Name: Znakowanie in vitro ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-08-03T14:45:00.000+00:00
Duration: 11 min 41 s
Description: Poznaj metodę znakowania ludzkich embrionalnych komórek macierzystych chlorkiem manganu do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego. Technika ta umożliwia śledzenie żywych komórek po transplantacji.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

znakowanie manganem ludzkich embrionalnych komórek macierzystych
<ol>
<li>Przez 5 minut poddaj trypsynizacji ludzkie komórki macierzyste zarodkowe hodowane w warunkach bezwarstwowych (feeder-free). Zneutralizuj trypsynę, dodając pożywkę hodowlaną.</li>
<li>Odwirować komórki, centrifugując je przy 800 rpm przez 5 minut w temperaturze 20° Celsius. Po resuspensji granulatu komórkowego policz komórki metodą barwienia błękitem trypanu. Na podstawie otrzymanej liczby komórek podziel je na cztery aliquoty po 3 miliony komórek do probówek stożkowych. Ponownie osadź komórki poprzez wirowanie.</li>
<li>Tuż przed rozpoczęciem znakowania manganem, rozpuść świeży chlorek manganu w 0,9% roztworze chlorku sodu, aby przygotować 0,1mM roztwór chlorku manganu.</li>
<li>W celu zaobserwowania aktywności kanałów wapniowych przygotowano cztery próbki. Pierwszą próbką jest kontrola, zawierająca komórki inkubowane w samym 0,9% roztworze chlorku sodu. Druga próbka zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM MnCl2. Próbki 3 i 4 zawierają komórki inkubowane w 0,1 mM MnCl2 z dodatkiem albo 5 μM agonisty kanałów Ca2+, (s)-(-)-Bay K8644, albo 250 μM antagonisty kanałów Ca2+, werapamilu. Inkubuj cztery próbki w temperaturze 37° Celsius przy 5% CO2 przez 30 minut.</li>
<li>Po 30 minutach odwirować komórki przy 800 rpm przez 5 minut w temperaturze 20° Celsius. Następnie odessij supernatant i dwukrotnie przemyj znakowane komórki buforem PBS. Po przemyciu resuspenduj każdy granulat w 200 μL PBS i przenieś do probówek PCR. Granulaty te są zazwyczaj białe.</li>
</ol>
Oznaczanie żelazem ludzkich embrionalnych komórek macierzystych
<ol>
<li>Wymieszaj siarczan protaminy klasy klinicznej z wodą destylowaną, aby otrzymać roztwór zapasowy o stężeniu 1 mg/mL.</li>
<li>Do probówki zawierającej pożywkę do hodowli ludzkich embrionalnych komórek macierzystych dodaj ferumoksydy w stężeniu 100 μg/mL, a następnie dodaj 12 μg/mL siarczanu protaminy. Intensywnie mieszaj roztwór przez pięć minut.</li>
<li>Dodaj wymieszany roztwór do równoważnej objętości pożywki hodowlanej, aby uzyskać końcowe stężenie 50 μg/mL ferumoksydów i 6 μg/mL siarczanu protaminy do znakowania komórek. Inkubuj komórki w tym roztworze przez 12 godzin.</li>
<li>Przemyj komórki dwukrotnie PBS, przy czym ostatnie płukanie powinno zawierać 10U/ml heparyny w celu rozpuszczenia pozakomórkowego kompleksu ferumoksydów z siarczanem protaminy. Po przemyciu poddaj komórki trypsynizacji, aby uzyskać zawiesinę pojedynczych komórek.</li>
<li>Policz komórki i podziel je na wymaganą liczbę próbek. Po przemyciu resuspenduj każdy osad w 200 μL PBS i przenieś do probówek PCR. Osady powinny mieć ciemnopomarańczowo-brązowy kolor.</li>
</ol>
Wykonanie komórkowego obrazowania rezonansem magnetycznym
<ol>
<li>Przygotuj fantom w celu stabilizacji probówek zawierających pellety komórkowe oraz uniknięcia artefaktów pochodzących z otaczającego powietrza podczas skanowania. W tym celu wymieszaj 0,8% agaru i 1% siarczanu miedzi w wodzie destylowanej i doprowadź do wrzenia w kuchence mikrofalowej przez 5-7 minut. Schłodź tę mieszaninę przez co najmniej 1 godzinę przed skanowaniem, aby uzyskać żel.</li>
<li>Probówki zawierające znakowane pellety komórkowe umieść w fantomie do skanowania. In vitro obrazowanie MRI komórek wykonuje się na urządzeniu Signa HDx 3T MRI (GE Medical Systems), używając klinicznej cewki kolanowej.</li>
<li>Zeskanuj komórki znakowane manganem dla każdej z trzech próbek, stosując sekwencję spin-echo: TR (czas repetycji) = 800 msec, TE (czas echa) = minimum, FOV (pole widzenia) = 12 x 12 cm, macierz = 256x256, NEX 1.</li>
<li>Zeskanuj komórki znakowane żelazem, stosując sekwencję gradient-echo. Do tego obrazowania wykorzystano następujące parametry: TR = 100 msec, TE = 10 msec, FA (kąt odchylenia) = 30°, FOV = 12 x 12 cm, macierz = 256 x 256, NEX 1.</li>
</ol>
Analiza wyników MRI
<ol>
<li>Przeanalizuj obrazy z badania MRI czterech różnych próbek komórek znakowanych manganem: 
<ul>
<li>Próbka nr 1 stanowi grupę kontrolną i zawiera komórki inkubowane w samym 0,9% chlorku sodu.</li>
<li>Próbka nr 2 zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM MnCl2.</li>
<li>Próbka nr 3 zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM MnCl2 z dodatkiem 5 μM agonisty kanałów Ca2+, (s)-(-)-Bay K8644.</li>
<li>Próbka nr 4 zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM MnCl2 z dodatkiem 250 μM antagonisty kanałów Ca2+, werapamilu.</li>
</ul>
</li>
<li>Zgodnie z przewidywaniami, widoczne są różnice w intensywności sygnału z komórek znakowanych manganem. W porównaniu do komórek znakowanych samym manganem, intensywność sygnału wyraźnie wzrasta w obecności agonisty kanałów wapniowych i spada w obecności antagonisty kanałów wapniowych. Obszar zwiększonej intensywności sygnału dla komórek znakowanych manganem mierzy się przy użyciu programu Image J (NIH, Bethesda, MD, USA). To samo oprogramowanie jest wykorzystywane do analizy obszaru ciemnego sygnału poza rezonansem z komórek znakowanych żelazem. Wielkość ciemnego sygnału z komórek znakowanych żelazem zależy od liczby komórek lub liczby cząsteczek żelaza zawartych w komórkach. W tym przypadku milion komórek wykazuje mniejszy obszar ciemnego sygnału w porównaniu do sygnału z &nbsp;trzech milionów komórek.</li>
</ol>

