17 stycznia 2025
Ten artykuł opisuje protokół badania interakcji DNA-białko za pomocą systemu interferometrii biowarstwowej (BLI) opartego na streptawidynie. Przedstawiono w nim podstawowe kroki i rozważania dotyczące wykorzystania podstawowej lub zaawansowanej kinetyki wiązania w celu określenia powinowactwa wiązania równowagi (KD) oddziaływania.
Oddziaływania biomolekuł, w tym interakcje białko-białko i białko-DNA, są niezbędne w badaniach biochemicznych. W tym badaniu wykorzystujemy interferometrię biowarstw lub BLI, skuteczną technikę analizy tych interakcji. Skupiamy się na białku replikacyjnym A i jego powinowactwie do wiązania z pojedynczą nicią DNA, aby pokazać zasady i możliwości BLI.
Interferometria biowarstwowa jest łatwą i opłacalną metodą badania kinetyki białek. Umożliwia szybkie monitorowanie interakcji białek w czasie rzeczywistym i oferuje prosty przepływ pracy przy mniejszej złożoności niż inne techniki. W naszym laboratorium badamy wpływ modyfikacji potranslacyjnych na strukturę i funkcję białek, które są niezbędne do utrzymania stabilności genomu.
Te modyfikacje mogą inicjować efekty kaskadowe między ścieżkami replikacji i naprawy. Badając interakcje między białkami, dążymy do odkrycia mechanizmów leżących u podstaw ochrony integralności genomu. Na początek przygotuj 12,5 nanomola trzech pierwszorzędnych bio jednoniciowych substratów przynętowych poli dT 32 i czterech stężeń RPA za pomocą buforu BLI.
Za pomocą pipety dodaj 250 mikrolitrów buforu BLI do dwóch 0,5 mililitrowych probówek do mikrofuge i oznacz je jako AND. Na oddzielnej 96-dołkowej płytce odpipetować 200 mikrolitrów buforu BLI do jednego dołka. Umieść tacę z bioczujnikami na płytce 96-dołkowej w taki sposób, aby jeden biosensor zanurzył się w buforze BLI.
W oprogramowaniu kliknij opcję nawodnienia i ustaw minutnik na 10 minut. Dostosuj ustawienia uruchamiania dla każdego kroku, planu bazowego, skojarzenia i dysocjacji. Naciśnij uruchom w oprogramowaniu i postępuj zgodnie z instrukcjami w komunikacie monitu.
Umieść dwie wnęki w uchwycie probówki i podłącz uwodniony bioczujnik do systemu BLI. Wsuń uchwyt probówki pod bioczujnik w pozycji A i monitoruj linię bazową bioczujnika. Po wykonaniu początkowego schematu bazowego otwórz pokrywę i dodaj cztery mikrolitry buforu BLI do uchwytu na krople.
Przesuń uchwyt kropli w prawo pod tym samym biosensorem w pozycji B. Po zamknięciu pokrywy monitoruj krzywą BLI w oprogramowaniu. Następnie otwórz pokrywę i zastąp rurkę A rurką D. Wsuń nową rurkę pod bioczujnik w pozycji A przed zamknięciem pokrywy i przeanalizuj etap dysocjacji w interfejsie. Umieść probówkę A w uchwycie probówki.
Podłącz uwodniony bioczujnik do systemu BLI i wsuń uchwyt rurki pod biosensor, jak pokazano wcześniej. Następnie kliknij uruchom w interfejsie oprogramowania, aby skonfigurować linię bazową. Po dodaniu czterech mikrolitrów 12,5 nanomolowej jednoniciowej przynęty DNA do uchwytu na krople i wsunięciu go pod bioczujnik w celu przeprowadzenia etapu asocjacji, monitoruj krzywą BLI w oprogramowaniu.
Następnie otwórz pokrywę, aby zastąpić rurkę A rurką D. Wsuń ją pod bioczujnik i kontynuuj etap dysocjacji. Po zakończeniu etapu dysocjacji otwórz pokrywę i odłącz bioczujnik. Następnie umieść biosensor w zasobniku zawierającym bufor BLI.
Za pomocą pipety dodaj 250 mikrolitrów buforu BLI do 10 0,5 mililitrowych czarnych probówek do mikrofuge. Oznacz probówki jako A1 do A5 i D1 do D5. Wypełnij szczegóły eksperymentu w interfejsie oprogramowania i naciśnij przycisk obliczeń, aby przetworzyć informacje. W oddzielnej 96-dołkowej pipecie płytkowej 200 mikrolitrów buforu odpędzającego do studzienki odpowiadającej położeniu uwodnionego biosensora.
