April 19th, 2024
Tutaj prezentujemy protokół elektroforezy w żelu fibrynogenowo-poliakrylamidowym (PAGE) do szybkiego oddzielania i wyświetlania czynników fibrynogenolitycznych Sipunculus nudus.
Nasze badania koncentrują się na układzie fibrynolitycznym . W tym badaniu staramy się uprościć metodę badań przesiewowych czynników fibrynogenolitycznych u robaków orzechowych przy użyciu techniki fibrynogenu-PAGE. Opracowaliśmy nową metodę fibrynogenu-PAGE poprzez połączenie metody PAGE i płytki fibrynogenu.
W porównaniu z innymi obecnie stosowanymi technikami, nasz protokół składa się z 10-letniego badania oddzielnego i wyświetlającego aktywne geny fibrynogenolityczne w obrębie tego samego patogenu. Co więcej, ta metoda jest przyjazna czasowo i kosztowo. Dzięki naszym odkryciom odkrycie środków neurofibrynogenolitycznych stanie się proste i może przyspieszyć rozwój nowych leków trombolitycznych, które mogą być stosowane w leczeniu różnych chorób sercowo-naczyniowych i innych.
Nasze laboratorium skupi się na badaniu układów krzepnięcia i fibrynogenolitycznych w różnych organizmach w celu wyizolowania i przeprowadzenia badań przesiewowych w poszukiwaniu nowych środków trombolitycznych, które mogą być przydatne w leczeniu. Na początek zważ 50 gramów robaków orzechowych i dodaj je do homogenizatora wraz ze 150 mililitrami soli fizjologicznej. Homogenizować przy 24 000 obr./min przez 60 sekund.
Odwirować homogenat i zebrać supernatant do dalszych procesów. Do przygotowania żelu poliakryloamidowego fibrynogenu dodaj 0,01 grama fibrynogenu i innych odczynników do 50-mililitrowej szklanej zlewki. Podgrzewać zlewkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 30 minut.
Po dodaniu akrylamidu wlej mieszaninę żelu separującego do 10-dołkowej formy żelowej. Następnie dodaj dwa mililitry podwójnie destylowanej wody do formy żelowej i inkubuj przez 30 minut. Odwróć formę, aby usunąć wodę.
Następnie w podobny sposób przygotuj żel ładujący i wlej go do tej samej formy co wcześniej. Na koniec włóż grzebień, aby dobrze się uformować. Na początek przygotuj żel do fibrynogenu-PAGE i umieść go w zbiorniku do elektroforezy razem z formą do kleju.
Wlej 1 300 mililitrów roztworu do elektroforezy do zbiornika i wyjmij grzebień z żelu. Wymieszaj pięć mikrolitrów 5-krotnie niedenaturującego buforu ładującego z 20 mikrolitrami enzymu fibrynolitycznego i homogenatu robaka orzechowego. Załaduj mieszaninę do przygotowanego żelu i rozpocznij elektroforezę przy napięciu 80 woltów przez 30 minut lub przy napięciu 120 woltów przez 20 minut.
Wyjmij żel z formy do kleju i przenieś go do plastikowego pudełka. Dodaj Tris-HCL i Triton do pudełka i inkubuj na wytrząsarce z prędkością od 60 do 70 obr./min przez 10 minut. Usunąć bufor do przemywania i inkubować żel z 50 mililitrami 0,05 molowego Tris-HCL.
Po usunięciu buforu inkubuj żel z 50 mililitrami barwienia, a następnie roztworem odbarwiającym przy 60 do 70 obr./min przez 30 minut każdy. Homogenat robaka orzechowego wykazywał pasma odpowiadające masie cząsteczkowej 25, 33, 43 i 70 kilodaltonów lub więcej.
Niniejsza publikacja przedstawia uproszczony protokół elektroforezy w żelu poliakrylamidowym (PAGE) fibrynogenu (fibrinogen-PAGE) do przesiewu czynników fibrynogenolitycznych u Sipunculus nudus. Nowa metoda zwiększa wydajność identyfikacji aktywnych genów fibrynogenolitycznych, co ułatwia opracowywanie leków trombolitycznych.
Rapid identification of fibrinogenolytic agents is critical for accelerating early-stage thrombolytic drug discovery and reducing bottlenecks in target validation. The integrated fibrinogen-PAGE method enables simultaneous separation and activity display, streamlining the workflow for novel agent screening. This approach enhances predictive confidence and operational efficiency at key inflection points in cardiovascular therapeutic pipelines.
This method bridges early discovery and lead identification by integrating separation and activity assessment into a single workflow, supporting rapid triage and prioritization of thrombolytic candidates.