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Ensaio de marcação de pulso de bromodeoxiuridina: uma técnica para medir a proliferação celular

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30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Fonte: Welschinger R. et al. Rastreamento temporal da progressão do ciclo celular usando citometria de fluxo sem a necessidade de sincronização. J. Vis. Exp. (2015)

O vídeo descreve o ensaio de marcação de pulso passo a passo de células de mamíferos com bromodeoxiuridina (BrdU) para medir a proliferação celular. A captação de BrdU permite o rastreamento temporal de células que estavam na fase de síntese em um ponto específico no tempo, sem exigir que as células sejam sincronizadas.

Protocolo

1. Soluções e reagentes

  1. RPMI completo
    1. Adicione 56 ml de soro fetal de bezerro (FCS) e 5,5 ml de L-glutamina 200 mM a um frasco de 500 ml de meio RPMI-1640.
  2. Solução de Estoque BrdU
    1. Prepare 32,5 mM de BrdU (10 mg / ml) em solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco (DPBS).
  3. BrdU RPMI completo
    1. Adicionar 6,2 μl de solução-mãe de BrdU a 10 ml de RPMI completo.
  4. Solução DNase
    1. Preparar 1 mg de DNase/ml em DPBS.
  5. Tampão de coloração
    1. Prepare 3% de FCS inativado por calor e 0.09% de azida de sódio em DPBS.
  6. Consulte a Lista de Materiais para obter as definições de Amortecedor de Fixação, Amortecedor de Permeabilização e Amortecedor de Lavagem.

2. Células

NOTA: As células não foram cultivadas por mais de 6 meses. Este método é diretamente adaptável a qualquer linhagem celular não aderente com ajustes na densidade celular e no meio de cultura. Use células que estão crescendo exponencialmente no início do experimento.

  1. Manter as células NALM6 em frascos de cultura T-75 em RPMI completo. Execute todas as etapas em condições estéreis usando um Gabinete de Biossegurança Classe II.
  2. Mantenha as células NALM6 entre 1-2 x 106 células por ml, dividindo a cultura três vezes por semana.
  3. Incubar a 37 °C em 5% de CO2 no ar.

3. Marcação de pulso de células com BrdU

CUIDADO: Manuseie o BrdU com cuidado, pois é um potencial mutagênico e teratogênico.

  1. Centrifugar células a 150 x g por 5 min.
    nota: A transferência de células para meios frescos melhora a reprodutibilidade dos resultados.
  2. Realize uma contagem de células e ressuspenda as células em RPMI completo a 2 x 106 células / ml.
  3. Dilua as células 1 em 2 com BrdU RPMI completo, produzindo uma concentração celular final de 1 x 10,6 células/ml.
  4. Incubar a 37 °C com 5% de CO2 durante 45 min e, em seguida, diluir as células 1 em 10 com RPMI completo. Centrifugue as células a 150 x g por 5 min e descarte cuidadosamente todo o sobrenadante.
  5. Ressuspenda as células em um pequeno volume (~ 100 μl) de RPMI completo, faça uma contagem de células e ajuste para 1 x 106 células / ml.
  6. Pipetar 1 ml de células para os alvéolos de uma placa de 48 poços. Pipetar 1 ml de DPBS em quaisquer poços desocupados para obter resultados mais reprodutíveis.
  7. Incube a 37 °C em 5% de CO2 no ar para os pontos de tempo desejados, aqui 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23 e 24 hr.
    nota: O período de tempo dependerá do que o projeto experimental pretende medir.
  8. Transfira todas as células para tubos FACS usando uma pipeta. Enxágue o poço sequencialmente com volumes de 1 ml de PBS até um volume total final de 5 ml.
  9. Centrifugue a 150 x g por 5 min e remova cuidadosamente todo o sobrenadante. As células estão prontas para a coloração, faça isso (seção 4) imediatamente.

4. Coloração celular

NOTA: Se for necessária a coloração superficial das células, realize-a antes da fixação, garantindo que as células sejam mantidas a 4 °C durante todo o processo.

  1. Ressuspenda as células em 100 μl de tampão de coloração (para coloração de superfície opcional, adicione o volume recomendado de anticorpo aos antígenos de superfície e incube por 30 min a 4 ° C).
  2. Adicionar 1 ml de tampão de coloração, centrifugar durante 5 min a 150 x g e rejeitar o sobrenadante.
    Nota: O anticorpo específico, a concentração, o tempo de incubação, etc., variam de acordo com os objetivos experimentais específicos.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
NALM6 DSMZ ACC-128
5-Bromo-2′-desoxiuridina sigma B5002-1G
RPMI 1.640 sem L-Gln 500 ml Lonza 12-167F
DPBS Lonza 17-512F
Soro fetal bovino FisherBiotec FBS-7100113
Incubadora de CO2 fichário C 150
Tubos FACS BD Falcon 12 x 75 mm BD Biociências 352008
Citômetro de fluxo BD LSR FORTESSA BD Biociências FORTESSA
centrifuga Spantrão GT-175R

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