tabela 1). Analiza HRV wykazała, że stosunek LF/HF gwałtownie wzrósł od PD 0 do PD 21 (Tabela 1).
Etogramy zachowań macierzyńskich i ogólnych rejestrowane wraz z EKG zostały podzielone, jak pokazano w Tabeli 2. Potwierdziliśmy również, że sygnały EKG można mierzyć bez zakłóceń kształtu fali, gdy matki przejawiają jakiekolwiek zachowanie zdefiniowane w Tabeli 2, takie jak karmienie (Rysunek 4A,C) i kucanie (Rysunek 4B,D).
<img alt="Schemat konfiguracji telemetrii i obrazy procedury chirurgicznej dla monitorowania w badaniach na gryzoniach." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66498/66498fig01.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 1"> 
Rysunek 1: Implantacja telemetrii w 14. dniu ciąży u myszy. (A) Dwa przewody zostały podłączone do telemetrytora. Kolor czarny oznacza przewód ujemny, a biały przewód dodatni. (B) Przewody ujemny i dodatni zostały zgrupowane i umieszczone w okolicy szyi. Telemetrytor umieszczono po stronie brzusznej. (C) Przewód usunięto z szyi, a mięsień SCM został odsłonięty. (D) Telemetria została rozmieszczona po stronie brzusznej. Mięsień SCM zaznaczono na różowo. Obojczyk i wyrostek mieczykowaty zaznaczono na szaro. Czarna linia wskazuje przewód ujemny. Pomarańczowa linia wskazuje przewód dodatni. Niebieska linia reprezentuje miejsce szwu. (E) Przewód ujemny podłączono do mięśnia SCM. Przewód dodatni podłączono wokół mięśnia wyrostka mieczykowatego. (F) Wszystkie nacięcia (zaznaczone czerwonym okręgiem) zamknięto za pomocą 20 cm szwu. (G) Konfiguracja rejestracji wideo z wykorzystaniem rejestratora jazdy. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66498/66498fig01large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
<img alt="Eksperyment elektrofizjologiczny: A) przegląd sygnału, B) wyizolowane impulsy, C) szczegóły impulsu; wykres mV względem czasu." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66498/66498fig02.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 2"> 
Rycina 2: EKG zarejestrowane przy użyciu oprogramowania do analizy danych. (A) EKG rejestrowano przez 3 s. (B) EKG dla każdego uderzenia serca. (C) Czerwone przerywane linie wskazują obszary, w których nie zarejestrowano EKG. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66498/66498fig02large.jpg" target="_blank">Aby zobaczyć większą wersję tej ryciny, kliknij tutaj.</a>
<img alt="Analiza elektrofizjologiczna; wykresy napięcia względem czasu; skurcze mięśni w fazach ciąży." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66498/66498fig03.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rycina 3"> 
Rycina 3: EKG podczas ciąży, porodu i laktacji. Wyniki EKG tej samej myszy w różnych odstępach czasu.(A) EKG w GD 17. (B) EKG podczas porodu. (C) EKG w PD 0. (D) EKG w PD 21. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66498/66498fig03large.jpg" target="_blank">Aby zobaczyć powiększoną wersję tej ryciny, kliknij tutaj.</a>
<img alt="Badanie zachowania myszy; wykresy karmienia i kucania wraz z ustawieniem wideo; analiza aktywności elektrycznej." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66498/66498fig04.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Rysunek 4"> 
Rysunek 4: Rejestracja EKG podczas obserwacji behawioralnej. EKG rejestrowano podczas tworzenia etogramu tej samej myszy w 6. dniu poporodowym (PD 6).(A) Obraz matki jedzącej pokarm stały. (B) Obraz matki kucającej nad młodymi. (C) EKG matki podczas jedzenia pokarmu. (D) EKG matki podczas kucania nad młodymi. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66498/66498fig04large.jpg" target="_blank">Kliknij tutaj, aby wyświetlić powiększoną wersję tego rysunku.</a>
Tabela 1: Analiza zmienności rytmu serca na podstawie EKG od okresu ciąży do laktacji.Analiza zmienności rytmu serca (HRV) została przeprowadzona na podstawie danych EKG przedstawionych na Rysunku 3. Wszystkie analizy pokazano dla tej samej myszy i w tym samym przedziale czasowym (23:32-23:42). Average RR, średnia z odstępów między uderzeniami; Average Rate, średnia częstotliwość uderzeń; SDSD, odchylenie standardowe różnic między kolejnymi odstępami uderzeń; RMSSD, pierwiastek średniej kwadratu różnic między kolejnymi odstępami RR; pRR50, procent odstępów między uderzeniami przekraczających określoną wartość; Total, moc w całym zakresie częstotliwości; VLF, bardzo niskie częstotliwości; LF, niskie częstotliwości; HF, wysokie częstotliwości; SD1, odchylenie standardowe wzdłuż osi mniejszej rozkładu Poincaré; SD2, odchylenie standardowe wzdłuż osi większej rozkładu Poincaré. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66498/Table_1_Heart_rate_variability_analysis_V2.xlsx" target="_blank">Kliknij tutaj, aby pobrać tę tabelę.</a>
Tabela 2: Zdefiniowane etogramy. Wszystkie etogramy zdefiniowano w oparciu o parametry takie jak postawa, czas trwania oraz odwiedzone miejsca. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66498/Table%202%20Defined%20ethograms%20V2.xlsx" target="_blank">Prosimy kliknąć tutaj, aby pobrać tę tabelę.</a>