<ol><li>Bruvold, M., Nordhoy, W., Anthonsen, H. W., Brurok, H., Jynge, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manganese-calcium+interactions+with+contrast+media+for+cardiac+magnetic+resonance+imaging%3A+a+study+of+manganese+chloride+supplemented+with+calcium+gluconate+in+isolated+Guinea+pig+hearts%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Radiol%22%5BJournal%5D)">Manganese-calcium interactions with contrast media for cardiac magnetic resonance imaging: a study of manganese chloride supplemented with calcium gluconate in isolated Guinea pig hearts.</a> Invest Radiol. 40, 117-125 (2005).</li>
<li>Aoki, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+labeling+for+magnetic+resonance+imaging+with+the+T1+agent+manganese+chloride%5BTitle%5D)+AND+%22NMR+Biomed%22%5BJournal%5D)">Cell labeling for magnetic resonance imaging with the T1 agent manganese chloride.</a> NMR Biomed. 19, 50-59 (2006).</li>
<li>Arbab, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+magnetic+cell+labeling+with+protamine+sulfate+complexed+to+ferumoxides+for+cellular+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Efficient magnetic cell labeling with protamine sulfate complexed to ferumoxides for cellular MRI.</a> Blood. 104, 1217-1223 (2004).</li>
<li>Arbab, A. S., Frank, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+MRI+and+its+role+in+stem+cell+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Regen+Med%22%5BJournal%5D)">Cellular MRI and its role in stem cell therapy.</a> Regen Med. 3, 199-215 (2008).</li>
</ol>

Wyniki te wskazują, że mangan przenika do wnętrza komórki poprzez napięciowo zależny kanał wapniowy i może być wykorzystany jako środek kontrastowy w MRI, który pozwala również ocenić żywotność komórek. Sugerujemy zatem, że MRI z wykorzystaniem manganu może być przydatne do monitorowania żywotności komórek po transplantacji ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do mięśnia sercowego.

