Name: Metoda chirurgiczna interwencji w strukturze podzastawkowej przez dostęp przez aortalny u normalnych świń rasy Bama (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2026-03-13T13:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 24 s
Description: Poznaj metodę chirurgiczną interwencji w strukturze podzastawkowej przez dostęp przez aortalny u świń rasy Bama. Technika umożliwia kontrolowane modelowanie LVOT i badań nad kardiomiopatią przerostową.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

To dzieło było wspierane przez Narodowy Program Kluczowych Badań i Rozwoju Chin (2023YFF0724701).

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Opieki nad Zwierzętami Instytucjonalnymi i ich Użytkowania (IACUC) Szpitala Fuwai Chińskiej Akademii Nauk Medycznych, pod numerem zgody 0106-1-20-ZX(X)-21. Wszystkie eksperymenty przeprowadzono zgodnie z wytycznymi ARRIVE oraz Przewodnikiem po opiece nad zwierzętami laboratoryjnymi (National Research Council/Institute of Laboratory Animal Resources). Zwierzęta były przetrzymywane w standardowych warunkach środowiskowych (temp. 20-26 °C, wilgotność 40-60%, cykl 12 godz. światło/ciemność) z wolnym dostępem do pokarmu i wody.
1. Przygotowanie zwierząt eksperymentalnych
<ol>
	<li>Uzyskać normalne dorosłe miniaturowe świnie Bama od certyfikowanego dostawcy świń eksperymentalnych w Pekinie (Numer licencji SCXK (Jing) 2018-0008). 
	UWAGA: Ta metoda została zweryfikowana na trzech zdrowych, żeńskich miniaturowych świniach Bama w wieku około 33-35 tygodni, o wadze 30-35 kg w momencie operacji.</li>
	<li>Przetrzymać zwierzęta w standardowym środowisku izolacyjnym przez co najmniej 7 dni przed operacją w celu przyzwyczajenia, pod kontrolowaną temperaturą (20-26 °C), wilgotnością (40-60%) i cyklem 12-godzinnym światło/ciemność, z wolnym dostępem do pokarmu i wody.</li>
	<li>Przeprowadzić kompleksową ocenę zdrowia 24 h przed operacją, obejmującą ocenę stanu psychicznego, apetytu, cech kału, integralności skóry, chodu i stanu oddechowego.</li>
	<li>Wstrzymać karmienie na 12 h i podawanie wody na 4 h przed zabiegiem w celu zmniejszenia ryzyka aspiracji podczas znieczulenia.</li>
	<li>Wykonać pomiar masy ciała i rejestrację identyfikacji przed operacją, wraz z zapisem wskaźników życiowych wyjściowych.</li>
	<li>W dniu operacji, przenieść zwierzęta do obszaru operacyjnego w celu ustanowienia dostępu dożylnego i przygotowania do indukcji znieczulenia.</li>
</ol>
2. Przygotowanie przedoperacyjne
<ol>
	<li>Ustanowienie dostępu żylnego małżowiny
	<ol>
