ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Badanie to zostało wsparte przez program System Innowacji Regionalnej i Edukacji (RISE) poprzez Centrum Gangwon RISE, fundowane przez Ministerstwo Edukacji (MOE) i Państwo Gangwon (G.S.), Republika Korei (2026-RISE-10-001). Obecne badania zostały przeprowadzone w ramach Programu Wsparcia dla Wybitnych Badaczy Uniwersytetu Kwangwoon w 2026 roku

W tym badaniu zastosowano komercyjnie pozyskiwaną, anonimową, zbiorczą ślinę ludzką. Nie rekrutowano żadnych uczestników ludzkich, a zgoda instytucjonalna na etykę nie była wymagana.
1. Przygotowanie próbki śliny
<ol>
	<li>Instruuj uczestników, aby powstrzymali się od jedzenia i picia przez co najmniej 30 min przed pobraniem próbki.</li>
	<li>Przygotuj próbkę śliny zgodnie z instrukcjami dostawcy. 
	UWAGA: W tym badaniu do walidacji na poziomie protokołu zastosowano komercyjnie dostępną zbiorczą ślinę ludzką.</li>
	<li>Delikatnie wymieszaj próbkę śliny przed użyciem, aby zapewnić jednorodność.</li>
	<li>Przechowywaj próbki śliny w temperaturze 4 °C i używaj ich w okresie przechowywania zalecanym przez dostawcę.</li>
</ol>
2. Przygotowanie membrany pokrytej RBCM (Rysunek 1A)
<ol>
	<li>Izoluję RBCM z pełnej krwi zgodnie z wcześniej opisanym protokołem16.
	<ol>
		<li>Użyj komercyjnie pozyskiwanej ludzkiej pełnej krwi antikoagulowanej K2EDTA jako źródła RBCM.</li>
		<li>Centryfuguj pełną krew w 800 × g przez 5 min i po odjęciu osocza i pokrywy zbiorniczkowej zebraj frakcję czerwonych krwinek.</li>
		<li>Umyj izolowaną frakcję czerwonych krwinek trzykrotnie lodowatą buforowaną solą fosforanowo-fosforanową (PBS) przy użyciu delikatnego mieszania ręcznego.</li>
		<li>Resuspenduj umytą frakcję czerwonych krwinek w lodowanej 0,25 × PBS na 30 min, aby wywołać hemolizę.</li>
		<li>Oddziel wolny hemoglobinę, centryfugując zlizywaną zawiesinę w 20 000 × g przez 30 min i zebranie pelletu RBCM.</li>
		<li>Umyj zebrany pellet RBCM dodatkowo trzykrotnie w 0,25 × PBS i przechowuj blado różowy pellet RBCM w -80 °C do dalszego użytku.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotuj membranę polietersulfonową (PES) o wielkości porów 30 nm i średnicy 13 mm.</li>
	<li>Nanieś 100 μL 2% (w/v) roztworu RBCM na jedną stronę membrany PES. Delikatnie rozprowadź lub wydziel kroplowo roztwór, aż cała powierzchnia membrany zostanie w pełni zwilżona.</li>
	<li>Inkubować membranę w 50 °C przez 30 min, aby zapewnić jednolite pokrycie i wysuszenie.</li>
	<li>Przechowywaj pokrytą membranę w temperaturze pokojowej i używaj jej w ciągu 15 dni po przygotowaniu17. 
	UWAGA: Szczegółowa charakterystyka pokrytej RBCM membrany PES została opisana w naszym poprzednim badaniu16.</li>
</ol>
3. Wykonanie urządzenia SaliFilter (Rysunek 1B)
<ol>
	<li>Umieść membranę pokrytą RBCM w wyznaczonym uchwycie filtra.</li>
	<li>Złóż urządzenie, mocując mocno komponenty wejściowe i wyjściowe.</li>
	<li>Przymocuj strzykawkę 1 mL do wejścia urządzenia. 
	UWAGA: Upewnij się, że wszystkie komponenty są szczelnie zamknięte, aby zapobiec wyciekowi podczas działania.</li>
</ol>
4. Pretreatowanie śliny 
<ol>
	<li>Naładuj 500 μL śliny do strzykawki podłączonej do urządzenia SaliFilter.</li>
	<li>Naładuj ręcznie, aby przepuścić próbkę śliny przez membranę (ok. 2 min).</li>
	<li>Zbierz przetretowaną ślinę z wyjścia.</li>
	<li>Użyj przetretowanej próbki natychmiast lub przechowuj w 4 °C do dalszej analizy.</li>
</ol>
5. Analiza białek śliny metodą SDS-PAGE
<ol>
	<li>Wymieszaj 15 μL próbki z 5 μL buforu próbki Laemmli.</li>
	<li>Wprowadź mieszaninę do osobnych dołków żelu SDS-PAGE 8%.</li>
	<li>Przeprowadź elektroforezę z 150 V przez 40 min.</li>
	<li>Barw żel niebieskim Coomassie przez 2 godz.</li>
	<li>Odbarw żel w wodzie destylowanej na noc.</li>
	<li>Zdrap zdjęcia żelu za pomocą smartfonu lub systemu obrazowania.</li>
</ol>
6. Wykrywanie kortyzolu za pomocą testu bocznego przepływu (LFA)
<ol>
	<li>Nanieś 150 μL przetretowanej śliny na próbnik LFA.</li>
	<li>Pozwól próbce na migrację wzdłuż paska przez 10 min.</li>
	<li>Zdrap zdjęcia wyników testu za pomocą smartfonu lub systemu obrazowania.</li>
	<li>Otwórz zdjęcie LFA w ImageJ i użyj Obraz > Kolor > Rozdziel kanały, aby rozdzielić kanały RGB.</li>
	<li>Użyj obrazu kanału zielonego do analizy intensywności linii testowej.</li>
	<li>Wybierz prostokątny obszar zainteresowania (ROI) o wymiarach 100 × 10 pikseli, pokrywający linię testową i zastosuj ten sam rozmiar ROI do wszystkich obrazów paska.</li>
	<li>Zmierzyj średnią wartość intensywności linii testowej ROI. Wybierz przyległy pusty obszar membrany o tej samej wielkości ROI i zmierzyj intensywność tła.</