<table><tbody><tr><td>Tetrahydrat chlorku manganu(II)</td><td>Odczynnik</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8054</td><td></td></tr><tr><td>(S)-(-)-Bay K8644 </td><td>Odczynnik</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B133</td><td></td></tr><tr><td>(+)-Werapamilu hydrochlorowodorek, miareczkowanie minimum 99,0% </td><td>Odczynnik</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>V4629</td><td></td></tr><tr><td>Chlorek sodu 0,85-0,90% m/v</td><td>Odczynnik</td><td>VWR international</td><td>VW 3257-1</td><td></td></tr><tr><td>Feridex I.V. </td><td>Odczynnik</td><td>Berlex Laboratories</td><td>NDC 59338-7035-5</td><td>roztwór do wstrzykiwań ferumoksydy 11,2 mg żelaza/ml</td></tr><tr><td>Siarczan protaminy</td><td>Odczynnik</td><td>American Pharmaceutical Partners</td><td>NDC 63323-229-05</td><td>50 mg (10 mg/ml)</td></tr><tr><td>Knockout SR (zamiennik surowicy dla komórek ES)</td><td>Odczynnik</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>10828</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12 (1:1)</td><td>Odczynnik</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11330</td><td></td></tr><tr><td>2-merkapto&amp;#8211;etanol 98+%</td><td>Odczynnik</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M 3148</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamina 200 mM 100x</td><td>Odczynnik</td><td>GIBCO, firmy Life Technologies</td><td>25030</td><td></td></tr><tr><td>penicylina-streptomycyna 10 000 j./ml</td><td>Odczynnik</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>100-krotny roztwór niezbędnych aminokwasów MEM (MEM Non-Essential Amino Acids 100x solution)</td><td>Odczynnik</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>11140</td><td></td></tr><tr><td>Signa HDx 3T MRI</td><td>Narzędzie</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>kliniczna cewka kolanowa</td><td>Narzędzie</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Odczynnik</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>14190</td><td></td></tr></tbody></table>

znakowanie in vitro ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego

In vitro Labeling of Human Embryonic Stem Cells for Magnetic Resonance Imaging

Ludzkie embrionalne komórki macierzyste (hESC) wykazały zdolność do regeneracji uszkodzonego mięśnia sercowego. Obrazowanie rezonansem magnetycznym (MRI) stało się jedną z głównych metod obrazowania służących do oceny stopnia regeneracji uszkodzonego mięśnia sercowego. Ponadto, w celu śledzenia i lokalizacji przeszczepionych komórek macierzystych, stosowano markery ex-vivo, takie jak nanocząsteczki tlenku żelaza. Metoda ta nie pozwala jednak na monitorowanie fundamentalnej właściwości biologii komórkowej, jaką jest żywotność przeszczepionych komórek. Znane jest, że chlorek manganu (MnCl2) wnika do komórek poprzez napięciozależne kanały wapniowe (Ca2+) w sytuacji, gdy komórki są biologicznie aktywne, a następnie gromadzi się wewnątrzkomórkowo, powodując skrócenie czasu T1. Sugerujemy zatem, że MRI z wykorzystaniem manganu może być użyteczne do monitorowania żywotności komórek po przeszczepieniu hESC do mięśnia sercowego.
W tym filmie pokażemy, jak znakować hESC za pomocą MnCl2 oraz jak komórki te można wyraźnie zobrazować, wykorzystując MRI in vitro. Jednocześnie aktywność biologiczna kanałów Ca2+ zostanie zmodyfikowana przy użyciu agonisty i antagonisty kanałów Ca2+ w celu oceny towarzyszących zmian sygnału.

