1. transfecção de miR-143 e miR-506
CUIDADO: Use luvas de látex, óculos de proteção e jaleco de laboratório durante a realização dos experimentos descritos. Quando necessário, use o gabinete de biossegurança com o ventilador do gabinete ligado, sem bloquear as vias aéreas ou perturbar o fluxo de ar laminar. Sempre ajuste a janela de vidro de proteção na altura apropriada, conforme descrito pelo fabricante.
- Semear células NSCLC A549 em um frasco T25 cm2/placa de 6/96 poços em meio DMEM/F12K suplementado com 10% de FBS e 1% de penicilina-estreptomicina (meio de cultura) em uma capa de cultura de tecidos e incubar durante a noite a 37 °C com 5% de CO2 em uma incubadora de cultura de tecidos.
- Suspenda os imitadores de miR-143 e/ou miR-506, ou embaralhe siRNA com agente transfectivo (2,4 μg de miR foram misturados com 14 μL de agente transfectador; ver Tabela de Materiais) em 500 μL de meio de transfecção e 1,5 mL de soro e meio DMEM/F12K livre de antibióticos em uma concentração final de miRNA de 100 nM. A quantidade de miRNA pode exigir otimização em diferentes células e concentrações. Abordagens apropriadas incluem a transfecção de células com concentrações crescentes de miRNA (ou seja, 50-200 nM) e avaliação da regulação negativa da expressão dos genes de interesse.
- Remova o meio de cultura do frasco/placa e lave uma vez com 1x PBS.
- Adicionar complexos de miRNA/agente transfectador de embaralhamento e incubar a 37 °C com 5% de CO2 durante 6 h (o tamanho do frasco define o volume de incubação adicionado).
- Substitua o meio por 4 mL de meio de cultura e incube as células por 24 h e / ou 48 h.
- Colha as células transfectadas por tripsinização, adicionando 1 mL de tripsina-EDTA em cada frasco T25 cm2, incube por 5-10 min a 37 ° C e adicione 3 mL de meio de cultura para colher as células. Colocar o conteúdo de cada balão num tubo separado de 15 ml marcado. Trabalhe em uma coifa de cultura de tecidos.
- Centrifugue a 751 x g por 5 min e remova o sobrenadante.
nota: É necessário cuidado durante a remoção do sobrenadante, pois a agitação do tubo pode causar perda de células.
- Adicione 2 mL de 1x PBS e centrifugue por 5 min a 751 x g.
- Repita as etapas 7 e 8 uma vez para remover quaisquer vestígios de mídia e supernatant.
nota: Nesta fase, os tubos de amostra podem ser armazenados a -80 °C ou podem ser usados imediatamente.
2. Extração de RNA
- Limpe a área de trabalho pulverizando com álcool isopropílico 70% e solução de descontaminação de RNAse.
- A extração de RNA deve ser realizada usando um kit de RNA apropriado (consulte a Tabela de Materiais).
- Remova os tubos de -80 °C e deixe-os descongelar. Adicione 300 μL de tampão de lise e pipete para cima e para baixo para quebrar a membrana celular.
- Adicione um volume igual de etanol 100% ultrapuro.
- Misture bem e coloque na coluna de separação.
- Centrifugue entre 11 e 16 x g por 30 s e remova o fluxo.
- Adicione 400 μL de tampão de lavagem e centrifugue para remover o tampão.
- Adicione 5 μL de DNAse I com 75 μL de tampão de digestão de DNA em cada amostra e incube por 15 min.
- Lave a amostra com 400 μL de tampão de preparação de RNA.
- Lave 2x com tampão de lavagem de RNA.
- Adicione água livre de nuclease à coluna, centrifugue e colete o RNA.
- Meça a concentração total de RNA com um espectrofotômetro UV.