10 stycznia 2025
Hodowla narządów ex vivo rogówki świń i gojenie ran nabłonkowych dostarczają ekonomicznego, etycznego, powtarzalnego i ilościowego sposobu testowania toksyczności ocznej chemikaliów. Pomagają również w wyjaśnieniu mechanizmów leżących u podstaw regulacji nabłonka i naprawy tkanek oraz w ocenie terapii stosowanych w leczeniu keratopatii cukrzycowej i opóźnionego gojenia się ran.
Badamy wrodzoną odporność rogówki w gojeniu się ran cukrzycowych. W szczególności staramy się zrozumieć, dlaczego pacjenci z cukrzycą są bardziej podatni na infekcje bakteryjne i co powoduje opóźnione gojenie się ran związanych z hiperglikemią. Stwierdziliśmy, że równowaga między IL-1 beta i antagonistą receptora IL-1, a także TGF beta jeden i TGF beta trzy, jest ważna dla gojenia się ran rogówki.
Może to prowadzić do nowego leczenia keratopatii cukrzycowej. Nasz model naśladuje opóźnione gojenie się ran u pacjentów z cukrzycą. Dzięki temu możemy badać zaprogramowany szlak śmierci komórki i opracowywać terapie celowane.
Na początek weź oczy świni umieszczone w litrowej zlewce. Przytrzymaj gałkę oczną pęsetą i usuń tkanki zewnątrzgałkowe nożyczkami na sterylnej płytce Petriego. W przypadku zranienia nabłonka przytrzymaj gałkę oczną za pomocą wysterylizowanych, niestrzępiących się chusteczek i zaznacz środek rogówki sześciomilimetrową trepanacją.
Następnie, za pomocą małego skalpela lub stępionej w rogach miękkiej żyletki, delikatnie zeskrob komórki nabłonka w okręgu oznaczonym trepaniną. Usuń wszystkie resztki komórek, upewniając się, że błona podstawna pozostaje nienaruszona. Następnie oczyść obszar rany bawełnianymi wacikami.
Za pomocą skalpela i nożyczek rozetnij gałkę oczną, przecinając wzdłuż brzegów twardówki rogówki. Następnie opłucz rogówki w wysterylizowanej 500-mililitrowej zlewce zawierającej PBS. Następnie umieść wycięte rogówki do góry nogami w sterylnej formie.
Wypełnij śródbłonkową jamę rogówki minimalną niezbędną pożywką lub MEM zawierającą 1% agarozy utrzymywaną w temperaturze 48 stopni Celsjusza. Teraz odwróć i przenieś rogówki do 35-milimetrowej naczynia. Dodaj kroplami dwa mililitry MEM, z czynnikiem testowym lub bez, na powierzchnię centralnej rogówki, upewniając się, że obszar spojówki rąbkowej jest pokryty, pozostawiając nabłonek wystawiony na działanie powietrza.
Następnie umieść szalki hodowlane w nawilżonym inkubatorze z 5% dwutlenkiem węgla w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Po 40 godzinach od zranienia zabarwić zranione rogówki roztworem barwiącym Richardsona. Umyj poplamione rogówki PBS przed ich sfotografowaniem.
Następnie użyj trepanacji tego samego rozmiaru, aby oznaczyć oryginalną ranę i za pomocą małego skalpela. Zeskrob komórki nabłonka w zaznaczonych okręgach. Usuń zebrane komórki i przenieś je do wstępnie schłodzonej probówki wirówkowej.
Pozostała powierzchnia rany była znacznie większa w rogówkach leczonych nepafenakiem 0,1% w porównaniu z rogówkami leczonymi bromfenakiem 0,09% i ketorolakiem 0,45%Rogówki leczone LL-37 w dawce 0,2 i 0,5 mikrograma na mililitr wykazywały znacznie przyspieszone gojenie się ran w warunkach wysokiego stężenia glukozy w porównaniu z rogówkami nieleczonymi.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejsze badanie analizuje wrodzoną odporność rogówki w procesie gojenia ran przy cukrzycy, koncentrując się na podatności pacjentów z cukrzycą na infekcje bakteryjne oraz opóźnionym gojeniu. Badanie identyfikuje kluczowe równowagi molekularne, które mogą stać się podstawą nowych metod leczenia keratopatii cukrzycowej.
Rogówki świńskie hodowane w kulturze organowej stanowią istotną translacyjnie platformę ex vivo do oceny toksyczności ocznej oraz terapeutycznego gojenia ran, ściśle odzwierciedlając fizjologię rogówki ludzkiej. System ten umożliwia mechanistyczną redukcję ryzyka w przypadku kandydatów na leki oraz zwiększa pewność prognostyczną we wczesnej fazie opracowywania leków okulistycznych. Ilościowe wyniki gojenia ran oraz analizy molekularne w tym modelu służą do selekcji portfolio oraz podejmowania decyzji o dalszym rozwoju projektów w oparciu o analizę ryzyka.
Ten ex vivo model rogówki świńskiej integruje się z continuum od etapu odkrywania do badań przedklinicznych, wspierając zarówno walidację celu, jak i identyfikację wiodących związków w terapii okulistycznej.