		<li>Przed kateteryzacji żyły małżowiny, indukują znieczulenie/sedacja poprzez podanie domięśniowe chlorowodorku ketaminy (5–10 mg/kg) w połączeniu z Sumianxin II (złożony preparat znieczulający weterynaryjny, z głównym składnikiem chlorowodorek ksylazyny; 1 mg/kg). Po osiągnięciu odpowiedniej sedacji, ustanowić dostęp żylny przez żyłę brzeżną małżowiny w następujący sposób:
		<ol>
			<li>Wykonać łagodne naciśnięcie na proksymalnym odcinku żyły brzeżnej małżowiny, aby umożliwić napełnienie żyły. Za pomocą 22-G katetru dożylnego(22 GA × 1,00 cala; 0,8 × 25 mm), wprowadzić igłę wzdłuż przebiegu naczynia z dystalnego w kierunku proksymalnym.</li>
			<li>Po obserwacji powrotu krwi, wycofać mankiet i wprowadzić kateter w całości do żyły. Usunąć rdzeń igły, podłączyć trójdzielny korek i wstrzyknąć niewielką ilość sterylnego soli fizjologicznej, aby potwierdzić przepuszczalność.</li>
			<li>Upewnić się, że nie występuje podskórne wybrzuszenie i że wlewaniem jest płynne, a następnie zamocować korek taśmą chirurgiczną, aby ustabilizować kateter.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Znieczulenie 
	UWAGA: Zweryfikować odpowiednią głębokość znieczulenia i utratę odruchów przed wykonaniem jakichkolwiek inwazyjnych procedur, aby zapobiec stresowi lub bólowi.
	<ol>
		<li>Indukować znieczulenie poprzez wstrzyknięcie 1% roztworu propofolu przez żyłę małżowiny w dawce 2-4 mg/kg. Gdy zwierzę straci zdolność do utrzymania się w pozycji stojącej, wystąpi zmniejszenie świadomości i upadnie, natychmiast przenieść je do środka stołu operacyjnego.</li>
		<li>Umieścić zwierzę w pozycji leżącej na plecach i zamocować wszystkie cztery kończyny do boków stołu operacyjnego za pomocą pasków skręcających. Umieścić miękkie podkładki pod grzbietem i szyją, aby zapobiec urazom związanym z uciskiem.</li>
		<li>Po potwierdzeniu nieprzytomności, podać jednorazowo dożylnie bolus fentanylu (3–5 µg/kg) dla przeciwbólowego działania okołonacięciowego, następnie atracurium (0,2 mg/kg) w celu rozkurczu mięśni.</li>
		<li>Wykonać intubację tchawicy poprzez ujawnienie krtani za pomocą laryngoskopu. Wprowadzić odpowiednio wielkości katetr endotrachealny z mankietem (zalecany średnica wewnętrzna 6,5-7,5 mm) do tchawicy i przesunąć go do segmentu piersiowego, aby uniknąć zablokowania prawego przewodu oskrzelowego przedniego.</li>
		<li>Podłączyć katetr do wentylatora mechanicznego. Ustawić wentylator na objętość tętniczą 10-12 mL/kg, częstotliwość oddechów 12-16 oddechów/min, FiO2 100% i stosunek I:E 1:2. Potwierdzić wentylację obustronnych płuc przed zamocowaniem katetru endotrachealnego. Po indukcji znieczulenia, zastosować maść okulistyczną z erytromycyną

