13 grudnia 2024
Ten protokół przedstawia metodę generowania organoidów naczyniowych przy użyciu ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych.
Badanie to wprowadza zmodyfikowaną metodę skalowalnej produkcji jednorodnych organoidów naczyniowych z ludzkich iPSC przy użyciu nowych inhibitorów ROCK i uwięzienia mikrostudzienek. Podejście to zwiększa odtwarzalność i minimalizuje różnice między partiami, dzięki czemu nadaje się do dalszych analiz morfologicznych i zastosowań związanych z modelowaniem chorób. Technologie sekwencjonowania pojedynczych komórek są szeroko wykorzystywane w badaniach organoidowych w celu rozwikłania niejednorodności genomicznej, epigenomicznej i transkryptomicznej oraz dynamiki w populacjach komórkowych.
Technologie obrazowania 3D, takie jak oczyszczanie tkanek i mikroskopia świetlna, ułatwiają szybkie obrazowanie morfologii komórek i architektury tkanek w wysokiej rozdzielczości w trójwymiarowym kontekście. Przepustowość i standaryzacja są kluczowymi wyzwaniami w badaniach nad organoidami. Ręczna obsługa jest pracochłonna i ogranicza przepustowość, co sprawia, że automatyzacja robotów jest obiecującym rozwiązaniem.
Standaryzacja hodowli organoidów, w tym kontrola jakości iPSC i optymalizacja protokołu różnicowania, może znacznie zwiększyć odtwarzalność i zminimalizować różnice między partiami i liniami komórkowymi. Na początek umieść 50-mililitrową tubkę na lodzie i kolejno dodawaj roztwór kolagenu 1 wraz z innymi składnikami. Wstrząśnij tubką, aby dokładnie wymieszać.
Za pomocą pipety P10 dodawać kroplami 1 molowy roztwór wodorotlenku sodu, potrząsając zmieszanym roztworem, aby dostosować pH do 7,3. Dodaj 1,25 mililitra macierzy błony podstawnej do pięciomililitrowej mieszaniny Collagen 1 i delikatnie wymieszaj roztwór. Następnie umieść 12-dołkową płytkę na lodzie na dwie minuty.
Używając końcówek o szerokim otworze, powoli dodawaj mieszaninę macierzy błony podstawnej Collagen 1 do płytki 12-dołkowej. Umieść 12-dołkową płytkę w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza na dwie godziny, aby zestalić pierwszą warstwę hydrożelu. Pozostałą mieszaninę macierzy błony podstawnej Collagen 1 należy przechowywać na lodzie do późniejszego wykorzystania.
Następnie przenieś około 60 agregatów komórek do 1,5-mililitrowej mikroprobówki wirówkowej i schładzaj probówkę na lodzie przez pięć minut. Za pomocą końcówki do pipety P200 ostrożnie usuń medium z probówki. Dodaj kroplami 1,5 mililitra mieszaniny membrany podstawnej Collagen 1 do agregatów komórkowych i delikatnie wymieszaj je za pomocą końcówki do pipety P200 o szerokim otworze w celu ponownego zawieszenia.
Przenieść płytkę z pierwszą warstwą hydrożelu z inkubatora do komory bezpieczeństwa biologicznego. Dodaj 1,5 mililitra zawiesiny kruszywa na utwardzoną warstwę hydrożelu i delikatnie potrząśnij płytką, aby równomiernie rozprowadzić kruszywa. Inkubuj płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla przez dwie godziny.
Wstępnie podgrzej pożywkę do różnicowania naczyń krwionośnych 2 w łaźni wodnej o temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 20 minut. Dodaj dwa mililitry pożywki do każdej studzienki i hoduj komórki w temperaturze 37 stopni Celsjusza z 5% dwutlenkiem węgla. Zmieniaj pożywkę co trzy dni na świeżą, wstępnie podgrzaną pożywkę do różnicowania naczyń krwionośnych 2.
Organoidy wykazywały ekspresję CD31, ERG1 i PDGFR-beta, co wskazuje na obecność komórek śródbłonka naczyń krwionośnych i pasożytów. Sieci naczyniowe uwidoczniono za pomocą mikroskopii immunofluorescencyjnej typu full-mount po oczyszczeniu tkanek. Dojrzałe organoidy wybarwione w 17 dniu wykazały sieci naczyniowe otaczające sferoidy w bloku żelu.
Organoidy pobrane w 28 dniu miały sieci naczyniowe owijające się wokół sferoidów, zamiast rozszerzać się promieniście.
Niniejsze badanie przedstawia zmodyfikowaną metodę skalowalnej produkcji jednorodnych organoidów naczyniowych z ludzkich iPSC przy użyciu nowych inhibitorów ROCK oraz ograniczenia w mikrosyzywach. Podejście to zwiększa powtarzalność i minimalizuje różnice między partiami, co czyni je odpowiednim do późniejszych analiz morfologicznych oraz zastosowań w modelowaniu chorób.
Skalowalna generacja homogenicznych organoidów naczyniowych z hiPSC rozwiązuje krytyczny problem wąskiego gardła w przedklinicznym modelowaniu chorób naczyniowych i przesiewaniu leków. Zwiększona powtarzalność i standaryzacja umożliwiają niezawodne analizy pochodne, zwiększając pewność predykcyjną w ocenie terapeutycznej na wczesnym etapie. Zdolność ta wzmacnia ciągłość translacyjną oraz proces podejmowania decyzji w ramach portfela programów ukierunkowanych na naczynia krwionośne.
Niniejszy protokół wpisuje się w kontinuum od odkryć do badań przedklinicznych, zapewniając powtarzalną i skalowalną platformę do badań nad biologią naczyniową oraz przesiewu leków.