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów do zadeklarowania.

Diagnostyka oparta na śluzie oferuje bezinwazyjną alternatywę dla analizy krwi. Jednak ich szersze zastosowanie było ograniczone przez wewnętrzną lepkość śliny i obecność zakłócających składników, takich jak mucyny i białka. Czynniki te zakłócają przepływ napędzany przez kapilarność i obniżają wydajność prostych platform analitycznych, w tym LFA, co wymaga skutecznej pretrakmentacji próbki.
W niniejszym badaniu udowodniliśmy, że proponowany przenośny urządzenie do filtracji, SaliFilter, skutec...

Kortyzol, hormon glikokortykoidowy wydzielan przez korę nadnerczy, jest kluczowym biomarkerem do oceny stresu fizjologicznego1,2. Może być mierzony w wielu płynach biologicznych, w tym w surowicy, osoczu, moczu, płynie międzykomórkowym i ślinie, przy czym krew i ślina są najczęściej stosowane w praktyce klinicznej3. Chociaż pomiary oparte na krwi dostarczają wiarygodnych informacji ilościowych, wymagają inwazyjnego pobrania krwi i wykwalifikowanego personelu, co ogranicza ich przydatność do częstego lub podłużnego monitorowania4,5,6. Natomiast pomiar kortyzolu w ślinie oferuje nieinwazyjną i wygodną alternatywę, umożliwiającą zastosowania w punkcie opieki i samodzielne monitorowanie7,8. Należy zauważyć, że poziomy kortyzolu w ślinie koreluje silnie z stężeniami we krwi, co potwierdza ślinę jako wiarygodną próbkę zastępczą9. Jednakże, właściwa lepkość śliny i obecność zakłócających składników znacznie utrudniają analityczne osiągi, wymagając skutecznej pretrakmentacji przed analizą10,11,12.
Zostało zbadane wiele strategii pretrakmentacji w celu rozwiązania tych wyzwań. Odwirowanie jest szeroko stosowane do usuwania dużych składników, takich jak mucyny, białka i pozostałości komórkowe. Jednakże, wymaga ono obszernego sprzętu laboratoryjnego i wielu etapów przetwarzania, co ogranicza jego przydatność w ustawieniach zdecentralizowanych13,14. Rozcieńczanie buforami może zmniejszyć lepkość i poprawić przepływ próbek15. Niemniej jednak, jednocześnie obniża stężenie analitu, co kompromituje czułość analityczną. W rezultacie, istniejące podejścia pozostają niewystarczające dla aplikacji w punkcie opieki, gdzie szybkie, niewymagające sprzętu przetwarzanie i zachowanie analitów docelowych są niezbędne.
Aby pokonać te ograniczenia, opracowaliśmy SaliFilter, ręczne urządzenie do pretrakmentacji śliny, dostosowane do wykrywania kortyzolu w punkcie opieki. Urządzenie wykorzystuje mechanizm filtracji, który selektywnie usuwa substancje zakłócające o wysokiej masie cząsteczkowej, zezwalając na przejście małych cząsteczek, w tym kortyzolu16. Urządzenie obsługiwane ręcznie umożliwia szybkie, przyjazne dla użytkownika przetwarzanie bez konieczności używania sprzętu zewnętrznego. Eliminując zakłócające składniki, to podejście poprawia przepływ kapilarny w testach przepływowych bocznych, zwiększając w ten sposób niezawodność analityczną. Ten protokół opisuje wykonanie urządzenia i jego zastosowanie do szybkiego pretrakmentacji śliny przed wykrywaniem kortyzolu za pomocą testów przepływowych bocznych.

