Artigo de método

Alimentador livre adaptação, Cultura e Passaging de células iPS humanas usando Completa KnockOut Alimentador-Free substituição Serum Médio

DOI:

10.3791/2236

15 de julho de 2010

Neste artigo

Resumo

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O protocolo a seguir fornece instruções para a adaptação humana tronco pluripotentes induzidas (iPS) células para alimentação livre de cultura usando completa KnockOut Feeder livre de substituição de soro médio (KSR-FF). Uma vez adaptado, instruções para a manutenção contínua também são fornecidos.

Resumo

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A descoberta em 2006 que fibroblastos humanos e mouse poderia ser reprogramado para gerar células iPS 1-3 com qualidades muito semelhantes às células-tronco embrionárias criou uma valiosa fonte de novas células pluripotentes para descoberta de medicamentos, terapia celular, e pesquisa básica.

Media GIBCO e reagentes têm estado na vanguarda da pesquisa com células-tronco pluripotentes por anos. Knockout DMEM suplementado com Knockout Serum substituição é a mídia de sua escolha para o crescimento de células-tronco embrionárias e, agora, de cultura de células iPS 3-9. Este padrão ouro sistema de mídia agora pode ser usado para alimentação livre de cultura com a adição de Knockout SR Cocktail Fator de Crescimento.

ES humana e métodos tradicionais de cultura de células iPS requerem o uso de mouse ou camadas de alimentação humana de fibroblastos, ou alimentador condicionado médio. Estes métodos cultura são de trabalho intensivo, difícil de escala e é difícil manter quadris células indiferenciadas, devido às condições indefinido. Invitrogen desenvolveu Knockout SR Cocktail Fator de Crescimento para permitir que você facilmente a transição do seu celular para culturas quadris alimentador livre, mantendo o uso do SR Knockout.

Protocolo

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Nota: Para manter as condições de cultura estéril, todos os procedimentos neste protocolo são realizadas utilizando práticas de laboratório estéril e conduzidos sob uma capela de fluxo laminar.

Antes de começar, certifique-se que qualquer mídia é equilibrado a 37 ° C e adequadamente gaseados.

Preparar pratos Geltrex revestido Cultura

Nota: ver anexo para o uso de placas de cultura de CELLstart revestido

  1. Tubo de descongelar um dos Geltrex (1 mL) lentamente a 2-8 ° C e diluir 1:100 em 99 mL de Knockout D-MEM/F-12. Misturar a solução suavemente.

    Nota: Algumas linhagens de células iPS podem requerer uma diluição Geltrex diferentes para o crescimento ideal. Veja o apêndice para diluições de alternativa.
  2. Cobrir toda a superfície de cada placa de cultura com a solução Geltrex (1 mL para um prato de 35 mm, 1,5 mL para um prato de 60 mm).
  3. Seal cada prato com Parafilm para evitar a secagem e incubar os pratos para 1 hora a 37 ° C.

    Nota: Neste ponto, você pode armazenar os pratos Geltrex revestido cultura a 4 ° C por até 1 mês. Seal cada prato com Parafilm para impedir a Geltrex sequem.
  4. Antes de usar, transferir os pratos Geltrex revestido a uma capela de fluxo laminar e permitir-lhes atingir a temperatura ambiente (cerca de 1 hora).

Preparando Alimentador-Free SR Completa KnockOut Médio

  1. Para preparar 1 mL de 10 mcg / ml solução FGF Basic, assepticamente misturar os componentes listados abaixo. Alíquota da solução e armazenar a -20 ° C por até 6 meses.

    FGF básico 10 mg
    D-PBS 990 mL
    10% BSA 10 L


    Nota: BSA pode ser substituído com HSA ou SR Knockout na mesma concentração.
  2. Para preparar 50 mL de solução 2 Dispase mg / mL, assepticamente misturar os componentes listados abaixo. Filtro de esterilizar a solução e armazenar a 4 ° C por até duas semanas.

    Dispase 100 mg
    D-PBS 50 mL
  3. Para preparar 100 mL de SR KnockOut completa Alimentador-Free (KSR-FF) médio assepticamente combinar os componentes listados na tabela abaixo.

    Componente Concentração de ações Concentração Final Volume
    Knockout DMEM/F12 (Cat. n º. 12.660-012) - 1X 76,8 mL
    Glutamax-I (Cat. No. 35050-061) 200 mM 2 mM 1 mL
    KnockOut SR (sem Cat.. 10.828-028) - 20% 20 mL
    KnockOut SR-GFC (sem Cat.. A10580-01) 50X 1X 2 mL
    bFGF (sem Cat.. PHG0024) 10 mcg / mL 20 ng / mL 200 mL
    Você pode armazenar o meio KSR-FF a 2-8 ° C por até uma semana.
  4. Pouco antes de pré-equilibrar o meio completo à temperatura e gases, adicionar assepticamente o volume necessário de 2-mercaptoetanol (55 mM de concentração de ações) para uma concentração de 0,1 mM final. Por exemplo, para preparar 100 mL da KSR-FF médio mL adicionar 182 de 55 mM 2-mercaptoetanol (1:550 diluição) Alternativamente, o 2-mercaptoetanol podem ser adicionadas ao meio 1X preenchido e armazenado a 2-8 ° C para até uma semana.