Po umieszczeniu rurki A1 w uchwycie na probówkę, przymocowaniu biosensora pokrytego przynętą do systemu BLI i wsunięciu rurki pod biosensor, naciśnij run w oprogramowaniu. Po zakończeniu początkowego etapu podstawowego otwórz pokrywę i dodaj cztery mikrolitry buforu BLI do uchwytu na krople. Wsuń uchwyt kropli pod bioczujnik i monitoruj krok asocjacji na interfejsie BLI.
Zamień rurkę A1 na D1. Wsuń go pod biosensor i zamknij pokrywę. Następnie monitoruj etap dysocjacji na interfejsie BLI. Po zakończeniu etapu dysocjacji otwórz pokrywę, wyjmij biosensor i umieść go z powrotem w tacce zawierającej bufor BLI.
Następnie zamocuj biosensor pokryty przynętą i umieść rurkę A2 w uchwycie probówki. Wsuń rurkę pod bioczujnik i kliknij uruchom w oprogramowaniu. Po kroku podstawowym dodaj cztery mikrolitry pięciu nanomolowych RPA na uchwyt kropli.
Wsuń uchwyt kropli pod bioczujnik i zamknij pokrywę. Monitoruj krzywą asocjacyjną w interfejsie oprogramowania. Wyjmij bioczujnik i zanurz go w buforze do odpędzania na 30 sekund.
Następnie zanurz bioczujnik w buforze BLI na trzy minuty. W tabeli oznaczonej jako Lista przebiegów zaznacz odniesienie do pola dla stężenia analitu o zerowym namolowym wskaźniku, który ma służyć jako krzywa odniesienia, zaznacz pole analizy, dla wszystkich stężeń analitu. Wybierz zarówno początek asocjacji, jak i początek dysocjacji dla korekcji krokowej, wybierz globalne dopasowanie dla testu.
Następnie kliknij przycisk Analizuj, aby przetworzyć dane. Aby wyeksportować dopasowane dane, kliknij prawym przyciskiem myszy wykres wygenerowany na podstawie danych analizy. Wybierz eksport danych, a następnie wybierz tekst lub dane, kliknij plik, a następnie przejdź do zapisania danych w formacie DAT.
Otwórz oprogramowanie i wybierz zaawansowaną kinetykę z lewego panelu. Po umieszczeniu 96-dołkowej płytki w tacce biosensora i dodaniu 200 mikrolitrów buforu BLI do pięciu dołków, włóż tackę biosensora do płytki, aby nawodnić czujniki. Podczas gdy biosensory nawadniają się, odpipetuj 250 mikrolitrów buforu BLI do 10 czarnych probówek wirówkowych o pojemności 0,5 mililitra.
Wypełnij szczegóły eksperymentu w interfejsie oprogramowania i naciśnij przycisk obliczeń, aby przetworzyć informacje. Po wsunięciu uchwytu probówki z rurką A1 pod biosensor, kliknij uruchom, aby uzyskać początkową linię bazową. Dodać cztery mikrolitry buforu BLI do uchwytu kropli.
Wsuń uchwyt kropli pod biosensor, zamknij pokrywę i monitoruj krzywą ładowania w oprogramowaniu. Przesunięcie widmowe podczas wiązania RPA przy użyciu podstawowej kinetyki wykazało zależny od dawki wzrost siły wiązania przy nasyceniu osiągniętym przy 40 nanomolach. Przesunięcie widmowe podczas wiązania RPA przy użyciu zaawansowanej kinetyki podobnie wykazało wiązanie zależne od dawki, ale z indywidualnymi bioczujnikami stosowanymi dla każdego stężenia w celu poprawy dokładności.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia protokół badania oddziaływań białko-DNA z wykorzystaniem interferometrii warstw biologicznych (BLI). Podkreśla on efektywność metody BLI w analizie powinowactwa wiązania oraz wpływu modyfikacji potranslacyjnych na funkcje białek.
Ilościowa analiza oddziaływań białko-DNA stanowi podstawę walidacji celu oraz ograniczania ryzyka mechanistycznego we wczesnej fazie odkrywania leków. Interferometria warstwy biologicznej (BLI) oparta na streptawidynie umożliwia pomiar kinetyki wiązania w czasie rzeczywistym bez użycia znaczników, co zwiększa pewność prognostyczną podczas badania szlaków sygnałowych i selekcji projektów w portfolio. Możliwość wyznaczenia precyzyjnych stałych kinetycznych przyspiesza podejmowanie decyzji w krytycznych punktach zwrotnych w badaniach i rozwoju (R&D) w branży biofarmaceutycznej.
Analiza oddziaływań białko-DNA oparta na metodzie BLI integruje się z procesem badawczym – od wczesnego testowania hipotez, przez identyfikację wiodących związków, aż po walidację przedkliniczną.