<table><tbody><tr><td>Artificial saliva</td><td>Solarbio, China</td><td>A7990</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rad Protein Assay Dye Reagent</td><td>Bio-Rad, USA</td><td>5000006</td><td>Dla badania Bradford</td></tr><tr><td>Coomassie blue</td><td>Abcam, UK</td><td>ab119211</td><td>Do wizualizacji pasków białkowych</td></tr><tr><td>Cortisol ELISA Kit</td><td>Abcam, UK</td><td>ab154996</td><td></td></tr><tr><td>Cortisol LFA</td><td>In-house</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hot plate</td><td>Daihan Scientific, Republic of Korea)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hydrocortisone (Cortisol)</td><td>Sigma-Aldrich, USA</td><td>PHR1014</td><td></td></tr><tr><td>Laemmli sample buffer</td><td>GenDEPOT, USA</td><td>L1200-001</td><td>Do denaturacji białka przed SDS-PAGE</td></tr><tr><td>Membrane holder</td><td>GVS Filter Technology</td><td>1220950</td><td>Przyrząd średnicy 13mm</td></tr><tr><td>Mini-PROTEAN&reg; Tetra Cell for 0.75 mm Gels</td><td>Bio-Rad, USA</td><td>1658000</td><td>Do elektroforetycznej separacji białek</td></tr><tr><td>Mucin</td><td>Sigma-Aldrich, USA</td><td>M2378</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000 spectrophotometer</td><td>Thermo Fisher Scientific, USA</td><td></td><td>Do badania białka</td></tr><tr><td>PES membranes</td><td>STERLITECH, USA</td><td>PES00313100</td><td>0.03 Mikron, 13 mm membrana PES</td></tr><tr><td>Phosphate-buffered saline (PBS)</td><td>DUKSAN, Republic of Korea</td><td>LB004</td><td></td></tr><tr><td>Pooled Human Saliva</td><td>Innovative Research Inc., USA</td><td>IRHUSL5ML</td><td></td></tr><tr><td>RBCM</td><td>In-house</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Resolving Gel Buffer for PAGE</td><td>Bio-Rad, USA</td><td>1610798</td><td>Do przygotowania paska rozdzielającego</td></tr><tr><td>Salivette Cortisol</td><td>SARSTEDT, Germany</td><td>51.1534.500</td><td>Zestaw do pobierania śliny</td></tr><tr><td>Stacking Gel Buffer for PAGE</td><td>Bio-Rad, USA</td><td>1610799</td><td>Do przygotowania paska zbierającego</td></tr><tr><td>Super&bull;SAL&trade;</td><td>Oasis Diagnostics, USA</td><td>SSAL-601</td><td>Zestaw do pobierania śliny</td></tr><tr><td>Syringe</td><td>koreavaccine, Republic of Korea)</td><td></td><td>Objętość 1 mL</td></tr><tr><td>TEMED</td><td>Bio-Rad, USA</td><td>1610800</td><td>Do polimeryzacji akryloamidu</td></tr></tbody></table>

