5/6 Nefrektomia przy użyciu ostrej bipolektomii przez laparotomię w linii środkowej u szczurów
4 kwietnia 2025
Ten manuskrypt wprowadza ustandaryzowany protokół dla nefrektomii 5/6 poprzez ostrą bipolektomię poprzez laparotomię w linii środkowej na modelu szczurzym, mający na celu wywołanie stanu niewydolności nerek poprzez redukcję miąższu nerki z dużą precyzją metodyczną i niskim ryzykiem błędu technicznego.
Zakres tego specyficznego obszaru naszych badań polega na dostarczaniu wysoce wystandaryzowanych i kontrolowanych modeli zwierzęcych dla określonych schorzeń i chorób. Korzystając z tego protokołu dla nefrektomii subtotalnej, zapewniamy standaryzowany model niewydolności nerek u szczurów. Nasz protokół oferuje przewagę osi wewnątrzbrzusznej nad innymi narządami trzewnymi.
Jest to szczególnie cenne, jeśli dla pożądanego modelu zwierzęcego wymagane są jednoczesne zabiegi na innych narządach. Najistotniejszym obecnie wyzwaniem eksperymentalnym jest fakt, że chirurgiczne zmniejszenie całkowitego miąższu nerki o standaryzowaną ilość niekoniecznie skutkuje takim samym stopniem niewydolności nerek. Dlatego może być wymagana dalsza certyfikacja pooperacyjna poprzez badania laboratoryjne.
Na początek na stole operacyjnym ułóż ligatury polifilamentowe, silikonowe pętle naczyń, zaciski remontowe, nożyczki do precyzyjnego przygotowania, kleszcze, plastry hemostatyczne, aparaturę do ekspozycji, poduszkę grzewczą i haczyki do przygotowania chirurgicznego. Znieczulonemu szczurowi podaj 100% tlenu przez maskę na twarz noworodka. Ogolić żądany obszar dostępu i zdezynfekować miejsce operowane, nakładając wysterylizowane waciki bawełniane okrężnymi ruchami z naprzemiennymi peelingami z 70% etanolu i jodowidonu.
Aby wykonać mini-laparotomię środkową, należy wykonać początkowe około trzycentymetrowe środkowe nacięcie skóry nad brzuchem, a następnie nacięcie na powięzi wzdłuż kresy białej. Osiągnij chirurgiczne odsłonięcie nerki poprzez umieszczenie kompresów chirurgicznych i haczyków przygotowawczych. Następnie należy dotykać miąższu nerki tylko wilgotnymi wacikami.
Odsłoń nerkę, chwytając tłuszcz okołonerkowy przyczepiony do powięzi Geroty. Zastosuj napięcie, aby miejscowo podnieść powięź z miąższu nerki. Naciąć i podważyć powięź ostrym końcem jednej krawędzi nożyczek i kontynuować podłużne rozwarstwienie powięzi Geroty.
Następnie wykonaj rękawicowanie powięzi Geroty za pomocą zamkniętych nożyczek. Stopniowo podważaj powięź wokół miąższu i składaj torebkę powięziową przyśrodkowo. Zawiesić wnękę nerki silikonową pętlą naczyniową dla lepszej kontroli naczyniowej.
Umieść końcówkę kleszczy w przestrzeni zaotrzewnowej, aby ustabilizować nerkę i uniknąć ucieczki nerki grzbietowej podczas procesu cięcia. Następnie za pomocą nożyczek wykonaj ostrą czaszkową kolektomię jednej trzeciej nerki jednym precyzyjnym pociągnięciem. Osiągnij hemostazę, nakładając plaster hemostatyczny lub stosując ręczną kompresję narzędziami.
Alternatywnie można zastosować klamrę hilar YASARGIL, aby zmniejszyć przepływ krwi. Wykonać kolektomię ogonową ostrą jedną trzecią nerki w taki sam sposób, jak kolektomię czaszkową. Użyj kątowej płaszczyzny rozwarstwienia, aby zachować więcej miąższu nerki po stronie wnęki, a mniej po stronie bocznej, aby uniknąć uszkodzenia wnęki i zmniejszyć wyciek moczu z układu miednicy.
Po mobilizacji nerki należy wydrążyć wnękę nerki za pomocą zacisków remontowych, zawiesić wnękę nerki za pomocą ligatury polifilamentowej. Umieść bezpieczny przesuwany węzeł na wnęce nerki w pobliżu naczyń brzusznych, aby zablokować przepływ krwi przez nerki i moczowód. Ostro wypreparuj wnękę nożyczkami i usuń nerkę.
Następnie kontroluj hemostazę i odetnij końce ligatury. Umieść szew narożny na rozcięgnie brzusznej za pomocą szwu polifilamentowego. Kontynuuj szycie powięzi brzusznej za pomocą szwu biegowego, chwytając około dwóch milimetrów tkanki na kęs i zachowując odstępy między każdym kęsem na cztery milimetry.