Jednoczesny zapis aktywności autonomicznej i szczegółowego zachowania matki myszy od ciąży do laktacji został osiągnięty za pomocą systemu telemetrycznego. Metoda ta pomaga zrozumieć dynamikę cech fizjologicznych i behawioralnych u matek od ciąży do odsadzenia.

Analiza elektrokardiogramów i zachowania myszy od ciąży do okresu laktacji

Changes in the mother-offspring relationship are presumably accompanied by dynamic changes in the autonomic nervous system. Although temporal measurements ...

Nasze badania koncentrują się na zmianach fizjologicznych u matek od ciąży do laktacji oraz na ich wpływie na zachowanie matki i rozwój jej młodych. Staramy się ustalić, w jaki sposób fizjologia matki dostosowuje się, aby wspierać zdrowy wzrost i rozwój jej potomstwa. Implementacja terytoriów u ciężarnych myszy umożliwia ciągłe śledzenie EKG od ciąży do laktacji, zapewniając wgląd w automatyczną aktywność podczas zdarzenia rozrodczego. Metoda ta skutkuje bardziej naturalnymi obserwacjami zachowań, a jednoczesne zapisy EKG dają jasne zrozumienie zmieniającej się fizjologii matki.Nasze badania udoskonaliły metody chirurgiczne i metody obserwacji myszy, dzięki czemu możliwe jest monitorowanie myszy przez długi czas.Nasze badania pomagają nam zrozumieć, w jaki sposób fizyczna reakcja matki podczas ciąży i laktacji wpływa na automatyczną aktywność. Nasze badania mogą przyczynić się do poprawy opieki nad matką i wsparcia dla rozwoju szczeniąt, a także mogą zainspirować nowe podejścia do badań nad rozrodem, nie tylko u zwierząt, ale także u ludzi.W przyszłości planujemy zbadać, gdzie matki, które dopuściły się dzieciobójstwa lub zaniedbania w środowisku naturalnym, różnią się w aktywności autonomicznej i zachowaniu matki od ciąży do laktacji w porównaniu z normalnymi matkami. Wierzymy, że ten protokół będzie również pomocny w zrozumieniu czynników stojących za zaniedbaniem i dzieciobójstwem.[Instruktor] Na początek umieść znieczuloną mysz w pozycji leżącej na grzejniku panelowym. Za pomocą nożyczek wykonaj nacięcie skóry między uszami, a następnie włóż kleszcze do nacięcia, aby oddzielić skórę i mięśnie wokół szyi i strony brzusznej, tworząc miejsce na umieszczenie telemetru. Teraz włóż telemetr przez nacięcie między uszami i umieść go w utworzonej przestrzeni po stronie brzusznej. Użyj kleszczy, aby zwinąć i związać dodatnie i ujemne przewody telemetru i umieść te przewody w przestrzeni szyi. Aby zamknąć nacięcie, użyj 13-milimetrowej igły i 20-centymetrowego szwu. Następnie umieść mysz w pozycji leżącej. Za pomocą nożyczek wykonaj małe nacięcie wokół skóry obojczyka i oddziel mięśnie od skóry szyi. Za pomocą kleszczy wyciągnij dodatnie i ujemne przewody z tyłu szyi. Następnie delikatnie oddziel gruczoły ślinowe, aby odsłonić wygląd mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego w kształcie litery V. Następnie dostosuj długość ujemnego przewodu, aby dotrzeć do mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego w pobliżu obojczyka i ostrożnie wyjmij rurkę ołowianą z ujemnego