urządzenie przenośne do przetwarzania śliny w celu poprawy wykrywania kortyzolu

Handheld Device for Saliva Pretreatment to Improve Cortisol Detection

Wykrywanie kortyzolu w ślinie oferuje nieinwazyjną alternatywę dla analiz opartych na krwi. Jednak jego praktyczne wdrożenie jest nadal ograniczone przez wewnętrzną lepkość śliny oraz obecność składników interferencyjnych. W szczególności mucyny i białka ślinowe utrudniają przepływ napędzany kapilarnie i zmniejszają wiarygodność późniejszych testów przepływowych (LFA), co sprawia, że konieczne są skuteczne i dostępne strategie pre-obróbki. Prezentujemy tu przenośne urządzenie do pre-obróbki śliny, o nazwie SaliFilter, do wykrywania kortyzolu w punkcie opieki. Urządzenie wykorzystuje mechanizm filtracji, który selektywnie usuwa składniki interferencyjne o dużej masie cząsteczkowej, pozwalając jednocześnie na przejście małych cząsteczek, w tym kortyzolu. Obsługiwane przez prostą ręczną presję, umożliwia szybkie przetwarzanie próbek (ok. 2 min) bez potrzeby zewnętrznego sprzętu, czyniąc je odpowiednim dla zdecentralizowanych ustawień. Wydajność urządzenia została oceniona za pomocą pomiarów mętności, ilościowego oznaczania białek i SDS-PAGE, które potwierdziły efektywne usuwanie mucyn i białek ślinowych. Przetworzone próbki wykazywały zwiększony przepływ kapilarny, co skutkowało stabilnym i wiarygodnym działaniem LFA. Analiza ilościowa wykazała poprawę powtarzalności sygnału, a wykrywanie kortyzolu osiągnęło limit wykrywalności 1,47 ng mL⁻1 w klinicznie istotnych zakresach stężeń. Ten protokół ustanawia skuteczną strategię pre-obróbki śliny, która poprawia czułość analityczną i wiarygodność bez kompromisu dla integralności analitu. Proponowany podejście zapewnia praktyczne, przenośne rozwiązanie dla diagnostyki opartej na ślinie, z potencjalnym zastosowaniem do testów w punkcie opieki i samodzielnego monitorowania.

Skuteczne przygotowanie śliny wymaga usunięcia komponentów zakłócających, w tym mucyn i białek, które pogarszają wydajność późniejszych analiz. Zdolność filtracyjną SaliFilter oceniono początkowo poprzez porównanie zmian mętności z wynikami uzyskanymi przy użyciu komercyjnych zestawów do pobierania śliny (Rysunek 2A). Nieprzetworzona ślina wykazywała wysoką mętność, podczas gdy próbki poddane działaniu SaliFilter były widocznie klarowne, co wskazuje na efektywne usunięcie mucyn i zawiesiny. ...