<ol><li>Harris, K. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence%2C+clinical+profile%2C+and+significance+of+left+ventricular+remodeling+in+the+end-stage+phase+of+hypertrophic+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Prevalence, clinical profile, and significance of left ventricular remodeling in the end-stage phase of hypertrophic cardiomyopathy.</a> Circulation. 114 (3), 216-225 (2006).</li>
<li>Pezel, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+interstitial+fibrosis%2C+left+ventricular+remodeling%2C+and+function+in+stage+A+and+B+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22JACC+Cardiovasc+Imaging%22%5BJournal%5D)">Imaging interstitial fibrosis, left ventricular remodeling, and function in stage A and B heart failure.</a> JACC Cardiovasc Imaging. 14 (5), 1038-1052 (2021).</li>
<li>Guo, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+clinical+effects+between+percutaneous+transluminal+septal+myocardial+ablation+and+modified+morrow+septal+myectomy+on+patients+with+hypertrophic+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+Med+J+%28Engl%29%22%5BJournal%5D)">Comparison of clinical effects between percutaneous transluminal septal myocardial ablation and modified morrow septal myectomy on patients with hypertrophic cardiomyopathy.</a> Chin Med J (Engl). 131 (5), 527-531 (2018).</li>
<li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mir-30d+regulates+cardiac+remodeling+by+intracellular+and+paracrine+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Mir-30d regulates cardiac remodeling by intracellular and paracrine signaling.</a> Circ Res. 128 (1), e1-e23 (2021).</li>
<li>Lv, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proline+metabolic+reprogramming+modulates+cardiac+remodeling+induced+by+pressure+overload+in+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Adv%22%5BJournal%5D)">Proline metabolic reprogramming modulates cardiac remodeling induced by pressure overload in the heart.</a> Sci Adv. 10 (19), eadl3549(2024).</li>
<li>Schauer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Empagliflozin+improves+diastolic+function+in+HFpEF+by+restabilizing+the+mitochondrial+respiratory+chain%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Empagliflozin improves diastolic function in HFpEF by restabilizing the mitochondrial respiratory chain.</a> Circ Heart Fail. 17 (6), e011107(2024).</li>
<li>Yang, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineered+model+of+heart+tissue+repair+for+exploring+fibrotic+processes+and+therapeutic+interventions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Engineered model of heart tissue repair for exploring fibrotic processes and therapeutic interventions.</a> Nat Commun. 15 (1), 7996(2024).</li>
<li>Fang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transapical+septal+myectomy+in+the+beating+heart+via+a+minimally+invasive+approach%3A+A+feasibility+study+in+swine%5BTitle%5D)+AND+%22Interact+Cardiovasc+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Transapical septal myectomy in the beating heart via a minimally invasive approach: A feasibility study in swine.</a> Interact Cardiovasc Thorac Surg. 30 (2), 303-311 (2020).</li>
<li>Zhou, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transapical+intramyocardial+septal+microwave+ablation+in+treatment+of+hypertrophic+obstructive+cardiomyopathy%3A+12-month+outcomes+of+a+swine+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Transapical intramyocardial septal microwave ablation in treatment of hypertrophic obstructive cardiomyopathy: 12-month outcomes of a swine model.</a> J Cardiothorac Surg. 19 (1), 205(2024).</li>
<li>Cui, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+histopathology+in+patients+with+obstructive+hypertrophic+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Myocardial histopathology in patients with obstructive hypertrophic cardiomyopathy.</a> J Am Coll Cardiol. 77 (17), 2159-2170 (2021).</li>
<li>Federspiel, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrofitting+the+heart%3A+Explaining+the+enigmatic+septal+thickening+in+hypertrophic+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Retrofitting the heart: Explaining the enigmatic septal thickening in hypertrophic cardiomyopathy.</a> Circ Heart Fail. 17 (5), e011435(2024).</li>
<li>Song, B., Dong, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+modified+with+classic+morrow+septal+myectomy+in+treating+hypertrophic+obstructive+cardiomyopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Medicine+%28Baltimore%29%22%5BJournal%5D)">Comparison of modified with classic morrow septal myectomy in treating hypertrophic obstructive cardiomyopathy.</a> Medicine (Baltimore). 95 (2), e2326(2016).</li>
</ol>

