8 maja 2026
Opracowano trwały i możliwy do powtórzenia sposób utworzenia 2D pierwotnych kultur komórek wzbogaconych o strefę kłębuszkową i strefę prążkową kory nadnerczy u myszy. System ten zachowuje kluczowe cechy molekularne i funkcjonalne każdej strefy, umożliwiając skupioną analizę szlaków sygnałowych, produkcji hormonów oraz zachowania komórek kory nadnerczy ex vivo.
Moje badania dotyczyły regulacji mikrośrodowiska nadnerczy, koncentrując się na sygnałowaniu ACM i Wnt w różnicowaniu strefy ziarnistej i prążkowanej oraz rozwoju guzów. Istniejące metody nie pozwalają wyraźnie odróżnić stref nadnerczy. Ten protokół wzbogaca ZG i ZF, umożliwiając badanie różnych typów komórek.
Ten protokół można zastosować do badania adrenofizjologii w ZG i ZF, w tym zonizacji i różnicowania komórek. Aby odizolować gruczoł nadnerczy do strefy wzbogaconej w kulturę pierwotną, użyj 10 do 15 młodych dorosłych myszy, w wieku około sześciu do siedmiu tygodni. Po uśmierceniu myszy ułóż ją w pozycji leżącej na plecach na sterylnej płaskiej powierzchni i wyczyść futro zwierzęcia 70%alkoholem.
Za pomocą nożyczek wykonaj początkowy nacięcie w okolicy pachwinowej brzucha. Przedłuż nacięcie w kierunku bocznym w stronę klatki piersiowej po obu stronach, aby odsłonić otrzewną. Ostrożnie odstąp skórę.
Następnie delikatnie cofnij mięśnie brzucha, aby odsłonić jamę, unikając uszkodzenia naczyń krwionośnych, aby zachować jasne widzenie gruczołów nadnerczy. Zmień narzędzia chirurgiczne, aby zminimalizować zakażenie drobnoustrojami. Zidentyfikuj lewy gruczoł nadnerczy zlokalizowany medialnie i powyżej lewej nerki w otrzewnej o owalnym kształcie i różowym zabarwieniu otoczonym białym tkanką tłuszczową.
Za pomocą tępych kleszczy ostrożnie przesuń sąsiednie narządy, aby poprawić widoczność gruczołu nadnerczy. Za pomocą nożyczek usuń większość otaczającej tkanki tłuszczowej krótkimi kontrolowanymi cięciami, aby odizolować gruczoł nadnerczy. Unikaj bezpośredniego chwytania gruczołu nadnerczy, aby zapobiec uszkodzeniu jego torebki.
Natychmiast umieść odizolowany gruczoł nadnerczy w naczyniu hodowlanym P60 zawierającym 10 mililitrów podgrzanego pojemnika DMEM F-12, aż wszystkie próbki zostaną zebrane. Następnie zidentyfikuj prawą gruczoł nadnerczy zlokalizowaną bocznie i powyżej prawej nerki w otrzewnej, zauważając, że jego bliskość wątroby, wznoszącej się części okrężnicy i pobliskich naczyń krwionośnych może utrudniać wizualizacje. Ostrożnie manipuluj żyłami nerkowymi i tętnicami nerkowymi, aby uniknąć przypadkowych cięć i krwawień.
Po odizolowaniu prawego gruczołu nadnerczy, używając tej samej procedury co dla lewego gruczołu nadnerczy, umieść obie gruczoły razem w tej samej misce. Wytrzyj naczynie hodowlane 70%alkoholem przed przeniesieniem gruczołów do wyciągu laminarnego. Następnie przemyj gruczoły nadnerczy trzykrotnie, sekwencyjnie przenosząc je przez naczynia zawierające PBS w temperaturze 25 stopni Celsjusza.
Po ostatnim płukaniu zebrane i utrzymane tkanki w czwartym naczyniu zawierającym podgrzanym DMEM, aby zachować żywotność podczas przygotowania wielu gruczołów. Przenieś gruczoły nadnerczy na papier filtrujący do dysekcji. Następnie, za pomocą drobnych kleszczy, chwytaj gruczoł nadnerczy za przylegającą tkankę tłuszczową.