Ten protokół opisuje szybki metodę przetwarzania przedpłynku do poprawy wykrywania kortyzolu. Używany jest przenośny urządzenie do filtrowania w celu usunięcia mucyn i innych substancji interferencyjnych przy zachowaniu docelowego analitu. Przetworzony przedpłyn wykazuje ulepszony przepływ kapilarny, co umożliwia bardziej spójne i bardziej powtarzalne wykonanie testu.

Urządzenie przenośne do przetwarzania śliny w celu poprawy wykrywania kortyzolu

Salivary cortisol detection offers a noninvasive alternative to blood-based analysis. However, its practical implementation remains limited by the ...

Nasze badania koncentrują się na wstępnej obróbce śliny w celu zwiększenia niezawodności wykrywania kortyzolu. Niniejszy protokół można zastosować w analizie biomarkerów w ślinie z wykorzystaniem testu przepływu bocznego. Na początek należy delikatnie wymieszać komercyjnie pozyskaną, zanonimizowaną próbkę połączoną ludzkiej śliny przed użyciem, aby zapewnić jej jednorodność.Próbki śliny przechowywać w temperaturze 4°C i wykorzystać w zalecanym przez dostawcę okresie przechowywania. Rozmrozić bladoróżowy osad błon erytrocytarnych (RBCM), przygotowany i przechowywany w temperaturze -80°C zgodnie ze standardowym protokołem. Przygotować membranę z polietersulfonu (PES) o rozmiarze porów 30 nm i średnicy 13 mm.Nanieś 100 µL 2% w/v roztworu RBCM na jedną stronę membrany PES. Ostrożnie rozprowadź lub nanieś roztwór kroplami, aż cała powierzchnia membrany zostanie całkowicie zwilżona. Inkubuj membranę w temperaturze 50 °C przez 30 minut, aby zapewnić jednorodne pokrycie i wysuszenie.Przechowywać powlekaną membranę w temperaturze pokojowej i wykorzystać w ciągu 15 dni od przygotowania. Aby wykonać urządzenie SaliFilter, należy umieścić membranę PES powlekaną RBCM w odpowiednim uchwycie filtra. Złożyć urządzenie, bezpiecznie łącząc komponenty wlotowe i wylotowe.Podłącz strzykawkę o objętości 1 ml do wlotu urządzenia. Do strzykawki połączonej z urządzeniem SaliFilter wprowadź 500 µL śliny. Wywieraj delikatny nacisk ręczny, aby przepuścić próbkę śliny przez membranę przez około dwie minuty.Zebrać poddaną wstępnej obróbce ślinę z wylotu i użyć jej natychmiast lub przechowywać w temperaturze 4 °C do czasu dalszej analizy. Po detekcji białek metodą SDS-PAGE, nanieść 150 µL poddanej wstępnej obróbce śliny na podkładkę próbkową paska LFA do detekcji kortyzolu. Pozostawić próbkę na 10 minut w celu migracji wzdłuż paska.Należy wykonać zdjęcia wyników testu za pomocą smartfona lub systemu obrazowania. Przeciągnij i upuść przechwycony plik LFA do okna programu ImageJ. Kliknij w menu image, wybierz color, a następnie zaznacz split channels, aby rozdzielić kanały czerwony, zielony i niebieski.Zamknij kanały czerwony i niebieski, a do analizy intensywności linii testowej wykorzystaj obraz z kanału zielonego. Użyj narzędzia prostokąta, aby zaznaczyć obszar zainteresowania (ROI) o wymiarach 100 na 10 pikseli obejmujący linię testową. Otwórz obrazy pozostałych pasków LFA i zastosuj taki sam rozmiar ROI dla wszystkich próbek.Kliknij „analyze” i wybierz „measure”, aby uzyskać średnią wartość intensywności ROI linii testowej. Następnie zaznacz sąsiedni pusty obszar membrany o tym samym rozmiarze ROI i zmierz intensywność tła. Eksportuj wartości do arkusza programu Excel i oblicz znormalizowaną intensywność linii testowej, odejmując intensywność tła od intensywności linii testowej.Ocena zdolności filtracyjnych SaliFilter poprzez porównanie zmian mętności względem komercyjnych zestawów do pobierania śliny wykazała wysoką mętność w ślinie niepoddanej obróbce, podczas gdy próbki przetworzone za pomocą SaliFilter były widocznie przejrzyste. Próbki opracowane przy użyciu komercyjnych zestawów wykazały jedynie ograniczoną poprawę przejrzystości. Ilościowe oznaczenie białek ślinowych za pomocą absorbancji przy 280 nanometrach wykazało około 69% redukcji po filtracji.Analiza metodą Bradforda wykazała wyraźny spadek intensywności barwy w próbkach traktowanych SaliFilter, co odpowiadało redukcji całkowitego stężenia białek o około 80%. Analiza przepływu kapilarnego wykazała, że usunięcie mucyn przywróciło wydajność przepływu w uprzednio traktowanej ślinie. Analiza SDS-PAGE potwierdziła, że mucyny zostały zatrzymane przed membraną i nie występowały w przetworzonych próbkach.Niniejszy protokół umożliwia badaczom oznaczenie rozpuszczalnego kortyzolu po usunięciu białek i mucyn. Po filtracji próbki mogą zostać poddane analizie metodą SDS-PAGE, testami ilościowymi białek, testem ELISA lub innymi metodami. Przyszłe badania mogą zwalidować tę platformę z wykorzystaniem klinicznych próbek śliny o różnych stężeniach kortyzolu.