Autorzy tego rękopisu nie mają żadnych konfliktów interesów do zadeklarowania.

Nieprawidłowości struktur subwalwularnych lewej komory reprezentują krytyczne zmiany anatomiczne u pacjentów z przerostowym kardiomiopatią (HCM), prowadzące do upośledzenia kompliancji komorowej, podwyższonego ciśnienia rozkurczowego i obturacji lewokomorowego przełyku wypływowego (LVOT). Te strukturalne nieprawidłowości stanowią główne patologiczne podstawy dla klinicznego dysfunkcjonowania serca i niekorzystnych efektów10,11. W tym badaniu opracowałeśmy metodę ...

Nieprawidłowości w strukturach podzastawkowych lewej komory odgrywają kluczową rolę w różnych chorobach układu krążenia, szczególnie u pacjentów z przerostowym zapaleniem mięśnia sercowego (HCM), gdzie anomalie podzastawkowe przyczyniają się do obturacji lewokomorowego przewodu wypływowego (LVOT) i przerostowej przegrody międzykomorowej1. Te zmiany strukturalne nie tylko upośledzają napełnianie i wyrzut komory, ale mogą również prowadzić do poważnych powikłań, takich jak komorowe zaburzenia rytmu, nagła śmierć sercowa i przewlekła niewydolność serca2. Klinicznie, przetocznicowe chirurgiczne usunięcie tkanek lewej komory jest często stosowane u takich pacjentów w celu złagodzenie obturacji LVOT i poprawy rokowania3. Jednak tylko niewiele badań systematycznie zbadano fizjologiczne zmiany i procesy remodelacji komorowej po tej interwencji chirurgicznej, co ogranicza jej zastosowanie w badaniach podstawowych i rozwoju terapii translacyjnej.
Różne modele zwierzęce były szeroko stosowane do badania zmian strukturalnych podzastawkowych i strategii interwencji. Modele te znacząco przyczyniły się do zrozumienia mechanizmów molekularnych i tkankowych; jednakże wykazują zauważalne ograniczenia w symulacji klinicznych procedur chirurgicznych serca, szczególnie w osiągnięciu precyzyjnej ekspozycji i ukierunkowanego cięcia tkanek lewej komory. Problemy takie jak zniekształcenie anatomiczne, niedostateczna precyzja chirurgiczna i ograniczona próbka tkankowa nadal istnieją4,5,6,7. Te niedociągnięcia utrudniają szersze zastosowanie takich modeli w badaniach nad mechanizmami interwencji chirurgicznej, interwencji strukturalnej pooperacyjnej i ocenie biomateriałów.
W ostatnich latach modele zwierzęce symulujące interwencję w strukturach podzastawkowych lewej komory przez przetocznicę pozostały wyjątkowo ograniczone. Istniejące badania są głównie ograniczone do modyfikacji obecnych technik chirurgicznych, próbując interweniować w zlokalizowanych strukturach tkanek komorowych poprzez minimalnie inwazyjne ścieżki lub metody energetyczne. Jednak te podejścia znacząco różnią się od klinicznych praktyk chirurgicznych pod względem ścieżek chirurgicznych, stanu serca w trakcie operacji i strategii interwencji tkankowej, co utrudnia dokładne odtworzenie reakcji strukturalnych, hemodynamicznych, reperfusionowych i mechanicznego stresu indukowanych przez interwencje chirurgiczne8,9. Dlatego w niniejszym badaniu stworzyliśmy model chirurgiczny na dużych zwierzętach, który można powtórzyć, wykonując środkowe rozcięcie mostka i przednią ścianę aorty podczas wsparcia krążenia pozaustrojowego (CPB) u normalnych świń rasy Bama. Ten model umożliwia bezpośrednią ekspozycję lewokomorowego przewodu wypływowego i regionu podzastawkowego, po której następuje kontrolowane cięcie tkanek w celu promocji interwencji w strukturach podzastawkowych, zapewniając klinicznie istotną platformę dla przyszłych badań.
Konkretnie, model ten został zaprojektowany, aby naśladować ścieżkę proceduralną i środowisko operacyjne klinicznej przetocznicowej miektomii przegrody stosowanej u pacjentów z przerostowym zapaleniem mięśnia sercowego (HOCM). Nie jest przeznaczony do naśladowania patofizjologii HOCM ani służenia jako model chorobowy, ale raczej do odtworzenia warunków operacyjnych, w których wykonuje się interwencję podzastawkową.
Ten model służy jako standaryzowany rama chirurgiczna do badania interwencji strukturalnych podzastawkowych, oceny nowych urządzeń chirurgicznych serca i zapewniania powtarzalnej platformy treningowej dla eksperymentalnej chirurgii serca, w tym szkolenia chirurgicznego w zakresie przetocznicowej ekspozycji LVOT i kontrolowanej resekcji podzastawkowej, a także ostrych badań na poziomie tkankowym i histologicznym po określonych interwencjach strukturalnych.

