O protocolo a seguir é um trecho de Prior et al, A Rapid and Facile Pipeline for Generating Genomic Point Mutants in C. elegans Using CRISPR/Cas9 Ribonucleoproteins, J. Vis. Exp. (2018).
PCR de verme único e genotipagem
- Após 1 a 2 dias de postura dos ovos, transfira o F1s para tampas de tubo de tira de PCR individuais contendo 7 μL de tampão de lise de verme usando um picareta de sem-fim (Tabela 1, Figura 1D, dia 4 - 5).
- Centrifugue os tubos de PCR na velocidade máxima por 1 min em temperatura ambiente para levar os animais ao fundo do tubo e congele os tubos a -80 °C por 1 h.
OBSERVAÇÃO: Os vermes podem ser armazenados a -80 °C indefinidamente.
- Lisar minhocas congeladas em um termociclador usando o seguinte programa: 60 °C por 60 min, 95 °C por 15 min, 4 °C segurar.
- Configuração do mastermix de PCR conforme mostrado na Tabela 2.
- Adicione 21 μL de mastermix de PCR em tubos de PCR limpos e, em seguida, adicione 4 μL de lise de verme da etapa 3. Misture bem usando uma pipeta e execute o programa de PCR seguindo as diretrizes do fabricante (consulte a Tabela de Materiais).
- Purifique as reações de PCR usando um kit DNA Clean and Concentrate, seguindo as instruções do fabricante (consulte a Tabela de Materiais). Eluir o DNA adicionando 10 μL de água à coluna de rotação.
- Mastermix de enzimas de restrição de configuração, conforme mostrado na Tabela 3.
- Adicione 10 μL da mastermix de enzimas de restrição a cada reação de PCR limpa e incube por 1 a 2 h a 37 °C.
- Produtos de PCR digeridos separados em um gel de agarose a 1,5% executado a 120 V usando 1x tampão Tris-acetato-EDTA (TAE).