handheld-device-for-saliva-pretreatment-to-improve-cortisol-detection

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bioinżynieria

Urządzenie przenośne do wstępnego przygotowania śliny w celu poprawy wykrywania kortyzolu

Pokazujemy: (1) procedury pobierania próbek śliny u osób starszych z zaburzeniami poznawczymi przez opiekunów rodzinnych w warunkach domowych, (2) procedury pomiaru aktywności stresu za pomocą kortyzolu w ślinie i alfa-amylazy, oraz (3) profile reprezentatywne. Protokoły, które pozwalają naukowcom badać procesy związane ze stresem, pogłębiają naszą wiedzę na temat wrażliwości biologicznej i podatności.

Pobieranie śliny i pomiar kortyzolu i alfa-amylazy w ślinie u osób starszych mieszkających w słabych społecznościach za pośrednictwem opiekunów rodzinnych

Kortyzol (CORT) gromadzi się w rosnących łodygach włosów ludzi i naczelnych. Opisujemy metody ekstrakcji i analizy włosów CORT z dużą precyzją i czułością. Pomiar CORT włosów jest szczególnie dobrze przystosowany do oceny przewlekłego stresu w okresach od tygodni do miesięcy.

Ekstrakcja i analiza kortyzolu z włosów ludzkich i małpich

Badania nad emocjami studentów studiów licencjackich opierały się głównie na samoopisach w warunkach laboratoryjnych. Badania rzadko uwzględniają pomiary biofizjologiczne w tych samoopisach. Protokół ten będzie opisywał metodologię, która integruje samoopisy z pomiarami biofizjologicznymi w celu oceny reakcji i wyników ucznia podczas badania laboratoryjnego.

Wykorzystanie reakcji galwanicznych skóry, biomarkerów śliny i samoopisów do oceny wyników studentów studiów licencjackich podczas egzaminu laboratoryjnego

Przedstawiono protokół badania, w którym można ocenić związki między słuchaniem muzyki a stresem psychobiologicznym (mierzonym przez subiektywny poziom stresu, kortyzol w ślinie i alfa-amylazę w ślinie) w codziennym życiu. Udzielane są porady dotyczące projektu badania, materiałów, metod, doboru uczestników i obsługi statystycznej. Przedstawiono i omówiono reprezentatywne wyniki.

Ocena wpływu słuchania muzyki na stres psychobiologiczny w życiu codziennym

Analiza stężenia kortyzolu we włosach stanowi alternatywę dla tradycyjnych pomiarów kortyzolu; jednakże, aby pobrać próbki włosów od Afroamerykanów, naukowcy muszą być kulturowo poinformowani i kompetentni. Celem tego protokołu jest zademonstrowanie kulturowo poinformowanej techniki pobierania próbek włosów do analizy kortyzolu od Afroamerykanów.