<table><tbody><tr><td>0,9% iniekcja chlorku sodu</td><td>-</td><td>-</td><td>Używane do irygacyjnego nawadniania i rozcieńczania roztworów</td></tr><tr><td>Maszyna znieczuleniowa</td><td>-</td><td>-</td><td>Dostarcza znieczulenia wziewnego i wsparcia oddechowego</td></tr><tr><td>Znieczulenia (propofol, fentanyl, atrakuriusz)</td><td>-</td><td>-</td><td>Stosowane do indukcji i utrzymania znieczulenia</td></tr><tr><td>Aortalny retraktor</td><td>SINOVIEW</td><td>RT37008-25</td><td>Służy do odsunięcia aorty i poprawy widoczności</td></tr><tr><td>Atraumatyczne kleszcze</td><td>SINOVIEW</td><td>FC22500-24</td><td>Służą do chwytania tkanki, minimalizując traumę</td></tr><tr><td>Roztwór kardioplegii (St. Thomas)</td><td>-</td><td>-</td><td>Stosowany do zatrzymania czynności serca i jego ochrony</td></tr><tr><td>Maszyna i rurki do krążenia pozaustrojowego</td><td>-</td><td>-</td><td>Stosowany do utrzymania krążenia podczas operacji na otwartym sercu</td></tr><tr><td>Zestaw cewników do żyły centralnej</td><td>-</td><td>-</td><td>Służy do ustanowienia dostępu do żyły centralnej</td></tr><tr><td>Zestaw do intubacji przeztchawiczej i wentylatora</td><td>-</td><td>-</td><td>Utrzymywany do utrzymania przejrzystości dróg oddechowych podczas operacji</td></tr><tr><td>Płaski retraktor hakowy</td><td>SINOVIEW</td><td>RT37000-00</td><td>Służy do odstawiania tkanek w jamie klatki piersiowej</td></tr><tr><td>Retraktor ogólnego przeznaczenia</td><td>-</td><td>-</td><td>Służy do odstawiania tkanki i odsłonięcia obszaru operacyjnego</td></tr><tr><td>Kleszcze hemostatyczne</td><td>-</td><td>-</td><td>Służą do zaciśnięcia naczyń krwionośnych lub tkanki w celu osiągnięcia hemostazy</td></tr><tr><td>Iniekcja heparyny sodowej</td><td>-</td><td>-</td><td>Stosowany do przeciwkrzepliwości</td></tr><tr><td>Cewnik IV, radiopakowny 22 GA x 1,00 in</td><td>BD Angiocath</td><td>381123</td><td>Służy do ustanowienia dostępu żylnego</td></tr><tr><td>Kosz na mikrochirurgiczne instrumenty</td><td>SINOVIEW</td><td>90X0003</td><td>Służy do przechowywania i transportu mikrochirurgicznych instrumentów</td></tr><tr><td>Minimalnie inwazyjne zakrzywione nożyczki</td><td>SINOVIEW</td><td>SC40230-25</td><td>Stosowane w minimalnie inwazyjnych zabiegach do zakrzywionego cięcia</td></tr><tr><td>Minimalnie inwazyjne nożyczki dwuczęściowe</td><td>SINOVIEW</td><td>SC55001-29</td><td>Stosowany do precyzyjnego cięcia w głębokich polach operacyjnych</td></tr><tr><td>Trzypałeczkowy uchwyt do igieł</td><td>-</td><td>-</td><td>Służy do trzymania igieł szyjących podczas szycia</td></tr><tr><td>Rękojeść i łopatka skalpela</td><td>-</td><td>-</td><td>Służy do nacięcia skóry i tkanek</td></tr><tr><td>Sterylne prześcieradła, szwy, rękawiczki, maseczki</td><td>-</td><td>-</td><td>Służy do utrzymania sterylnego pola operacyjnego</td></tr><tr><td>Skrzynka sterylizacyjna na precyzyjne instrumenty</td><td>SINOVIEW</td><td>90X0401</td><td>Służy do czyszczenia i sterylizacji instrumentów chirurgicznych</td></tr><tr><td>Kleszcze tkankowe (ze szczecinie lub bez)</td><td>-</td><td>-</td><td>Służą do chwytania tkanki</td></tr><tr><td>Nożyczki do tkanki</td><td>SINOVIEW</td><td>SC35101-25SC</td><td>Stosowany do ogólnego cięcia tkanki</td></tr><tr><td>Trzypałeczkowe mikroklempsy</td><td>SINOVIEW</td><td>FC17010-301</td><td>Stosowane w mikrochirurgii do delikatnej manipulacji</td></tr><tr><td>Nożyczki ultraostre</td><td>SINOVIEW</td><td>SC35101-23UC</td><td>Stosowany do precyzyjnego cięcia tkanki</td></tr><tr><td>Cewnik do cewnikowania dróg moczowych i torba do drenażu</td><td>-</td><td>-</td><td>Stosowany do drenażu moczu i monitorowania</td></tr><tr><td>Monitor znaków życiowych</td><td>-</td><td>-</td><td>Monitoruje EKG, ciśnienie krwi, SpO2, temperaturę</td></tr></tbody></table>

metoda chirurgiczna interwencji w strukturze podzastawkowej przez dostęp przez aortalny u normalnych świń rasy bama

A Surgical Method for Subvalvular Structure Intervention Through a Transaortic Approach in Normal Bama Pigs

