17 października 2025
Protokół ten opisuje skuteczną metodę ilościowego określania różnic w uszkodzeniach DNA wywołanych przez inhibitory typu I i typu II w zmutowanych komórkach FLT3 poprzez zastosowanie testu komety.
Wykorzystujemy test kometarny do systematycznej oceny genotoksyczności inhibitorów FLT3 typu I i typu II na zmutowanych komórkach FLT3 32D, dostarczając krytycznych danych do optymalizacji klinicznej w AML. Podczas zabiegów niewłaściwe obchodzenie się z narzędziem mikrochirurgicznym spowoduje uszkodzenie szkiełka, powodując utratę próbki. Badania wskazują, że AC220 jako inhibitor typu II powoduje poważniejsze uszkodzenia DNA w zmutowanych komórkach FLT3, dostarczając kluczowych informacji dla opracowania terapii skojarzonych poprzez wykorzystanie podatności na uszkodzenia DNA w celu przezwyciężenia oporności terapeutycznej.
Zbadanie mechanizmu działania inhibitorów FLT3 w leczeniu AML i opracowanie strategii dwulekowej lub wielolekowej terapii skojarzonej opartej na inhibitorach FLT3. Na początek przygotuj mieszaninę 10 do jednego agarozy o niskiej temperaturze topnienia i zawiesiny komórek w 1,5 mililitrowych probówkach za pomocą pipety i delikatnie wymieszaj. Dozować 55 mikrolitrów podwielokrotności mieszaniny komórek agarozy na szkiełka komety za pomocą pipety trzymanej pod kątem 45 stopni.
Następnie umieść szkiełka pokryte mieszanką w temperaturze czterech stopni Celsjusza na 30 minut w ciemnym otoczeniu. Zanurzyć zestalone szkiełka we wstępnie schłodzonym roztworze do lizy i inkubować przez co najmniej godzinę w temperaturze czterech stopni Celsjusza, chroniąc szkiełka przed światłem. Po lizie usunąć szkiełka z roztworu do lizy.
Za pomocą pistoletu do pipet ostrożnie zassaj jak najwięcej pozostałego płynu z okolic łopatki. Następnie umieść szkiełka w buforze do elektroforezy alkalicznej i pozwól im osiągnąć wstępną równowagę przez godzinę w temperaturze czterech stopni Celsjusza w ciemności. Teraz umieść szkiełka w komorze elektroforezy.
Aby całkowicie zanurzyć szkiełka, dodaj wystarczającą ilość wstępnie schłodzonego roztworu do elektroforezy alkalicznej. Uruchom elektroforezę przy napięciu 24 V ze stałym prądem przez 30 minut, używając buforu wstępnie zbalansowanego w celu zmniejszenia uszkodzenia DNA. Po elektroforezie za pomocą pistoletu do pipet odessać alkaliczny bufor do elektroforezy z okolic szkiełka.
Zanurz szkiełka w podwójnie destylowanej wodzie na pięć minut, a następnie zanurz szkiełka w 70% etanolu na pięć minut. Umieść szkiełka w inkubatorze ustawionym na 37 stopni Celsjusza na 15 minut do wyschnięcia. Następnie nałóż 100 mikrolitrów podwielokrotności barwienia kwasem nukleinowym YeaRed do każdej studzienki szkiełka.
Inkubuj szkiełka przez 30 minut w temperaturze 28 stopni Celsjusza w środowisku chronionym przed światłem. Delikatnie spłucz szkiełka wodą, aby usunąć nadmiar plam i wysusz je w inkubatorze o temperaturze 37 stopni Celsjusza. Test kometarny był systematycznie stosowany do ilościowego określania zróżnicowanych profili uszkodzeń DNA indukowanych przez gilterytynib i AC220 w zmutowanych liniach komórkowych FLT3.
Analiza ilościowa procentowego DNA ogona potwierdziła, że oba związki znacznie zwiększają uszkodzenia DNA po dwóch, czterech i sześciu godzinach, przy czym AC220 wytwarza wyższe poziomy uszkodzeń niż gilterytynib w każdym punkcie czasowym. Wszystkie pomiary ogona momentowego odzwierciedlały trend DNA ogona ze statystycznie istotnymi wzrostami dla obu zabiegów od dwóch do sześciu godzin i wyższymi wartościami OTM obserwowanymi w grupie AC220 przez cały czas.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
W niniejszym badaniu zastosowano test kometowy w celu oceny efektów genotoksycznych inhibitorów FLT3 typu I i typu II na komórkach 32D z mutacją FLT3, co wykazało znaczące uszkodzenia DNA wywołane przez AC220 w porównaniu z gilteritynibem. Wyniki te dostarczają kluczowych informacji niezbędnych do optymalizacji strategii terapeutycznych w ostrej białaczce szpikowej (AML).
Ilościowa ocena uszkodzeń DNA z wykorzystaniem testu komet w komórkach 32D wykazujących ekspresję mutanta FLT3 dostarcza cennych informacji pozwalających na optymalizację strategii stosowania inhibitorów FLT3 w procesie poszukiwania leków na ostrą białaczkę szpikową (AML). Różnice w profilach genotoksyczności między inhibitorami FLT3 typu I i typu II stanowią podstawę do racjonalnego planowania terapii skojarzonych oraz minimalizacji ryzyka mechanistycznego na etapie walidacji celu terapeutycznego. Wyniki te wspierają dostosowane do ryzyka wdrażanie oraz selekcję projektów w portfolio terapii celowanych w FLT3.
Ilościowe oznaczanie uszkodzeń DNA z wykorzystaniem testu komet uzupełnia kontinuum od etapu odkrywania do badań przedklinicznych w przypadku terapii AML celowanych w FLT3.