W tym filmie pokazujemy, jak znakować ludzkie embrionalne komórki macierzyste (hESC) za pomocą chlorku manganu (MnCl2), który może wnikać do komórek poprzez napięciowo zależne kanały wapniowe, gdy komórki są biologicznie aktywne. Dodatkowo prezentujemy zastosowanie MnCl2 jako komórkowego środka kontrastowego w MRI w celu określenia żywotności hESC in vitro.

Znakowanie in vitro ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego

Ludzkie embrionalne komórki macierzyste (hESC) wykazują zdolność do regeneracji uszkodzonego mięśnia sercowego. Obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego (MRI) stało się jednym z...

Obrazowanie rezonansem magnetycznym (MRI) stało się dominującą metodą obrazowania służącą do lokalizacji przeszczepionych komórek macierzystych oraz lepszego zrozumienia mechanizmów regeneracji. W badaniach MRI zazwyczaj stosuje się nanocząsteczki tlenku żelaza jako środek kontrastowy. Jednak cząsteczki żelaza mogą pozostać w tkance po śmierci komórek macierzystych i mogą zostać pochłonięte przez makrofagi, co prowadzi do nieoptymalnych warunków śledzenia żywych przeszczepionych komórek.W niniejszym filmie zostanie wykazane, że chlorek manganu stanowi skuteczną alternatywę. Znakowanie środkiem kontrastowym z użyciem chlorku manganu oferuje kilka zalet w porównaniu ze znakowaniem tlenkiem żelaza. Na przykład mangan daje sygnał pozytywny, podczas gdy cząstki jonowe generują sygnał negatywny.Dodatkowo wiadomo, że jony manganu wnikają do komórek poprzez napięciozależne kanały wapniowe. Zatem ich obecność w obrazowaniu MRI świadczy o żywotności biologicznie aktywnych komórek. Cześć, jestem Uni mother z laboratorium Philipa Yanga w dziale medycyny sercowo-naczyniowej na Uniwersytecie Stanforda.Dzisiaj pokażę Państwu, jak znakować ludzkie embrionalne komórki macierzyste manganem do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego. Procedura ta obejmuje następujące etapy: znakowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych środkami kontrastowymi, wykonanie obrazowania rezonansem magnetycznym komórek in vitro oraz analizę wyników MRI. Zatem zacznijmy.Pierwszym krokiem w procedurze znakowania jest przygotowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych, które były hodowane w warunkach wolnych od surowicy płodowej. W tym celu poddaj komórki trypsynizacji przez pięć minut, a następnie zneutralizuj trypsynę, dodając pożywkę hodowlaną. Następnie odwiruj komórki, centrugując je przy 800 RRP M przez pięć minut w temperaturze 20 °C.Po ponownym zawieszeniu osadu komórkowego w PBS, należy policzyć komórki metodą barwienia trypan błękitem. Na podstawie otrzymanej liczby komórki należy podzielić na wymaganą liczbę aliquotów do probówek stożkowych. W tym przypadku dzielę komórki na cztery aliquoty po 3 milionów komórek. Przed rozpoczęciem znakowania manganem należy ponownie spelerować komórki poprzez wirowanie. Przygotuj świeży roztwór chlorku manganu w 0,9% NaCl, aby uzyskać 0,1 mM roztwór chlorku manganu.W celu zaobserwowania aktywności kanałów wapniowych przygotowano próbki. Pierwsza próbka stanowi grupę kontrolną i zawiera komórki inkubowane w samym 0,9% chlorku sodu. Druga próbka zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM chlorku manganu; próbki trzecia i czwarta zawierają komórki inkubowane w 0,1 mM chlorku manganu z dodatkiem odpowiednio 5 µM agonisty kanałów wapniowych AK 8 6 44 lub 250 µM antagonisty kanałów wapniowych.Następnie inkubuj cztery próbki w temperaturze 37 °C przy 5% CO2 przez 30 minut. Po 30 minutach odwiruj komórki przy 800 RPM przez pięć minut w temperaturze 20 °C. Następnie odessaj supernatant i dwukrotnie przemyj znakowane komórki roztworem PBS. Po ponownym przemyciu zawieś każdy osad w 200 µL PBS i przenieś do probówek PCR.Osady te są zazwyczaj białe. Przygotowanie komórek znakowanych manganem do celów porównawczych zostało zakończone. Przygotujemy również komórki przy użyciu bardziej tradycyjnych metod znakowania żelazem, aby rozpocząć proces znakowania żelazem.Przygotuj roztwór zapasu siarczanu protaminy klasy klinicznej w wodzie destylowanej o stężeniu 1 mg/mL. Następnie do probówki zawierającej pożywkę do hodowli ludzkich embrionalnych komórek macierzystych dodaj tlenek filmu w stężeniu 100 µg/mL oraz siarczan protaminy w stężeniu 12 µg/mL. Następnie mieszaj roztwór przez pięć minut.Po wymieszaniu roztworu dodaj go do komórek, używając