Ostrożnie przeprowadź dysekcję tłuszczu na papierze filtrującym za pomocą kontrolowanych ruchów, aby uniknąć uszkodzenia torebki. Upewnij się, że gruczoł jest gładki i nienarużony, oraz wolny od nadmiaru tkanki tłuszczowej i łącznej. Ostrożnie przenieś gruczoły nadnerczy na świeży papier filtrujący, aby ułatwić precyzyjną dysekcję mikro.
Za pomocą drobnych kleszczy delikatnie ściśnij torebkę gruczołu nadnerczy. Za pomocą ostrza skalpela wykonaj nacięcie promieniowe w gruczołach bez całkowitego przecięcia tkanki. Wywierz lekką siłę mechaniczną, aby wypchnąć zawartość kory na zewnątrz przez nacięcie.
Wystaw materiał wewnętrzny gruczołu, zachowując połączenie torebki i strefy ziarnistej z końcówką kleszczy. Zidentyfikuj wypchnięty wewnętrzny materiał gruczołowy jako strefę prążkowaną i miąższ. Rozpocznij trawienie enzymatyczne dopiero po przetworzeniu wszystkich gruczołów, aby zapewnić odpowiednie mechaniczne rozdzielenie stref zewnętrznych i wewnętrznych.
Po wyśrodkowaniu zawieś zebrane komórki w pojemniku hodowli. Po utworzeniu hodowli komórek nadnerczy wykonaj charakteryzację molekularną hodowanych komórek za pomocą analizy ekspresji genów i barwienia immunologicznego. Pierwotne hodowle komórek nadnerczy zostały pomyślnie utworzono z zewnętrznej frakcji wzbogaconej w komórki strefy ziarnistej i wewnętrznej frakcji wzbogaconej w komórki strefy prążkowanej.
Model myszy do śledzenia pochodzenia umożliwił wizualizacje specyficznej dla strefy ziarnistej ekspresji mGFP napędzanej przez promotor Cyp11b2. Ekspresja mGFP była przeważnie obserwowana w hodowlach wzbogaconych w strefę ziarnistówkę, podczas gdy hodowle wzbogacone w strefę prążkowaną wykazywały przede wszystkim ekspresję mTomato. Wyższe poziomy ekspresji względnej Cyp11b2, Dab2 i Sonic hedgehog były obserwowane w hodowlach zewnętrznej frakcji w porównaniu z hodowlami wewnętrznej
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy artykuł przedstawia nowy protokół frakcjonowania i hodowli pierwotnej w celu izolacji i badania komórek specyficznych dla poszczególnych stref kory nadnerczy dorosłej myszy. Poprzez mikrodysekcję nadnerczy i tworzenie dwuwymiarowych (2D) hodowli pierwotnych wzbogaconych odpowiednio w komórki strefy kłębowatej (zG) lub strefy pasmowatej (zF), metoda ta umożliwia szczegółowe badanie charakterystyki molekularnej, komórkowej i funkcjonalnej unikalnej dla każdej strefy nadnerczy.
Pierwotne hodowle wzbogacone w konkretne strefy kory nadnerczy myszy wypełniają krytyczną lukę w endokrynologii na etapie odkrywania leków, umożliwiając mechanistyczną redukcję ryzyka i walidację punktów uchwytu w systemie istotnym fizjologicznie. Model ten zapewnia pewność predykcyjną w badaniu szlaków sygnałowych oraz ocenie funkcjonalnej sygnalizacji specyficznej dla stref nadnerczy, co bezpośrednio wpływa na decyzje dotyczące portfela projektów we wczesnej fazie. Powtarzalność i wierność biologiczna tych hodowli ułatwiają rzetelną ocenę endokrynnych punktów uchwytu oraz mechanizmów.
Ten system hodowli pierwotnej integruje się z ciągiem procesów odkrywczych, od wczesnego testowania hipotez, przez identyfikację związków wiodących, aż po walidację przedkliniczną dla celów terapeutycznych w nadnerczach.