Nieprawidłowości struktur podzastawkowych prowadzące do zmian w lewym przedsionku (LVOT) i przerost mięśnia sercowego są charakterystycznymi cechami anatomicznymi chorób strukturalnych serca, takich jak kardiomiopatia przerostowa (HCM). Niniejsze badanie ustanawia metodę chirurgiczną interwencji w strukturach podzastawkowych aorty poprzez podejście przezaortalne u normalnych świń Bama. Zwierzęta zostały uzyskane od certyfikowanego dostawcy świń eksperymentalnych w Pekinie (Numer licencji SCXK (Jing) 2018-0008). Ta metoda została zweryfikowana u trzech zdrowych, żeńskich miniaturowych świń Bama w wieku około 33-35 tygodni, o wadze 30-35 kg w momencie operacji. Procedura obejmuje środkowe rozcięcie mostka i przednie nacięcie ściany aorty, wykonywane pod wsparciem obejścia krążenia pozaustrojowego (CPB), hipotermicznym zastój serca i bezpośrednią wizualizację LVOT i regionów podzastawkowych. Celowy naciąg tkanki, lokalizowanie i cięcie są wykorzystywane do remodelacji struktur podzastawkowych.
Pełny proces chirurgiczny obejmuje indukcję znieczulenia, umieszczenie centralnego cewnika żylnego i cewnika moczowodowego, dezynfekcję i prześcielenie miejsca operacji, środkowe rozcięcie mostka, nacięcie osierdzia i mobilizację serca. CPB jest ustawiane poprzez drenaż przedsionka prawego i retrogradową perfuzę zatoki wieńcowej. Po przednim nacięciu ściany aorty, do lewej komory dostęp jest uzyskany przez zastawkę aorty, a interwencja w tkance podzastawkowej jest przeprowadzana w stanie zatrzymania akcji serca. Procedura kończy się zamknięciem aorty, wznowieniem akcji serca, usunięciem CPB i zamknięciem klatki piersiowej. Przez cały czas trwania zabiegu utrzymywano stabilność hemodynamiczną, a zwierzę pozostawało w dobrym stanie bez zgonu pooperacyjnego. Po zabiegu powierzchnie nacięć były gładkie, a otaczające struktury pozostały nienaruszone.
Ta metoda wykazuje wysoką powtarzalność i kontrolowalność zabiegu, zapewniając stabilny model interwencji chirurgicznej do badania interwencji w strukturach podzastawkowych. Oferuje również platformę techniczną do przeprowadzania analizy histologicznej, walidacji chirurgicznej i oceny strategii interwencji.

To protokoll chirurgiczne umożliwia stabilne wyeksponowanie i kontrolowane cięcie struktur podzastawkowych w lewej komorze. Podczas zabiegu nacięcie aorty zostało dokładnie usytuowane, a wejście przez otwór aorty umożliwiło jasne uwidocznienie ujścia lewej komory i powiązanego obszaru podzastawkowego. Chirurg zlokalizował obszar cięcia poprzez zastosowanie uciągu na wcześniej umieszczonej szwie i zakończył ukierunkowane cięcie tkanki podzastawkowej pod bezpośrednim widzeniem, używając małych, zakrzywionych nożyczek. Bada...

Niniejsze badanie przedstawia metodę chirurgiczną interwencji w strukturze zastawki aortalnej podzastawkowej za pomocą ukierunkowanego cięcia tkanki przez przejście przez aortę u normalnych świń Bama.

Metoda chirurgiczna interwencji w strukturze podzastawkowej przez dostęp przez aortalny u normalnych świń rasy Bama

Subvalvular structure abnormalities leading to left ventricular outflow tract (LVOT) alterations and myocardial hypertrophy are characteristic anatomical ...