Adaptação iPSCs a KSR-FF Médio

  1. Antes de começar, pré-equilibrar os seus pratos Geltrex revestidas até a temperatura ambiente no bairro.
  2. Cultura da iPSCs em células alimentadoras MEF até que sejam confluentes 70-80%. Por favor, consulte o manual Fibroblasto GIBCO embrionárias de camundongos para protocolos baseados em MEF cultura.
  3. Pré-aquecer o volume necessário de Dispase em um banho de água 37 ° C. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  4. Pré-equilibrar o volume necessário de KSR-FF em um banho de água a 37 ° C for15 min. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  5. Aspirar o meio dos pratos, cultura e adicionar uma quantidade adequada de solução Dispase. Incubar os pratos a 37 ° C por 3-5 minutos.
  6. Aspirar a solução de cada navio Dispase cultura e lavar as células alimentador MEF suavemente com D-PBS (2 a 3 vezes).
  7. Adicionar uma quantidade adequada de meio completo KnockOut SR a cada navio de cultura. Use um raspador de célula ou uma pipeta de 5 mL para raspar suavemente as células da superfície da embarcação cultura.

    Nota: veja o apêndice para protocolos alternativos para adaptação difícil de se adaptar as linhas de células iPS,
  8. Recolher a suspensão de células de cada placa de cultura em diferentes tubos de 15 mL cônico. Lave cada navio cultura com uma quantidade adequada de meio completo KnockOut SR, e adicione a D-PBS lavar médio para o 15 mL tubos cônicos contendo a suspensão celular. Seja cauteloso para não quebrar os aglomerados de células em uma única célula
  9. Centrifugar a 15 mL em tubos cônicos 200 xg por 5 minutos para sedimentar as iPSCs.
  10. Aspirar o sobrenadante do pellet iPSC. Ressuspender o sedimento em uma quantidade adequada de KSR-FF médio de acordo com a taxa de divisão (Tabela 1). Não quebre os aglomerados de células para um tamanho menor, porque os aglomerados mais pequenos não dão bem para a superfície.

    Nota: Recomenda-se uma taxa de divisão de 1:2 para os primeiros três passagens após o iPSCs foram várias passagens diretamente do Meio de Cultura iPSC MEF para KSR-FF médio. Normalmente, a razão de separação 01:03 - 01:05 é apropriado, mas passaging em 01:02 garante a maior densidade de células necessárias ao adaptar em uma cultura de alimentação livre.
  11. Antes de chapeamento do iPSCs em pratos Geltrex revestido, aspirar solução Geltrex residual do prato pré-revestidos, e lentamente adicionar uma quantidade adequada de suspensão de células de cada placa de cultura. Nota: não lavar os pratos antes de chapeamento.
  12. Mover a placa de cultura e para trás e para os lados várias vezes para dispersar as células em toda a superfície do prato. Delicadamente, coloque o prato de cultura em uma incubadora de 37 ° C com uma atmosfera húmida de 4 a 6% CO 2 no ar. Substituir o médio gasto com KSR-FF a cada dia.

Passaging células iPS usando KSR-FF

  1. Observar o iPSCs humana crescendo em completa KSR-FF sob o microscópio para confirmar que as células são 70-80% confluentes e pronto para ser repicadas. Consulte a Figura 1.

