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Drosophila In Vivo Imagem de cálcio: um método para imagem funcional da atividade neuronal

30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Hancock, C. E., et al. Imagem Óptica de Cálcio In Vivo da Plasticidade Sináptica Induzida por Aprendizagem em Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (2019).

Este vídeo descreve imagens de cálcio in vivo em neurônios de Drosophila usando GCaMP. O clipe de protocolo em destaque mostra como registrar alterações na fluorescência do GCaMP dos neurônios do corpo do cogumelo durante um experimento de condicionamento olfativo.

Protocolo

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Este protocolo é um trecho de Hancock et al., In Vivo Optical Calcium Imaging of Learning-Induced Synaptic Plasticity in Drosophila melanogaster, J. Vis. Exp.(2019).

1. Imagem de cálcio in vivo

  1. Use um microscópio multifotônico equipado com um laser infravermelho e uma objetiva de imersão em água (consulte a Tabela de Materiais), instalado em uma mesa isolada por vibração. Para a visualização de indicadores de cálcio baseados em GFP, ajuste o laser para um comprimento de onda de excitação de 920 nm e instale um filtro passa-banda GFP.
  2. Usando o botão de ajuste Z grosso, escaneie o eixo Z do cérebro e localize a região cerebral de interesse. Use a função de corte para focar a digitalização apenas nessa área para minimizar o tempo de varredura e para girar a visualização de varredura de forma que a parte anterior da cabeça fique voltada para baixo.
  3. Ajuste o tamanho do quadro para 512 x 512 px, a velocidade de varredura para > 4 Hz e a região de varredura (na dimensão Y) para que os neurônios de interesse sejam cobertos.

2. Visualização de transientes de cálcio evocados por odor através do condicionamento olfatório

  1. Use um sistema de entrega de odor que possa fornecer vários estímulos de odor de maneira temporalmente precisa.
    1. Use um computador adicional para controlar o dispositivo e se comunicar com o software do microscópio de imagem para coordenar os estímulos de odor com a captura de imagem durante os experimentos.
    2. Inicie um pacote de macro pré-programado capaz de vincular o software de aquisição de imagem e o programa de entrega de odor (por exemplo, um pacote de macro VBA instalado no software de controle do microscópio, consulte Tabela de Materiais) que responda a um gatilho de entrada externo fornecido pelo início de um protocolo de entrega de odor em um programa separado).
  2. Inicie a medição monitorando transientes de cálcio evocados por odor "pré-treinamento"/ingênuos em uma resolução de 512 x 512 px e uma taxa de quadros de 4 Hz. Forneça um estímulo de odor de 2,5 s ladeado por aquisição de imagem adicional por 6,25 s antes do início do odor (para estabelecer um valor basal F0) e 12,5 s após o deslocamento do odor. Repita isso com um segundo odorante e depois com um terceiro odor.
  3. Continue 3 min após esta medição com condicionamento clássico ("treinamento") a mosca.
    1. Selecione um dos odores apresentados na fase de "pré-treino" para se tornar o odor CS+ e outro para se tornar o odor CS-. Apresente o odor CS+ usando o sistema de fornecimento de odor controlado por computador por 60 s ao lado de doze choques elétricos de 90 V.
    2. Após uma pausa de 60 s, apresente o odor CS- sozinho por 60 s. Use como odorantes 4-metilciclohexanol e 3-octanol. Não apresente o terceiro odor (por exemplo, 1-octen-3-ol) durante este treinamento, pois ele é usado como controle apenas antes (etapa 2.2.) e depois (etapa 2.4) da fase de treinamento.
  4. Meça os transientes de cálcio evocados por odor "pós-treino" novamente repetindo o protocolo de estimulação de odor "pré-treino" (etapa 2.2.) 3 min após terminar a fase de treinamento (etapa 2.3).
    OBSERVAÇÃO: O tempo desta etapa deve refletir o tempo de interesse após a formação da memória (por exemplo, execute esta etapa 3-4 minutos após a etapa de condicionamento para investigar a memória de curto prazo). Normalmente, as moscas podem sobreviver por várias horas nesta preparação.
  5. Salve os arquivos de imagem em um formato apropriado (por exemplo, Tiff) para análise posterior da imagem.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
1-Oitavo-3-olSigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUAO5284Produto químico usado como odorante
3-OctanolSigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA218405Produto químico usado como odorante
4-metilciclohexanolSigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUA153095Produto químico usado como odorante
Filtro passa-banda para EGFP (525/50 nm)Carl Zeiss Microscopy GmbH, Jena, Alemanha
Óleo mineralSigma-Aldrich, St. Louis, MO, EUAM8410Usado como diluente para odores
Laser Ti-Sapphire com bloqueio de modo Chameleon Vision 2Coherent Inc., Santa Clara, CA, EUALaser infravermelho ajustável do femtosegundo
Microscópio Multifotônico LSM 7MP equipado com detectores BiGCarl Zeiss Microscopy GmbH, Jena, AlemanhaMicroscópio multifotônico, várias empresas fornecem dispositivos semelhantes.
Objetiva de imersão em água Plan-Apochromat 20x (NA = 1,0)Carl Zeiss Microscopy GmbH, Jena, AlemanhaRolamento 421452-9900-000Objetiva W "Plan-Apochromat" 20x/1.0 DIC M27 70mm
Visual Basics of Applicatons (VBA) para receber um gatilho do dispositivo de entrega de odor e o dispositivo de aplicação de choque elétrico (fonte de alimentação) para interagir com o software ZEN da Zeiss que controla o microscópioEscrito sob medida e disponível mediante solicitaçãon.a.n.a.

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