To studium opracowuje wykonywalną metodę chirurgiczną przez aortalną technikę badania interwencji podzastawkowych w warunkach klinicznie istotnych. Ten protokół może być zastosowany do szkolenia chirurgicznego, analizy histologicznej i oceny strategii interwencji podzastawkowych. Po przygotowaniu zwierzęcia, wykonać nacięcie środkowe wzdłuż mostka, rozciągające się od wyrostka mieczykowatego do około dwóch centymetrów poniżej wyrostka mieczykowatego.Używając urządzenia do elektrokauteri, naciąć skórę i tkanki podskórne, utrzymując długość nacięcia około 20 centymetrów. Kontynuować oddzielanie mięśnia piersiowego większego i okostnej mostka. W pełni eksponować przednią powierzchnię mostka.Delikatnie odrywać boczne tkanki za pomocą pomocy asystenta, aby utrzymać jasne pole chirurgiczne. Po ekspozycji mostka, włożyć nóż lebschego pod wyrostek mieczykowaty i zastosować siłę pociągającą w górę. Za pomocą małego młotka, ostrożnie i równomiernie stukać końcówką noża lebschego.Stopniowo dzielić mostek wzdłuż linii środkowej, idąc w kierunku górnym, aż do otwarcia jamy klatki piersiowej. Utrzymać ciągłą siłę pociągającą w górę przez cały proces, aby uniknąć odchylenia lub uszkodzenia osierdzia. Po zakończeniu podziału mostka, umieścić wyciągacz żeber Finochietto.Powoli rozszerzać jamę klatki piersiowej po obu stronach, aby poszerzyć pole operacyjne, unikając nadmiernego odchylania, aby zapobiec urazowi opłucnej lub złamania żeber. Wykonać dysekcję stępioną po obu stronach, aby oddzielić osierdzie od opłucnej śródpiersiowej i sąsiednich tkanek łącznych. Po zakończeniu dysekcji, eksponować serce pod bezpośrednią wizualizacją.Potwierdzić jasną identyfikację kluczowych struktur anatomicznych, w tym aorty, tętnicy płucnej, wyrostka przedsionka prawego, szczytu serca i zatoki wieńcowej. Po osiągnięciu odpowiedniej ekspozycji serca, umieścić szydełkową szwę w podstawie wyrostka przedsionka prawego. Wykonać małe nacięcie w pętli szwu i włożyć kaniulę do drenażu żylnego ukośnie w dół wzdłuż osi wyrostka przedsionka prawego, aby ustalić drogę powrotną żylną dla wspomagania krążenia i oddychania.Wprowadzić kaniulę około trzy do czterech centymetrów, aby upewnić się, że jej końcówka wchodzi w jamę przedsionka prawego i zabezpieczyć kaniulę do wyrostka przedsionka za pomocą szwów jedwabnych, aby zapobiec zsuwaniu się lub wyciekowi. Włożyć kaniulę perfuzji przez region wyrostka przedsionka prawego do zatoki wieńcowej, aby służyć jako ścieżka napływu dla dostarczania kardioplegii i perfuzji mięśnia sercowego. Aktywować pompę do odprowadzania żył, aby rozpocząć częściowe drenaż żylny.Stopniowo otwierać pompę tętniczą, aby utrzymać ciśnienie perfuzji na poziomie 60 do 80 milimetrów rtęci. Wlewać schłodzoną kardioplegię z wysokim poziomem potasu przez zatoki wieńcowe, aby wywołać zatrzymanie akcji serca i rejestrować czas zatrzymania. Nałożyć wstępnie przygotowane sterylne szlamy zamarzniętego soli fizjologicznej na powierzchnię serca, aby dalsze zmniejszyć temperaturę mięśnia sercowego, zmniejszyć zapotrzebowanie metaboliczne i wzmocnić ochronę mięśnia sercowego.Po osiągnięciu zatrzymania kardioplegicznego i hipotermicznej ochrony, wykonać poziome nacięcie o długości około jednego do 1,5 centymetra na przedniej ścianie tętnicy wstępującej. Umieścić nacięcie około 1,5 do dwóch centymetrów powyżej pierścienia zastawki aortalnej i ustalić je prostopadle do długiej osi aorty. Włożyć dwa zakrzywione haczyki blaszkowe do nacięcia aortowego z lewej strony grzbietowej i brzusznej i delikatnie odrywać nacięcie bocznie, aby otworzyć korzeń aorty i poszerzyć pole chirurgiczne.Teraz, przesuń małe zakrzywione nożyczki przez nacięcie aortowe wzdłuż osi aorty w kierunku komory lewej. Używając szwu pociągającego, eksponować docelową podzastawkową strefę. Pod bezpośrednią wizualizacją, ustalić nożyczki poziomo i w kontrolowany sposób wyciąć wyznaczone struktury podzastawkowe.Usunąć przecięty materiał i przekazać asystentem. Na koniec, zamknąć nacięcie aortowe za pomocą ciągłych wchłanianych szwów. Zacząć od jednego końca nacięcia i sekwencyjnie przepuszczać igłę przez blaszkę wewnętrzną i śródbłonek, używając równomiernie rozmieszczonych szwów, aby zapewnić całkowite szczelne zamknięcie.Po zamknięciu nacięcia aortowego, przywrócić perfuzję serca i obserwować spontaniczne ponowne bicie serca. Po umieszczeniu zamkniętych drenów, zamknąć mostek za pomocą przerywanych drutów ze stali nierdzewnej i wykonać rutynowe warstwowe zamknięcie ściany klatki piersiowej. Całkowity czas operacji wynosił około 2,5 do trzech godzin.Wspomaganie krążenia i oddychania utrzymywano przez około 60 do 71 minut. Po przywróceniu perfuzji serca, spontaniczne ponowne bicie serca obserwowano u wszystkich zwierząt ze stabilnym rytmem zatokowym. Po zabiegu nie zaobser

a-surgical-method-for-subvalvular-structure-intervention-through

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Ten film pokazuje procedurę chirurgiczną polegającą na zlokalizowaniu i wypreparowaniu aorty podnerkowej z otaczających tkanek w celu uzyskania do niej dostępu. Odsłonięta aorta może być wykorzystana do dalszych badań.

