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Sincronização de nematóides: um método para obter populações de vermes em estágios idênticos de desenvolvimento

30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Sarasija, S. e Norman, K. R. Medição das taxas de consumo de oxigênio em Caenorhabditis elegans intactos. J. Vis. Exp. (2019).

Neste vídeo, mostramos um método de produção de uma população sincronizada com o desenvolvimento de C. elegans adultos estéreis. O protocolo de exemplo sincroniza vermes para estudar as taxas de consumo de oxigênio em animais vivos.

Protocolo

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Este protocolo é um trecho de Sarasija e Norman, Medição das Taxas de Consumo de Oxigênio em Caenorhabditis elegans Intacto, J. Vis. Exp. (2019).

1. Crescimento e sincronização da população de nematóides

Esses animais atingirão o estágio larval L4 após ~42 h. Neste momento, mova as larvas L4 usando um picareta de platina para placas NGM semeadas OP50 contendo 0,5 mg / mL de 5-fluoro-2'-desoxiuridina (FUdR) para evitar que produzam progênie.
OBSERVAÇÃO Certifique-se de que, dentro de um experimento, todas as cepas sejam sincronizadas por um período de tempo semelhante. O tratamento FUdR esteriliza os animais e evita a postura de ovos e a produção de progênies, o que pode influenciar o OCR. Esses animais esterilizados serão analisados no dia seguinte (dia 1 de animais adultos a ~66 h) para o ensaio. Foi relatado que o FUdR afeta a fisiologia e a expectativa de vida de certos vermes mutantes. Portanto, isso deve ser levado em consideração quando o medicamento é usado para esterilização. Os vermes também podem ser esterilizados por meio de mutações feminizantes, como fem-1 (hc17) ou fem-3 (e2006). No entanto, essas mutações podem afetar a função mitocondrial.

  1. Transfira larvas L4 de origens genéticas desejadas (por exemplo, N2 [tipo selvagem] e animais sel-12) para placas de meios de crescimento de nematóides (NGM) (consulte a Tabela 1 para receita) recém-semeadas com um gramado de Escherichia coli (OP50). Use pelo menos duas placas de 100 mm ou três de 60 mm para cada cepa. Incube os vermes na temperatura de crescimento apropriada (entre 15–25 °C) por 3–4 dias ou até que as placas estejam concentradas com grande número de ovos e vermes grávidas.
  2. Lave os ovos e vermes das placas usando aproximadamente 6 mL de tampão M9 (consulte a Tabela 1 para receita) por placa de 100 mm de nematóides e transfira-os com pipetas Pasteur de vidro para tubos de centrífuga individuais de 15 mL para cada cepa. Gire esses tubos para baixo por 3 min a 6.180 x g e aspire o tampão M9, retendo apenas os animais e os ovos pellet.
  3. Adicione 3-4 mL de solução de alvejante (consulte a Tabela 1 para receita) a cada tubo e vórtice intermitentemente por 6 min. Adicione tampão M9 para encher cada tubo e gire a 6.180 x g por 1 min e aspire o sobrenadante. Repita esta lavagem com M9 três vezes e mova o pellet de ovo para um novo tubo de 15 mL contendo aproximadamente 9 mL de tampão M9.
  4. Sincronize os vermes recém-eclodidos nutando a 20 ° C por 16 a 48 h. Gire esses tubos a 6.180 x g por 1,5 min e coloque os animais L1 sincronizados em placas NGM individuais recém-semeadas com um gramado de OP50 (aproximadamente 6.000 a 10.000 animais por placa de 100 mm) e mantenha a 20 ° C.

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Resultados

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Tabela 1: Receitas para placas NGM, tampão M9 e solução de alvejante.

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Tampão M9 (1 L)
dH2O1.000 mL
NaCl5 g
KH2PO43 gramas

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
100 mm; placas de Petri de 60 mmProdutos de laboratório Kord-Valmark2900; 2901
15 mL tubos cônicosCorning430791
50 mL tubos cônicosCorning430829
ágarFisher CientíficoBP1423-2
Bacto peptonaBd; Bacto211677
Bacto triptonaBd; Bacto211705
Extrato de levedura BactoBd; Bacto212705
Alvejantegenérico
Cloreto de cálcio di-hidratado (CaCl2·2H2O)Fisher CientíficoC79-500
ColesterolFisher CientíficoC314-500
Água deionizada (dH2O)
Pipetas Glass PasteurKrackeler Científico6-72050-900
Sulfato de magnésio heptahidratado (MgSO4·7H2O)Fisher CientíficoBP213-1
Fosfato de potássio dibásico (K2HPO4)Fisher CientíficoBP363-1
Fosfato de potássio monobásico (KH2PO4)Fisher CientíficoPág. 285-500
Cloreto de sódioFisher CientíficoBP358-10
Hidróxido de sódio (NaOH)Fisher CientíficoBP359-500
Fosfato de sódio dibásico anidro (Na2HPO4)Fisher CientíficoBP332-1

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Etiquetas

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