równych objętości wymieszanego roztworu oraz medium hodowlanego, aby uzyskać końcowe stężenie 50 µg/mL tlenku i 6 µg/mL siarczanu protaminy. Inkubuj komórki przez 12 godzin, a następnie przemyj je dwukrotnie PBS, przy czym ostatnie płukanie powinno zawierać 10 U/mL heparyny w celu rozpuszczenia zewnątrzkomórkowego kompleksu tlenku z siarczanem białka. Po przemyciu poddaj komórki trypsynizacji, aby uzyskać zawiesinę pojedynczych komórek, następnie policz komórki i rozdziel je na wymaganą liczbę próbek.W tym przypadku przygotowuję jedną próbkę zawierającą 1 milion komórek, a drugą 3 miliony komórek. Następnie po odwirowaniu komórek, osady powinny mieć pomarańczowo-brązowy kolor. Na koniec każdy osad resuspendTime 200 µL PBS i przenosimy do probówek PCR.Gotowe, zakończyliśmy etykietowanie komórek. Przejdźmy teraz do obrazowania MR komórek. Aby rozpocząć obrazowanie, najpierw przygotujemy fantom, który ustabilizuje probówki zawierające pellety komórkowe oraz zapobiegnie powstawaniu artefaktów wynikających z obecności otaczającego powietrza podczas skanowania.W tym celu należy zmieszać 1% siarczanu miedzi i 0,8% agaru w wodzie destylowanej, a następnie doprowadzić do wrzenia w kuchence mikrofalowej przez pięć do siedmiu minut. Mieszaninę tę chłodzi się przez co najmniej jedną godzinę, aż powstanie żel. Następnie probówki zawierające oznakowane granulki komórkowe umieszcza się w fantomie do skanowania.Badanie MRI komórek in vitro przeprowadzono przy użyciu skanera 3,0 T z zastosowaniem klinicznej cewki kolanowej. Do obrazowania komórek znakowanych manganem w każdej z czterech próbek wykorzystano urządzenie Signa firmy GE Medical Systems z zastosowaniem sekwencji spin-echo. Parametry sekwencji zostały opracowane na podstawie wcześniej przeprowadzonych pomiarów mapowania T znakowanych komórek.Używamy czasu echa przy minimalnym czasie repetycji 800 ms, polu widzenia 12 na 12 cm oraz macierzy 256 na 256. Następnie skanujemy komórki znakowane żelazem, wykorzystując sekwencję gradientowego echa.W tym obrazowaniu stosujemy następujące parametry: czas echa 10 ms, czas repetycji 100 ms, kąt odchylenia 30°, pole widzenia 12 × 12 cm oraz macierz 256 × 256.Gotowe, obrazowanie zostało zakończone. Teraz przyjrzyjmy się wynikom. Oto wyniki skanowania MRI dla czterech różnych próbek komórek znakowanych manganem.Próbka numer jeden jest naszą kontrolą, która zawiera komórki inkubowane w samym 0,9% chlorku sodu. Próbka numer dwa zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM chlorku manganu. Próbka numer trzy zawiera komórki inkubowane w 0,1 mM chlorku manganu z 5 µM agonisty kanałów wapniowych vacay 8 6 4 4.Próbka numer cztery zawiera komórki inkubowane w 0,1 miliona MO chlorku manganu z 250 micro moura antagonisty kanałów wapniowych veil. W porównaniu z komórkami znakowanymi samym manganem, intensywność sygnału wzrasta w obecności agonisty kanałów wapniowych i spada w obecności antagonisty kanałów wapniowych. Obszar wzrostu sygnału dla komórek znakowanych manganem jest mierzony przy użyciu programu Image J. Wyniki te wskazują, że mangan wnika do wnętrza komórek poprzez napięciowo zależne kanały wapniowe.Porównajmy teraz te wyniki z wynikami uzyskanymi z komórek znakowanych żelazem. Zwróćmy uwagę na różnicę między jasnym, pozytywnym sygnałem z komórek znakowanych manganem a ciemnym, negatywnym sygnałem z komórek znakowanych żelazem. Właśnie zaprezentowaliśmy sposób znakowania manganem ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do obrazowania magnetycznego komórek in vitro.Niniejsza procedura stanowi skuteczną metodę śledzenia komórek macierzystych, ponieważ po pierwsze, mangan można łatwo wprowadzić do komórek poprzez prostą 30 minutową inkubację. Po drugie, komórki znakowane manganem zapewniają wyraźne obrazy z pozytywnym sygnałem, a po trzecie, mangan wnika do komórek poprzez napięciowo zależne kanały wapniowe, co potwierdzono poprzez zastosowanie agonistów i antagonistów kanałów wapniowych, a zatem dostaje się wyłącznie do żywych komórek. W związku z tym uważamy, że znakowanie manganem ludzkich embrionalnych komórek macierzystych ma ogromny potencjał w precyzyjnym obrazowaniu MRI komórkowym in vivo w celu śledzenia działania przeszczepionych ludzkich embrionalnych komórek macierzystych w obszarach uszkodzeń niedokrwiennych.To wszystko. Dziękujemy za oglądanie i życzymy powodzenia w eksperymentach.

