Artigo de método

O método de cultura de embriões de roedores inteiro usando o Rotator do tipo Sistema de Cultura Garrafa

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DOI:

10.3791/2170

28 de agosto de 2010

Neste artigo

Resumo

Técnica de cultura todo embrião de rato permite-nos cultura e embriões de ratos Ex vivo Condição durante períodos limitados, correspondendo a fases midgestation. Neste protocolo de vídeo, demonstramos nossos procedimentos padrão de cultura de embriões de ratos após toda E12.5 usando o rotator-tipo de sistema de cultura de garrafa.

Resumo

Todo embrião cultura técnica (WEC) foi desenvolvido em 1950 pela Nova e seus colegas, e aplicadas em biologia do desenvolvimento 1. Embora o desenvolvimento e crescimento de embriões de mamíferos dependem criticamente a função da placenta, WEC técnica nos permite rato cultura e embriões de ratos condição de ex vivo durante períodos limitados, correspondendo a fases midgestation durante o dia embrionário (E) 6,5 E12.5 na mouse ou E8.5-E14.5 no rato 2, 3, 4. No WEC, nós podemos diretamente alvo desejado áreas de embriões utilizando capilares de vidro fina porque os embriões podem ser manipulados sob o microscópio. Portanto, WEC roedores é uma técnica muito útil quando queremos estudar processos dinâmicos de desenvolvimento de embriões de mamíferos postimplanted. Até à data, vários tipos de sistemas têm sido desenvolvidos WEC 1. Entre estes, o rotator-tipo de sistema de cultura de garrafa é mais popular e adequada para longo prazo de cultura de embriões em midgestation, ou seja, após E9.5 e E11.5 em camundongos e ratos, respectivamente 1. Neste protocolo de vídeo, demonstramos nossos procedimentos padrão de WEC ratos após E12.5 usando um modelo refinado do sistema original rotador, que foi desenhado por New Cockroft e 5, 6, e introduzir várias aplicações da técnica do CME para estudos em desenvolvimento de mamíferos biologia.

Protocolo

1. Configurando o sistema WEC

  1. Conjunta de uma membrana M 0,22 filtro para o tubo de silicone de entrada no sistema um WEC).
  2. Abrir a válvula de um cilindro de gás contendo O 2 (95%) e CO 2 (5%). Fluxo da mistura de gases no cilindro através da garrafa borbulhando contendo água esterilizada.
  3. Ajustar o volume do fluxo de mistura gasosa a 50 cc.
  4. Insira o tubo de silicone para deixar em uma garrafa de água e verificar o fluxo de mistura gasosa.
  5. Girar o tambor com a velocidade de 20 rpm / min.

2. Preparação de meio de cultura

  1. Rat-degelo imediata....

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Discussão

Existem dois passos críticos no WEC roedores para o sucesso. Primeiro, o procedimento de dissecção deve ser preciso para não danificar embriões, especialmente os vasos sanguíneos. Segundo, o procedimento deve ser o mais rápido possível, porque o oxigênio e nutrientes não são mais fornecidos através da placenta após o isolamento do útero. Isto é crítico para os embriões mais velhos. No caso do WEC de ratos após E12.5, devemos transferir embriões dissecado em garrafas de cultura em 30 minutos.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

Nós agradecemos o Sr. Hajime Ichijo conselhos para a gravação de vídeo e útil para editar o vídeo. Agradecemos também Drs.Yuji Tsunekawa e Kaichi Yoshizaki para assistente de tipo para gravação de vídeo. Este trabalho é apoiado por KAKENHI em B Jovem Cientista ea prioridade Ciência Cérebro Áreas-Molecular de MEXT do Japão. Agradecemos o apoio da Global COE Programa "Centro de Investigação Básica e translacional para a Ciência do Cérebro Global" a partir MEXT do Japão e de Pesquisa Núcleo de Ciência e Tecnologia Evolutiva (CREST) ​​de Ciência japonês e Corporação de Tecnologia de Ciência do Japão e Agência de Tecnologia (JST) .

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Nome Tipo Companhia Número de catálogo Comentário
Criação WEC
WEC sistema (10-0310) Ferramenta Ikemoto Rika 010-0310 Um outro modelo pequeno também está disponível.
Silicon plug sem um buraco Ferramenta Ikemoto Rika 010-032-08
Cilindro de mistura de gás Ferramenta Nikko Sanso - Contendo 95% de oxigênio e dióxido de carbono de 5%. Ordem feita sob encomenda.
Regulador de gás Ferramenta Ono Seisakusho WR-11
0,22 mM filtro Millex GS Ferramenta Millipore SLGS033SS
Anestesia e isolamento do útero
Tesouras grandes Ferramenta Napox B-7H
Fórceps Ferramenta Napox A-3-2
Prato disposição Petri
(90 mm x 15 mm)
Ferramenta Iwaki SH90-15 Deep-tipo de prato é o melhor para dissecção.
Isoflurano Reagente Abbott B506 Para anestesia
Pentobarbital sódico Reagente Schering-Plough Saúde Animal - Para anestesia
Tyrode de solução salina Reagente - - De acordo como o protocolo na Ref. 2. Salvar a 4 ° C.
Cronometrado grávidas de ratos Sprague-Dawley Animal Charles Rivers Laboratories Japão -
Preparação de meio de cultura
Garrafa de vidro cultura Ferramenta Ikemoto Rika 010-032-05
Frasco de cultura disposição Ferramenta Ikemoto Rika 010-032-06
Silicon ficha com buraco Ferramenta Ikemoto Rika 010-032-07
Folha de alumínio Ferramenta Qualquer empresa -
Saco de autoclave Ferramenta Hogy HM-26 Para garrafas de cultura
Saco de autoclave Ferramenta Hogy HM-14A Para plugues de silicone
0,45 mM filtro Millex HA Ferramenta Millipore SLHA033SS
50 tubo cônico ml Ferramenta Becton Dickinson 352070
100 ml copo Ferramenta Iwaki TE-32
Rat IC soro Reagente Charles Rivers Laboratories Japão - Referem-se a: Sr. Kunihiko Morisaki,
TEL: +81- (0) 45-474-9336; FAX: +81- (0) 45-474-9340
D (+)-Glicose Reagente Wako 041-00595
Antibióticos antimyotic líquido Reagente Gibco 15240
Dissecação de embriões
Tesoura oftálmica reta Ferramenta Napox MB50-7 Para o corte da parede uterina
Tesoura oftálmica curvas Ferramenta Napox MB54-2 Para cortar o saco vitelino
Fórceps # 5 Ferramenta Vigor T6715
Fórceps # 5F Ferramenta Regine T6819
Pipeta de vidro Ferramenta - - Feito à mão usando pipeta Pasteur.
Saco de autoclave Ferramenta Hogy HM-4 Para pipetas de vidro
Microscópio binocular Ferramenta Leica Mz7s
Luz Ferramenta Leica CLS 150XD
Óleo de pedra Ferramenta Yoko Uchida 833-2000 Para afiar de fórceps
Óleo de máquina Ferramenta Yoko Uchida 835-0000 Para afiar de fórceps

Referências

  1. New, D. A. T. Intoroduction. In mammalian postimplantation embryos. In Mammalian Postimplantation Embryos A Practical Approach. Copp, A. J., Cockroft, D. L. , IRL Press. Oxford. 1-14 (1990).
  2. Cockroft, D. L. Dissection and culture of post implantation embryos. In Mammalian Postimplanta....

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