Zszyj warstwę skórną pojedynczymi szwami, chwytając trzy milimetry tkanki na kęs i pozostawiając sześć milimetrów między każdym szwem. Wartości fizjologiczne pozostałego miąższu nerki wykazały poziom natlenienia około 60%, co wskazuje na żywotność po resekcji. Nieprawidłowo uszkodzona tkanka nerkowa wykazywała znacznie niższy poziom natlenienia na poziomie 20,9%, co jest zgodne z tkanką niezdolną do życia.
Wartości perfuzji wskazywały na fizjologiczną perfuzję w pozostałej nerce, wzmacniając żywotność tkanek.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Overview
Ten manuskrypt przedstawia ustandaryzowany protokół przeprowadzania 5/6 nefrektomii za pomocą ostrej bipoλεκtomii w modelu szczura. Celem jest wywołanie niewydolności nerek z precyzją i minimalnym błędem technicznym.
Kluczowe Elementy Badania
Dziedzina Nauki
- Nefrologia
- Modele Zwierzęce
- Techniki Chirurgiczne
Wprowadzenie
- Ustandaryzowane modele zwierzęce są kluczowe dla badania konkretnych schorzeń.
- Subtotalna nefrektomia to metoda wywoływania niewydolności nerek.
- Dostęp do narządów jamy brzusznej jest korzystny dla jednoczesnych procedur.
- Zmienność wyników niewydolności nerek wymaga badań laboratoryjnych po operacji.
Cel Badania
- Ustanowienie niezawodnego modelu niewydolności nerek u szczurów.
- Zwiększenie precyzji technik chirurgicznych w nefrektomii.
- Ułatwienie badań nad chorobami nerek i metodami leczenia.
Wykorzystane Metody
- 5/6 nefrektomia za pomocą ostrej bipoλεκtomii.
- Podejście przez śródłiniowy dostęp do jamy brzusznej.
- Kontrolowane środowisko chirurgiczne w celu zminimalizowania błędów.
- Badania laboratoryjne pooperacyjne w celu oceny funkcji nerek.
Główne Wyniki
- Protokół pozwala na precyzyjną redukcję parenchymy nerkowej.
- Niskie ryzyko wystąpienia błędów technicznych podczas operacji.
- Ułatwia dostęp do innych narządów trzewnych w razie potrzeby.
- Wyniki pooperacyjne mogą wymagać dalszej oceny.
Wnioski
- Ustandaryzowany protokół jest skuteczny w wywoływaniu niewydolności nerek.
- Dalsze testy są niezbędne do potwierdzenia stopnia niewydolności nerek.
- Model ten może pomóc w zrozumieniu chorób nerek.
Często Zadawane Pytania
Executive Industry Relevance
Standardized 5/6 nephrectomy in rats provides a robust preclinical model for chronic kidney disease, enabling mechanistic de-risking and translational continuity in renal research. This model supports pharmaceutical and biomolecular studies by offering reproducible biological complexity and access to intraoperative imaging validation. Its precision and reproducibility are critical for pipeline decisions and cross-functional R&D alignment in nephrology drug discovery.
Strategic Applications in Biopharma R&D
Early Discovery & Target Validation
- Enables interrogation of renal pathophysiology and therapeutic hypothesis testing in a controlled in vivo system.
- Supports biological de-risking by modeling multifactorial renal insufficiency relevant to human disease.
- Facilitates functional target validation for candidate interventions in CKD.
Screening & Assay Development
- Provides a validated animal model for quantitative assessment of renal function and tissue viability.
- Supports standardization and reproducibility in preclinical efficacy and biomarker studies.
- Enables objective evaluation of imaging modalities, such as hyperspectral imaging, for renal perfusion analysis.
Translational & Preclinical Research
- Aligns with disease-relevant endpoints for translational biomarker development in CKD.
- Ensures continuity from discovery through preclinical validation by modeling complex renal pathology.
- Reduces translational risk by mirroring human renal insufficiency mechanisms.
Pipeline & Workflow Integration
This model integrates into the discovery-to-preclinical continuum, supporting lead identification, mechanistic studies, and translational biomarker validation in renal research.
- Discovery Biology: Facilitates hypothesis testing and pathway clarification in renal disease mechanisms.
- Screening: Provides reproducible quantitative outputs for renal function and tissue perfusion.
- Analytics: Enables measurement of oxygenation and perfusion to compare intervention effects.
- Translational Research: Supports biomarker alignment and preclinical validation for CKD therapies.
- Enterprise Reuse: Offers a standardized, reusable platform for diverse renal research applications.
Operational & Enterprise Impact
- Scientific Value: Increases predictive confidence and reduces mechanistic ambiguity in CKD modeling.
- Operational Value: Delivers standardization, reproducibility, and scalability for renal studies.
- Strategic Value: Improves go/no-go decisions and capital efficiency by reducing late-stage biological risk.
- Portfolio Impact: Enables risk-adjusted prioritization and advancement of renal therapeutic candidates.
Implementation Considerations
- Requires surgical expertise in rodent nephrectomy and perioperative care.
- Demands access to specialized instrumentation for precise tissue resection and intraoperative monitoring.
- Necessitates cross-team standardization for reproducibility and data comparability.
- Adaptation may be needed for different rodent strains or comorbid models.
- Postoperative lab testing is essential to confirm degree of renal insufficiency due to biological variability.