in-vitro-labeling-human-embryonic-stem-cells-for-magnetic-resonance

Research

JoVE Journal

Biology

Biologia

W celu oceny nowych terapii komórkami macierzystymi istotne jest nieinwazyjne śledzenie wstrzykniętych komórek in vivo. W tym filmie dowiedzą się Państwo, jak znakować ludzkie mezenchymalne i embrionalne komórki macierzyste za pomocą środków kontrastowych opartych na tlenku żelaza w celu późniejszego obrazowania MR in vivo.

Znakowanie hESC i hMSC nanocząsteczkami tlenku żelaza w celu nieinwazyjnego śledzenia in vivo za pomocą obrazowania MR

W niniejszym filmie przedstawiono techniki znakowania ludzkich embrionalnych komórek macierzystych oraz mezenchymalnych komórek macierzystych barwnikami fluorescencyjnymi. Technika ta może być wykorzystana do śledzenia in vivo przeszczepionych komórek macierzystych za pomocą obrazowania optycznego oraz do korelacji histopatologicznych z wykorzystaniem mikroskopii fluorescencyjnej.

Znakowanie komórek macierzystych barwnikami fluorescencyjnymi do nieinwazyjnego wykrywania za pomocą obrazowania optycznego

W związku z rosnącym zainteresowaniem terapiami komórkami macierzystymi, techniki obrazowania molekularnego są idealne do monitorowania zachowania tych komórek po transplantacji. Geny reporterowe lucyferazy umożliwiły nieinwazyjną, powtarzalną ocenę przeżywalności, lokalizacji i proliferacji komórek in vivo. W niniejszym filmie zaprezentrowano sposób śledzenia proliferacji hESC w żywej myszy.

Obrazowanie genem reporterowym bioluminescencyjnym ludzkich embrionalnych komórek macierzystych in vitro i in vivo

Celem prezentacji jest zademonstrowanie wysoce powtarzalnej metody generowania implantów komórek macierzystych związanych z macierzą w ubytkach chrząstki, które można wizualizować za pomocą obrazowania MR. Komórki macierzyste są znakowane zatwierdzonymi przez FDA ferumoksydami, mieszane z agarozą, implantowane w ubytkach chrząstki i obrazowane za pomocą skanera MR 7T.

