A imunoprecipitação, ou IP, é uma técnica amplamente utilizada que emprega interações proteína-anticorpo para isolar proteínas ou complexos proteicos em seu estado nativo para estudar interações proteína-proteína, estruturas quaternárias ou complexos supramoleculares. Várias modificações da técnica, incluindo cromatina IP, IP de reticulação e IP de fluorescência, são comumente usadas.
Imunoprecipitação da cromatina
A imunoprecipitação da cromatina, também conhecida como ChIP, é usada para estudar as interações proteína-DNA ou proteína-RNA. É uma técnica importante para estudar processos celulares cruciais, como transcrição de genes, replicação de DNA, recombinação e reparo, progressão do ciclo celular e epigenética. Também é útil identificar a localização in vivo dos locais de ligação de vários fatores de transcrição, histonas e outras proteínas reguladoras.
As principais etapas do ChIP incluem fixação, sonicação, imunoprecipitação e análise. Envolve a reticulação da proteína-alvo com o DNA usando um agente fixador, como o formaldeído, seguido de sonicação ou hidrólise enzimática para obter fragmentos menores de cromatina. A técnica então utiliza anticorpos de alta afinidade específicos contra a proteína de interesse para capturar o DNA ligado à proteína em uma reação de imunoprecipitação. A reticulação é então revertida usando alta temperatura, alta concentração de sal e proteinase K para liberar o DNA das proteínas associadas. O DNA é ainda mais purificado para prepará-lo para análise.
Imunoprecipitação de reticulação
A imunoprecipitação de reticulação, ou CLIP, identifica as regiões dos locais de ligação às proteínas no RNA endógeno, precipitando-as na fase de transcrição ativa. As moléculas de RNA são reticuladas com proteínas para mantê-las juntas e evitar sua degradação. O procedimento para a quebra e isolamento dos complexos é semelhante ao ChIP. Esta técnica é usada para estudar a interação do RNA com proteínas de ligação ao RNA e suas modificações em vários sistemas biológicos.
Limitações do IP
Embora as técnicas de imunoprecipitação tendam a reduzir o número de etapas de purificação, elas têm certas limitações. Os anticorpos que ligam as proteínas bacterianas recombinantes, as proteínas A ou G, conjugadas aos grânulos de agarose, e os anticorpos utilizados no método podem sofrer uma ligação não específica, introduzindo contaminantes na preparação de proteínas purificadas. Além disso, a imobilização de anticorpos nos grânulos requer otimização e é demorada. A lavagem das esferas após o complexo antígeno-anticorpo é crítica, mas há uma chance de perder a proteína-alvo nesta etapa.
A imunoprecipitação é usada para isolar uma única proteína de uma mistura complexa, como um extrato celular.
Ele emprega anticorpos específicos contra a proteína alvo. Esses anticorpos são imobilizados em esferas magnéticas ou de agarose por ligação covalente direta ou por meio de proteínas bacterianas recombinantes de ligação a anticorpos, como a proteína A ou G.
Quando incubadas com a amostra de proteína, as esferas pré-revestidas permitem que os anticorpos formem um complexo com as proteínas-alvo.
Em seguida, a amostra é submetida a centrifugação de baixa velocidade para precipitar o complexo anticorpo-proteína.
O pellet é então ressuspenso em um tampão suave com baixo pH ou condições de alto sal. Isso quebra as ligações proteína-anticorpo e libera a proteína-alvo na solução.
Finalmente, a suspensão é novamente centrifugada a baixa velocidade para obter a proteína alvo no sobrenadante.
Assim como a imunoprecipitação, a co-imunoprecipitação usa o mesmo princípio para estudar as interações proteína-proteína.
Nesse caso, uma proteína membro de um complexo proteico é usada como isca para separar seus outros parceiros de ligação.
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