przewodu. Teraz przełóż igłę do szycia z 10-centymetrowym szwem przez zgięcie w kształcie litery V mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego, aby utworzyć pętlę. Przeciągnij elektrodę ze stali nierdzewnej od przewodu ujemnego przez tę pętlę i umieść ją pod mięśniem w pobliżu obojczyka. Lekko zawiąż pętlę, aby zabezpieczyć elektrodę ze stali nierdzewnej, nie uszkadzając mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego. Ponadto umieść drugi szew po stronie czaszki mięśnia i zawiąż go wokół rurki ujemnego przewodu, aby go zabezpieczyć. Następnie przekrój wokół wyrostka mieczykowatego i ostrożnie oddziel skórę od mięśnia między wyrostkiem mieczykowatym a obojczykiem. Następnie przedłuż dodatni przewód, aby dotrzeć do wyrostka mieczykowatego. Wyjmij rurkę ołowianą z przewodu dodatniego, upewniając się, że zwinięta elektroda ze stali nierdzewnej wewnątrz jest rozciągnięta za pomocą cienkiej pęsety. Następnie użyj igły o rozmiarze 18, aby utworzyć tunel pod mięśniem wokół wyrostka mieczykowatego. Następnie umieść elektrodę ze stali nierdzewnej w igle i przepuść ją przez mięsień wokół wyrostka mieczykowatego. Po wyjęciu igły użyj igły do szycia z 10-centymetrowym szwem, aby delikatnie przymocować zwiniętą elektrodę ze stali nierdzewnej do mięśnia wokół wyrostka mieczykowatego. Aby dodatkowo zabezpieczyć dodatni przewód, umieść drugi szew po stronie czaszki wyrostka mieczykowatego i zawiąż go wokół rurki dodatniego przewodu. Za pomocą igły do szycia z 20-centymetrowym szwem zamknij wszystkie nacięcia. Po implantacji umieść mysz w czystej klatce. Aby rozpocząć, umieść mysz z telemetrem w klatce i umieść klatkę na T-Base, która działa jako odbiornik telemetrii myszy. Włącz komputer z możliwością nagrywania i użyj zainstalowanej aplikacji do analizy danych, aby zebrać dane elektrokardiogramu z myszy. Następnie, korzystając z aplikacji do tworzenia wykresów laboratoryjnych na komputerze z możliwością nagrywania, zapisz elektrokardiogram. Aby przeanalizować dane z elektrokardiogramu, uruchom LabChart i otwórz plik danych dla okresu nagrywania. Kliknij przycisk HRV i odpowiednio dostosuj ustawienia wykrywania dudnienia, aby przeanalizować zmienność tętna. Następnie kliknij przycisk HRV i wybierz widok Klasyfikator uderzeń. Wybierz wszystkie dudnienia w widoku Klasyfikator uderzeń i wybierz Widok raportu za pomocą przycisku HRV. Skopiuj dane z widoku raportu i wklej je do programu Excel w celu dalszej analizy. Analiza elektrokardiogramu wykazała, że częstość akcji serca zmniejszała się stopniowo, podczas gdy interwał częstości oddechów stopniowo wzrastał od GD 17 do PD 21. Analiza HRV wykazała, że stosunek niskich do wysokich częstotliwości gwałtownie wzrósł od PD 0 do PD 21.

analysis-electrocardiograms-behavior-mice-from-pregnancy-to-lactation

Research

JoVE Journal

Behavior

Zachowanie

Ten artykuł opisuje wykorzystanie chronicznego stresu społecznego intruza jako etologicznie istotnego paradygmatu do modelowania depresji poporodowej i lęku u gryzoni w okresie laktacji.

