Artigo de método

Quantificando o alginato bacteriano usando um ensaio imunoenzimático baseado em anticorpos

26 de setembro de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Al Ahmar, R., et al. Cultura de Variante de Pequena Colônia de Pseudomonas aeruginosa e Quantificação de seu Alginato. J. Vis. Exp. (2020)

Este vídeo demonstra um imunoensaio colorimétrico para quantificar o alginato, um exopolissacarídeo protetor produzido por Pseudomonas aeruginosa. O procedimento envolve o revestimento de uma microplaca com a amostra, a aplicação de anticorpos específicos e o uso de uma reação enzima-substrato para gerar uma mudança de cor mensurável. Uma curva padrão é então usada para determinar a concentração de alginato com base na intensidade da cor da amostra.

Protocolo

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1. ELISA para quantificação de alginato

1. Usando uma micropipeta, adicione 50 μL da amostra coletada a uma placa de 96 poços não tratada. Adicione 50 μL de tampão de revestimento (tampão carbonato/bicarbonato pH 9,6) aos poços. Incubar a placa a 37 °C durante 2 h.

NOTA: Para um controlo positivo, pode utilizar-se uma concentração conhecida de ácido D-manurónico e/ou uma estirpe produtora de alginato estável conhecida (por exemplo, PAO581- PAO1mucA25). Para um controle negativo, use uma solução de NaCl a 0,85% e / ou PAO1ΔalgD (a deleção do gene algD torna a bactéria completamente incapaz de produzir qualquer alginato). Vários poços podem ser feitos a partir de cada amostra para aumentar o número de repetições técnicas para auxiliar na análise estatística. Prepare 3−5 poços de cada amostra.

2. Usando uma garrafa de esguicho, lave os poços da placa 2x com 1x solução salina tamponada com fosfato (PBS) com 0,05% Tween 20 (PBS-T) enchendo os poços e, em seguida, drenando-os virando a placa.

3. Usando uma micropipeta, adicione 200 μL de tampão de bloqueio (10% de leite desnatado em PBS-T) aos poços. Incubar a 4 °C durante a noite.

NOTA: Embrulhe o prato em filme de parafina ou filme retrátil para ajudar a evitar qualquer evaporação na geladeira.

4. Usando uma garrafa de esguicho, lave os poços da placa 2x com PBS-T enchendo os poços e, em seguida, drenando-os virando a placa.

5. Usando uma micropipeta, adicione 100 μL de anticorpo primário diluído (anticorpo monoclonal anti-alginato de camundongo) aos poços e incube a 37 ° C por 1-2 h.

NOTA: O anticorpo primário (anticorpo monoclonal antialginato de camundongo) foi fornecido na concentração de 0,5 μg/mL (diluição de 1:2.000 de estoque de 1 mg/mL) em solução diluente de anticorpos (leite desnatado a 1% em PBS 1x).

6. Usando uma garrafa de esguicho, lave os poços da placa 3x com PBS-T enchendo os poços e, em seguida, drenando-os virando a placa.

7. Usando uma micropipeta, adicione 100 μL de anticorpo secundário diluído aos poços e incube a 37 ° C por 1-2 h.

NOTA: O anticorpo secundário utilizado foi o anticorpo peroxidase de poli-rábano (HRP) de cabra perfurada a uma concentração de 0,25 μg/mL (diluição de 1:2.000 de 0,5 mg/mL de estoque) em solução diluente de anticorpos.

8. Usando uma garrafa de esguicho, lave os poços da placa 3x com PBS-T enchendo os poços e, em seguida, drenando-os virando a placa.

9. Usando uma micropipeta, adicione 100 μL de solução TMB (3,3',5,5'-Tetrametilbenzidina)-ELISA (Ensaio de Imunoabsorção Enzimática) (Tabela de Materiais) e incube em temperatura ambiente por 30 min no escuro.

NOTA: A cor de uma reação positiva seria um tom de azul.

10. Usando uma micropipeta, adicione 100 μL de solução de parada (ácido sulfúrico 2 N).

NOTA: A cor mudará de azul para amarelo quando a solução de parada for adicionada. A cor é estável por até 30 minutos após a interrupção da reação.

11. Usando um leitor de placas, leia o diâmetro externo a 450 nm.

12. Produza uma curva padrão medindo o OD450 de diluições seriadas de concentrações conhecidas de ácido D-manurônico (1.024 μg / mL, 512 μg / mL, 256 μg / mL, 128 μg / mL, 64 μg / mL, 32 μg / mL, 16 μg / mL e 8 μg / mL). Repita 2x. A partir dessas leituras, extraia uma equação linear.

NOTA: A curva padrão precisa ser feita apenas uma vez. A equação linear extraída dele pode ser usada para testes posteriores.

1. Calcular a concentração de alginato em cada amostra utilizando a curva padrão e dividir a concentração de alginato da equação linear por OD600 para obter a quantidade total de alginato por OD600.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Ultra TMB-ELISA de 1 passoThermo Científico34028via Fisher Scientific
Placas de ensaio com 96 poçosCostar2021-12-20 
Tampão de carbonato-bicarbonatoSigmaC3041 
Tubos de centrífuga (50 mL)Fisher Científico05-539-13via Fisher Scientific
Tubos de ensaio de culturaFisher Científico14-956-6Dvia Fisher Scientific
Cubeta de poliestireno (1,5 mL)Fisher Científico14955127via Fisher Scientific
Ácido D-Manurônico de SódioSigma AldrichSMB00280 
Alginato FMCFMC2133 
Anticorpo monoclonal antialginato de camundongoQED BiociênciasN/ALote #: 15725/15726
Pó salino tampolado com fosfato (PBS)SigmaPág. 3813 
Anticorpo Pierce Goat Anti-Mouse Poly-HRPThermo Científico32230via Fisher Scientific
Palitos redondosDiamante Qualquer marca
Alginato de algas marinhas (Protanal CR 8133)Corporação FMC  
Leite desnatadoDifco232100via Fisher Scientific
Espectrofotômetro SmartSpec PlusBioRad170-2525ou fornecedor preferencial
Cloreto de sódio (NaCl)SigmaS-5886 
Leitor de microplacas multimodo SpectraMax i3xDispositivos Molecularesi3xou fornecedor preferencial
Ácido sulfúrico (2 soluções normais de parada)Sistemas de P&DDY994 
Pré-adolescente 20SigmaPág. 2287 

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Etiquetas

ELISA AssayAlginate QuantificationAntibody Based DetectionMicroplate ReaderChromogenic SubstrateStandard CurvePseudomonas aeruginosaExopolysaccharideColorimetric Detection

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