1. Soluções e reagentes
- RPMI completo
- Adicione 56 ml de soro fetal de bezerro (FCS) e 5,5 ml de L-glutamina 200 mM a um frasco de 500 ml de meio RPMI-1640.
- Solução de Estoque BrdU
- Prepare 32,5 mM de BrdU (10 mg / ml) em solução salina tamponada com fosfato de Dulbecco (DPBS).
- BrdU RPMI completo
- Adicionar 6,2 μl de solução-mãe de BrdU a 10 ml de RPMI completo.
- Solução DNase
- Preparar 1 mg de DNase/ml em DPBS.
- Tampão de coloração
- Prepare 3% de FCS inativado por calor e 0.09% de azida de sódio em DPBS.
- Consulte a Lista de Materiais para obter as definições de Amortecedor de Fixação, Amortecedor de Permeabilização e Amortecedor de Lavagem.
2. Células
NOTA: As células não foram cultivadas por mais de 6 meses. Este método é diretamente adaptável a qualquer linhagem celular não aderente com ajustes na densidade celular e no meio de cultura. Use células que estão crescendo exponencialmente no início do experimento.
- Manter as células NALM6 em frascos de cultura T-75 em RPMI completo. Execute todas as etapas em condições estéreis usando um Gabinete de Biossegurança Classe II.
- Mantenha as células NALM6 entre 1-2 x 106 células por ml, dividindo a cultura três vezes por semana.
- Incubar a 37 °C em 5% de CO2 no ar.
3. Marcação de pulso de células com BrdU
CUIDADO: Manuseie o BrdU com cuidado, pois é um potencial mutagênico e teratogênico.
- Centrifugar células a 150 x g por 5 min.
nota: A transferência de células para meios frescos melhora a reprodutibilidade dos resultados.
- Realize uma contagem de células e ressuspenda as células em RPMI completo a 2 x 106 células / ml.
- Dilua as células 1 em 2 com BrdU RPMI completo, produzindo uma concentração celular final de 1 x 10,6 células/ml.
- Incubar a 37 °C com 5% de CO2 durante 45 min e, em seguida, diluir as células 1 em 10 com RPMI completo. Centrifugue as células a 150 x g por 5 min e descarte cuidadosamente todo o sobrenadante.
- Ressuspenda as células em um pequeno volume (~ 100 μl) de RPMI completo, faça uma contagem de células e ajuste para 1 x 106 células / ml.
- Pipetar 1 ml de células para os alvéolos de uma placa de 48 poços. Pipetar 1 ml de DPBS em quaisquer poços desocupados para obter resultados mais reprodutíveis.
- Incube a 37 °C em 5% de CO2 no ar para os pontos de tempo desejados, aqui 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23 e 24 hr.
nota: O período de tempo dependerá do que o projeto experimental pretende medir.
- Transfira todas as células para tubos FACS usando uma pipeta. Enxágue o poço sequencialmente com volumes de 1 ml de PBS até um volume total final de 5 ml.
- Centrifugue a 150 x g por 5 min e remova cuidadosamente todo o sobrenadante. As células estão prontas para a coloração, faça isso (seção 4) imediatamente.
4. Coloração celular
NOTA: Se for necessária a coloração superficial das células, realize-a antes da fixação, garantindo que as células sejam mantidas a 4 °C durante todo o processo.
- Ressuspenda as células em 100 μl de tampão de coloração (para coloração de superfície opcional, adicione o volume recomendado de anticorpo aos antígenos de superfície e incube por 30 min a 4 ° C).
- Adicionar 1 ml de tampão de coloração, centrifugar durante 5 min a 150 x g e rejeitar o sobrenadante.
Nota: O anticorpo específico, a concentração, o tempo de incubação, etc., variam de acordo com os objetivos experimentais específicos.