Wykorzystanie przewlekłego stresu społecznego do modelowania depresji poporodowej u gryzoni w okresie laktacji

Tutaj prezentujemy protokół nieinwazyjnej elektrokardiografii (EKG), zoptymalizowany dla myszy po urodzeniu, który nie wymaga stosowania środków znieczulających.

Nieinwazyjna elektrokardiografia u myszy okołoporodowej

Ten manuskrypt opisuje metodę ciągłych zapisów wideo EEG przy użyciu wielu elektrod głębokościowych u noworodków myszy poddawanych niedotlenieniu-niedokrwieniu.

Ciągły elektroencefalogram wideo podczas niedotlenienia-niedokrwienia u nowonarodzonych myszy

Rola niedawno odkrytych genów związanych z chorobą w patogenezie zaburzeń neuropsychiatrycznych pozostaje niejasna. Zmodyfikowana technika obustronnej elektroporacji in utero pozwala na transfer genów w dużych populacjach neuronów i badanie przyczynowego wpływu zmian ekspresji genów na zachowania społeczne.

Rurociąg wykorzystujący obustronną elektroporację in utero do badania wpływów genetycznych na zachowanie gryzoni

Prezentujemy protokół EKG, który jest technicznie łatwy, tani, szybki i przystępny cenowo dla małych myszy, i może być wykonywany z większą czułością. Sugerujemy tę metodę jako podejście przesiewowe do badania czynników farmakologicznych, modyfikacji genetycznych i modeli chorób u myszy.

Zapisy elektrokardiogramu u znieczulonych myszy przy użyciu odprowadzenia II

Ultradźwięki o wysokiej rozdzielczości mogą pomóc usprawnić eksperymenty wymagające myszy w ciąży w czasie, określając stan ciąży, wiek ciążowy i straty ciąży. Przedstawiono tutaj protokół ilustrujący metody oceny ciąż myszy, a także potencjalne pułapki (artefakty obrazu), które mogą naśladować ciążę.

Czy moja mysz jest w ciąży? Ocena ultrasonograficzna o wysokiej częstotliwości

Tutaj prezentujemy krok po kroku protokół dla półautomatycznego podejścia do analizy mysich danych z długoterminowej elektrokardiografii (EKG) dla podstawowych parametrów EKG i częstych zaburzeń rytmu serca. Dane są uzyskiwane przez wszczepialne nadajniki telemetryczne u żywych i przytomnych myszy i analizowane za pomocą Ponemah i jego modułów analitycznych.

Analiza długoterminowych zapisów elektrokardiograficznych w celu wykrycia arytmii u myszy

Paradygmat chronicznego stresu psychospołecznego (CGS) wykorzystuje klinicznie istotne czynniki stresogenne podczas ciąży u myszy do modelowania zaburzeń psychicznych matek i niemowląt. W tym miejscu przedstawiamy procedurę krok po kroku stosowania paradygmatu CGS i dalszych ocen w celu walidacji tego modelu.

Wykorzystanie mysiego modelu stresu psychospołecznego w ciąży jako translacyjnie istotnego paradygmatu dla zaburzeń psychicznych u matek i niemowląt

Obecny protokół opisuje echokardiograficzną ocenę morfologii, funkcji i przepływu krwi w naczyniach wieńcowych lewej komory serca u 7-dniowych noworodków myszy.

Echokardiograficzna charakterystyka struktury, funkcji i przepływu wieńcowego lewej komory u nowonarodzonych myszy

Ten artykuł przedstawia protokół dla kontekstowego i podpowiedzianego testu warunkowania strachu przy użyciu systemu analizy wideo do oceny uczenia się strachu i pamięci u myszy.

Kontekstowy i sygnalizowany test warunkowania strachu przy użyciu systemu analizy wideo u myszy

Poznaj analizę EKG i zachowania myszy od ciąży do laktacji przy użyciu systemu telemetrycznego. Ta metoda umożliwia ciągłe monitorowanie aktywności autonomicznej i naturalnych zachowań matek.

Analiza elektrokardiogramów i zachowania myszy od ciąży do okresu laktacji

Przeglądaj więcej filmów