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Análise de Expressão Gênica Utilizando bacteriana Microarrays

DOI:

10.3791/206

May 28th, 2007

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Protocol

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Reação reversa Transcriptase

Vire bloco de aquecimento a 70-80 ° C e 42 ° C. Banhos de água também pode ser usado nesta etapa. Se estiver usando blocos de aquecimento, coloque um pouco de água para que o calor é uniforme.

  1. Reação priming
    1. Tome 3 mg de RNA
    2. Ajustar o volume para 13 mL com água livre de RNase
    3. Adicionar 2,5 mL de aleatório hexâmero primers (2mg/ml)
  2. Misturar bem e incubar a 70-80 ° C por 8 minutos. Em seguida, coloque, em gelo por 5 min.
  3. Prepare RT cocktail (14,5 mL / rxn):

    Componente

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
AA-dUTPSigma-AldrichA04105-(3-aminoalil)-2' desoxiuridina-5'-trifosfato
dNTPAmersham27-2035-01100 mM dNTP Conjunto PCR
grau Random Hexamer primersAmersham27-2166-013mg/mL
SuperScript III RTInvitrogen80800444200U/μ L
CyDye™AmershamRPN5661Pacote de Corante Reativo Pós-Rotulagem
QIAquickQiagen28104Kit de purificação PCR
1 M K2HPO4
1 M KH2PO4
1 M KPO4TampãoPara fazer um tampão fosfato 1M (KPO4, pH 8,5-8,7) combine: 9,5 mL 1M K2HPO4 e 0,5 ml 1M KH2PO4
Tampão de lavagem de fosfatoTampãoPara 100 mL Tampão de lavagem de fosfato (5 mM KPO4, pH 8,0, 80% EtOH) misturar: 0,5 ml 1 M KPO4 pH 8,5 + 15,25 mL MilliQ água + 84,25 mL 95% de etanol. O tampão de lavagem ficará ligeiramente turvo.** IMPORTANTE: O tampão de lavagem de fosfato deve ser preparado diariamente.
Tampão de eluição de fosfatoTampãoDiluindo 1 M KPO4, pH 8,5 a 4 mM com água estéril
Tampão(Na2CO3): 0,5M, pH 9,0. Dissolva 4,2 g de NaHCO3 em 80 mL de água estéril e ajuste o pH para 9,0 com 10 N NaOH; aumente o volume para 100 mL com água estéril. Para fazer uma solução de 50 mM para a reação de acoplamento do corante, diluir 1:10 com água. Nota: O tampão de carbonato muda a composição ao longo do tempo; Faça-o fresco a cada duas semanas a um mês.
de carbonato de sódio

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Hasseman, J. TIGR Aminoallyl Labeling of RNA for. Microarrays & TIGR Microarray Labeled Probe Hybridization. , Forthcoming.
  2. Gilbert,, et al. TIGR Microbial RNA Aminoallyl Labeling for Microarrays & Hybridization of probed labels. , Forthcoming.
  3. Hedge,, ....

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Gene Expression AnalysisMicroarray TechniqueRNA LabelingReverse TranscriptionCDNA PurificationFluorescent LabelingSlide HybridizationWashing ProtocolSlide ScanningDetection

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