Odsłanianie podnerkowej aorty brzusznej w modelu świni: zabieg chirurgiczny w celu uzyskania dostępu do podnerkowej aorty brzusznej świni w celu dalszych badań

W tym filmie demonstrujemy procedurę chirurgicznego usuwania aorty u miniaturowych świń. Komórki śródbłonka pobrane z tych izolowanych aort mogą być dalej hodowane w warunkach in vitro w celu zbadania krzepnięcia i odpowiedzi immunologicznej.

Izolacja aorty świń: zabieg chirurgiczny polegający na wycięciu aorty piersiowej od miniaturowych świń w celu dalszej analizy

Celem tego protokołu jest zademonstrowanie umieszczenia urządzenia do opóźnionego zwężania (ameroid zwężającego) wokół tętnicy wieńcowej w modelu świni. To urządzenie tworzy niedokrwiony obszar serca, który jest przydatny do badania nowych technik obrazowania diagnostycznego i nowych metod leczenia.

Model przewlekłego niedokrwienia serca u świń przy użyciu zwężacza ameroidowego

Ten protokół przedstawia chirurgiczny duży zwierzęcy model przewlekłego, pojedynczego niedokrwienia naczynia, który powoduje nieprawidłowości regionalne, ale nie tworzy zawału, znanego jako hibernujący mięsień sercowy. Po ustaleniu przewlekłego niedokrwienia zwierzęta są leczone operacją pomostowania tętnic wieńcowych-LAD w celu rewaskularyzacji niedokrwionej tkanki.

Chirurgiczny model przewlekłego niedokrwienia serca leczony metodą pomostowania tętnic wieńcowych poza pompą

Tutaj prezentujemy protokół demonstrujący model wstrząsu krwotocznego u świń, który wykorzystuje okluzję aorty jako pomost do ostatecznej opieki w przypadku urazu. Model ten ma zastosowanie w testowaniu szerokiego zakresu chirurgicznych i farmakologicznych strategii terapeutycznych.

Całkowita i częściowa niedrożność aorty w leczeniu wstrząsu krwotocznego u świń

Ten nowatorski model tworzy silne tętniaki aorty podnerkowej u świń za pomocą kombinacji angioplastyki balonowej, perfuzji elastazy/kolagenazy, miejscowego stosowania elastazy i doustnego podawania związków β-aminopropionitrylu, które zakłócają sieciowanie kolagenu.

Świński model tętniaka aorty brzusznej

Obecny protokół opisuje zmodyfikowaną i uproszczoną technikę z minimalnie inwazyjną procedurą poprzecznego zwężenia aorty (TAC) przy użyciu samodzielnie wykonanego retraktora. Procedura ta może być przeprowadzona bez respiratora lub mikroskopu i wprowadza przeciążenie ciśnieniem, ostatecznie prowadząc do przerostu serca lub niewydolności serca.

Zmodyfikowana technika poprzecznego zwężenia aorty u myszy

Ten protokół opisuje minimalnie inwazyjną procedurę chirurgiczną dla wstępującego pasma aorty u świń.

Małoinwazyjny model zwężenia zastawki aortalnej u świń

W niniejszym badaniu zaproponowano przedkliniczny ortotopowy model przeszczepu serca u miniaturowych świń Bama, wykorzystujący technikę dwuprzedsionkową. Model ma zastosowanie w immunologii transplantacyjnej, ocenie leków i optymalizacji technik chirurgicznych, zapewniając wsparcie dla klinicznych zastosowań transplantacji serca.

Przedkliniczny model ortotopowego przeszczepienia serca u miniaturowych świń z Bama z wykorzystaniem techniki dwuprzedsionkowej

W tym artykule przedstawiono protokół wszczepienia urządzenia wspomagającego lewą komorę (LVAD) prosiakowi. Model ten stanowi skuteczny sposób badania implantacji LVAD u dzieci oraz ujawnienia mechanizmu odwrotnej remodelacji komory w leczeniu LVAD.

Wszczepienie urządzenia wspomagającego lewą komorę (LVAD) u młodocianych świń landrace: model implantacji LVAD dla niewydolności serca u dzieci

Poznaj metodę chirurgiczną interwencji w strukturze podzastawkowej przez dostęp przez aortalny u świń rasy Bama. Technika umożliwia kontrolowane modelowanie LVOT i badań nad kardiomiopatią przerostową.

Metoda chirurgiczna interwencji w strukturze podzastawkowej przez dostęp przez aortalny u normalnych świń rasy Bama

Przeglądaj więcej filmów