Pobieranie próbek włosów do analizy kortyzolu we włosach u Afroamerykanów

Tutaj prezentujemy oryginalną metodę mieszaną, łączącą podejście ilościowe i jakościowe, aby dokładnie zbadać doświadczenia uczestników podczas Testu Stresu Społecznego w Trewirze i Testu Stresu Społecznego w Trewirze dla grup.

Enaktywne fenomenologiczne podejście do testu stresu społecznego w Trewirze: mieszany punkt widzenia

Przedstawiamy protokół do określenia optymalnego rozpuszczalnika ekstrakcyjnego do pomiaru kortyzolu z futra koali. Rozpuszczalnikami stosowanymi w tym protokole są metanol, etanol i izopropanol. Określenie optymalnego rozpuszczalnika ekstrakcyjnego pomoże w wiarygodnym pomiarze sierści w celu określenia wpływu przewlekłego stresu na koale.

Pomiar kortyzolu w futrze koali (Phascolarctos cinereus)

Celem tego artykułu jest zidentyfikowanie zmian w poziomie stresu po wizycie w trzech różnych miejscach i opisanie metod stosowanych do identyfikacji poziomów stresu na podstawie pomiarów kortyzolu w ślinie, α-amylazy i psychologicznego narzędzia do samoopisu.

Pomiar poziomu stresu biofizycznego i psychicznego po wizycie w trzech miejscach o różnym poziomie natury

W tym badaniu prezentujemy protokół ekstrakcji kortyzolu z płetwy i szczęki jesiotra. Poziom kortyzolu w płetwach i szczękach badano dalej, porównując dwa rozpuszczalniki do mycia, a następnie testy ELISA. W ramach tego badania pilotażowo sprawdzono wykonalność kortyzolu w kości szczęki jako nowego wskaźnika stresu.

Ekstrakcja kortyzolu z matryc płetw jesiotra i szczęk

Opracowano eksperymentalny projekt w celu zbadania wpływów doświadczenia egzaminacyjnego w czasie rzeczywistym, aby ocenić emocjonalną rzeczywistość, której doświadczają studenci w środowisku i zadaniach szkolnictwa wyższego. Projekt ten jest wynikiem podejścia interdyscyplinarnego (np. psychologia edukacyjna, biologia, fizjologia, inżynieria) i multimodalnego (np. markery śliny, ankiety, czujnik elektrodermalny).

Interdyscyplinarny i multimodalny projekt eksperymentalny do badania autentycznych doświadczeń egzaminacyjnych w czasie zbliżonym do rzeczywistego

Ten protokół pokazuje, jak zapewnić praktyczne, znaczące wzbogacenie środowiska dla świń, które są trzymane na podłodze z rusztów w różnych etapach ich życia, oraz jak pobierać próbki śliny w sposób nieinwazyjny do pomiaru stężenia kortyzolu, jako biomarkera ostrego stresu.

Zapewnienie znaczącego wzbogacenia środowiska i pomiar kortyzolu w ślinie u świń trzymanych na podłodze rusztowej

112 Views.  Kwangwoon University. Nasze badania koncentrują się na pre-traktowaniu śliny w celu poprawy niezawodności wykrywania kortyzolu. Ten protokół może być stosowany do analizy biomarkerów opartej na ślinie przy użyciu testu immunochromatograficznego. Na początek delikatnie wymieszaj komercyjną próbkę śliny ludzkiej, pozbawioną identyfikacji, przed użyciem, aby zapewnić jednorodność.Przechowuj próbki śliny w temperaturze czterech stopni Celsjusza i używaj ich w okresie przechowywania zalec...

Urządzenie przenośne do przetwarzania śliny w celu poprawy wykrywania kortyzolu

Przeglądaj więcej filmów