Implantacja ludzkich mezenchymalnych komórek macierzystych znakowanych ferumoksydami w ubytkach chrząstki

Opisujemy technikę znakowania i śledzenia komórek macierzystych przy użyciu zatwierdzonego przez FDA superparamagnetycznego tlenku żelaza (SPIO), ferumoksytolu (Feraheme). Ta technika obrazowania komórkowego, wykorzystująca obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego (MR) do wizualizacji, jest łatwo dostępna w celu długoterminowego monitorowania i diagnozowania pomyślnych lub nieudanych przeszczepów komórek macierzystych u pacjentów.

Znakowanie komórek macierzystych za pomocą ferumoksytolu, zatwierdzonej przez FDA nanocząsteczki tlenku żelaza

Niniejszy artykuł opisuje zoptymalizowaną sekwencję zdarzeń dla obrazowania multimodalnego przeszczepów komórkowych w mózgu gryzoni z wykorzystaniem: (i) bioluminescencji in vivo i obrazowania rezonansem magnetycznym oraz (ii) pośmiertnej analizy histologicznej. Połączenie tych metod obrazowania u jednego zwierzęcia pozwala na ocenę przeszczepów komórkowych z wysoką rozdzielczością, czułością i swoistością.

Multimodalne obrazowanie implantacji komórek macierzystych w ośrodkowym układzie nerwowym myszy

Śledzenie komórek za pomocą MRI zyskało niezwykłą uwagę w ostatnich latach. Protokół ten opisuje znakowanie komórek dendrytycznych cząstkami bogatymi w fluor (19F), zastosowanie tych komórek in vivo oraz monitorowanie zakresu ich migracji do drenującego węzła chłonnego za pomocą 19F/1H MRI i 19F MRS.

Monitorowanie migracji komórek dendrytycznych za pomocą rezonansu magnetycznego 19F / 1H

Opisujemy ogólny protokół śledzenia komórek in vivo za pomocą MRI w modelu mysim z komórkami oznaczonymi ex vivo. Dołączony jest typowy protokół do znakowania komórek, przetwarzania akwizycji obrazu i kwantyfikacji.

Rezonans magnetyczny in vivo 19F do śledzenia komórek

Opisujemy szereg metod wstrzykiwania barwników, wektorów DNA, wirusów i komórek w celu monitorowania zarówno losu komórek, jak i fenotypu endogennych i szczepionych komórek pochodzących z komórek embrionalnych lub pluripotencjalnych w embrionalnych zarodkach myszy w dniu embrionalnym (E)9.5 i późniejszych etapach rozwoju.

Znakowanie i wstrzykiwanie komórek w rozwijających się embrionalnych sercach myszy

Chondrogeneza z komórek macierzystych wymaga precyzyjnego dostrojenia warunków hodowli. W tym miejscu przedstawiamy magnetyczne podejście do kondensacji komórek, które jest niezbędnym krokiem do zainicjowania chondrogenezy. Ponadto wykazaliśmy, że dynamiczne dojrzewanie w bioreaktorze stosuje mechaniczną stymulację konstruktów komórkowych i zwiększa produkcję chrzęstnej macierzy zewnątrzkomórkowej.

Agregacja magnetycznych komórek macierzystych 3D i dojrzewanie bioreaktora w celu regeneracji chrząstki

Prezentowany tutaj jest protokół dostarczania i śledzenia nieinwazyjnych mezenchymalnych komórek macierzystych (MSC) w mysim modelu urazowego uszkodzenia mózgu. Superparamagnetyczne nanocząstki tlenku żelaza są wykorzystywane jako sonda rezonansu magnetycznego (MRI) do znakowania MSC i nieinwazyjnego śledzenia in vivo po podaniu donosowym za pomocą rezonansu magnetycznego w czasie rzeczywistym.

Śledzenie superparamagnetycznych mezenchymalnych komórek macierzystych znakowanych tlenkiem żelaza za pomocą rezonansu magnetycznego po dososowym podaniu w mysim modelu urazowego uszkodzenia mózgu

Poznaj metodę znakowania ludzkich embrionalnych komórek macierzystych chlorkiem manganu do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego. Technika ta umożliwia śledzenie żywych komórek po transplantacji.

Znakowanie in vitro ludzkich embrionalnych komórek macierzystych do obrazowania metodą rezonansu magnetycznego

Przeglądaj więcej filmów