    Nota: Se colônias tornam-se muito denso ou muito grande, maior diferenciação ocorre.
  2. Cortar e remover qualquer colônias diferenciada iPSC antes passaging a cultura.
  3. Pré-aquecer o volume necessário de Dispase em um banho de água 37 ° C. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  4. Pré-equilibrar o volume necessário de KSR-FF em um banho de água a 37 ° C for15 min. Consulte a Tabela 1 abaixo para obter detalhes sobre os volumes necessários.
  5. Aspirar o meio de gastos do navio cultura usando uma pipeta, e lavar as células duas vezes com D-PBS.
  6. Delicadamente adicionar pré-aquecido Dispase solução para o navio de cultura (por exemplo, 1 mL de solução Dispase por 60 mm placa de cultura). Redemoinho do navio cultura para revestir a superfície da célula inteira.
  7. Incubar a embarcação cultura a 37 ° C por 3 minutos.
  8. Remover o navio da incubadora, aspire a solução Dispase e lavar cuidadosamente as células com D-PBS.
  9. Raspe as células da superfície da placa de cultura com uma espátula de células, e transferência das células para um tubo de centrifugação estéril 15ml.
  10. Lavar o prato de cultura duas vezes com KSR-FF, gentilmente "pulverização off" as células que não tenham destacado. Piscina do enxágüe meio com as células no tubo de 15mL.
  11. Centrifugar o tubo a 200 xg por 5 minutos em temperatura ambiente para agregar as células.
  12. Aspirar cuidadosamente o sobrenadante sem perturbar o pellet celular e descartá-lo.
  13. Agite suavemente o tubo para expulsar totalmente o pellet celular a partir do fundo do tubo.
  14. Delicadamente ressuspender as células pré-equilibradas KSR-FF com uma pipeta de 5mL sorológicos. Não triturar. Nota: é fundamental na etapa delicadamente ressuspender as células sem usar a força para evitar danos.
  15. Transferência das células para um novo prato de 60 mm Geltrex revestido na razão de separação desejada e mova a placa de cultura e para trás e para os lados várias vezes para dispersar as células em sua superfície.
  16. Coloque o prato de cultura em uma incubadora de 37 ° C com uma atmosfera húmida de4 a 6% CO 2 no ar.
  17. No dia seguinte, colocar suavemente o médio gasto com KSR-FF para remover restos celulares. Substituir o médio passou todos os dias depois. Observe as células iPS diárias e passagem-los conforme necessário (aproximadamente a cada 4-5 dias). Passaging é recomendada quando as células atingem confluência de 70-80%. Para criopreservação de células iPS e descongelamento, consulte nosso protocolo intitulado "criopreservação e recuperação das células humanas iPS usando Completa KnockOut Feeder livre de substituição de soro Medium".

Resultados esperados

Cultura de células ao microscópio; estudo do crescimento celular; imagens de microscopia; pesquisa biológica.
Figura 1. A imagem abaixo mostra contraste de fase iPSCs cultivadas em pratos Geltrex revestido cultura usando completa KnockOut Alimentador-Free substituição Serum médio. O iPSCs apresentam morfologia semelhante ao hESCs, caracterizado por núcleos grandes e citoplasma escasso. (40x)

Componente Dish 35 milímetros Dish 60 milímetros Dish 100 milímetros
Completa KnockOut SR médio 2 mL 4 mL 10 mL
Geltrex Solution 1 mL 1,5 mL 4-5 mL
Dispase 0,5 mL 1 mL ML 3-4
D-PBS para lavagem 2 mL 4 mL 10 mL

Tabela 1. Volumes recomendado

Por favor, clique aqui para ver o apêndice .

Divulgações

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Os autores deste artigo são empregados por Life Technologies, que produz reagentes e instrumentos utilizados neste artigo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
DMEM/F12 KnockoutCat. no. 12660-012Observação: veja o apêndice para o uso de produtos DMEM alternativos
GlutaMAX-ICat. No. 35050-061
Substituto Sérico KnockOutKnockOut SR, Cat. no. 10828-028
Cocktail de Fatores de Crescimento do Substituto Sérico KnockOutKnockOut SR-GFC, Cat. no. A10580-01
Proteína recombinante básica de FGF humana, 10 μgbFGF, Cat. no. PHG0024Observação: veja o apêndice para tamanhos alternativos de embalagem de bFGF.
2-Mercapt–etanolCat. no. 21985-023
DispaseCat. no. 17105-041Observação: veja o apêndice para métodos alternativos de passagem.
Matriz da Lâmina Basal com Fator de Crescimento Reduzido Geltrex hESC-Qualificado, 1 mLCat. no. A10480-01
Solução Salina Tamponada com Fosfato de Dulbecco’s (D-PBS) sem cálcio e magnésioCat. no. 14190-144
Capa de Segurança em Cultura de Tecidos Esterilizada
Incubadora ajustada a 37°C
Pipetador
Banho-maria ajustado a 37°C
Pipetas serológicas estéreis (5 mL, 10 mL)
Centrífuga
Tubos cónicos de centrífuga de 15 mL
Placas de cultura de tecidos tratadas de 60 mm

Referências

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  1. Takahashi, K. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  3. Yu, J. Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells. Science. 318, 1917-1920 (2007).
  4. Maherali, N. Guidelines and techniques for the generation of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 3, 595-605 (2008).
  5. Li, W. Generation of rat and human induced pluripotent stem cells by combining genetic reprogramming and chemical inhibitors. Cell Stem Cell. 4, 16-19 (2009).
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  7. Dimos, J. T. Induced pluripotent stem cells generated from patients with ALS can be differentiated into motor neurons. Science. 321, 1218-1221 (2008).
  8. Aasen, T. Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes. Nat Biotechnli. 26, 1276-1284 (2008).
  9. Park, I. H. Generation of human-induced pluripotent stem cells. Nat Protoc. 3, 1180-1186 (2008).

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