1. Isolamento de esporos frescos de Streptomyces venezuelae e preparação do meio de cultura gasto
- Inocular 30 ml de meio de extrato de malte de maltose-levedura, suplementado com 60 μl de solução de oligoelemento R2 (TE), com 10 μl de esporos da estirpe SV60 [attBφBT1::p SS209 (PdivIVA-divIVA-mcherry PftsZ-ftsZ-ypet)]. Para um crescimento consistente e esporulação das células, use um frasco defletor ou um frasco que contenha uma mola para permitir aeração suficiente.
- Cultivar células durante 35-40 horas a 30 °C e 250 rpm.
- Examinar as células por microscopia de contraste de fase montada em líquido. Neste ponto, fragmentos e esporos miceliais serão visíveis.
- Centrifugue 1 ml de células em uma centrífuga de mesa a 400 x g por 1 minuto para granular o micélio e fragmentos de células maiores.
- Transferir cerca de 300 μl de sobrenadante contendo uma suspensão de esporos para um novo tubo de 1,5 ml e manter em gelo. Manter o meio de cultura restante
- Dilua os esporos 1:20 em MYM-TE (concentração final: 0,5-5 x 107 esporos / ml) e mantenha no gelo até que seja necessário.
NOTA: Embora as condições exatas que desencadeiam a esporulação em Streptomyces não sejam compreendidas, o uso de meio MYM-TE gasto, incluindo quaisquer sinais extracelulares desconhecidos de uma cultura esporulante, estimula a esporulação. - Filtre-esterilize 10 ml do meio de cultura restante para obter MYM-TE gasto que esteja livre de esporos e fragmentos miceliais. Use um filtro de seringa estéril de 0,22 μm e transfira o MYM-TE gasto para um tubo estéril de 15 ml.
- Manter o MYM-TE gasto preparado durante alguns dias a 4 °C se forem realizadas experiências adicionais utilizando condições de crescimento semelhantes.