1. Protocolo para ativação e controle de qualidade de culturas de bactérias do ácido lático (LAB)
- Retire o estoque de glicerol preparado de cepas LAB (em tubos de centrífuga de 2 mL) do freezer ultrabaixo a -80 ° C e não permita que descongelem antes de usar.
- Limpe e desinfete a abertura dos tubos da centrífuga com álcool 70% e bata suavemente antes de usar.
- Pipete cerca de 250 μL (0,25 mL) da cultura LAB padrão dos tubos de centrífuga para tubos de ensaio MRS (meios deMan, Rogosa e Sharpe) frescos de 2 mL.
- Agite suavemente, parafilme os tubos de ensaio e incube-os anaerobicamente durante a noite a 42 °C por 12-16 h.
- Pegue cerca de 500 μL (0,5 mL) das culturas cultivadas durante a noite dos tubos de ensaio de 2 mL de MRS em tubos de ensaio frescos de 7 mL de MRS, em vórtice, e incube-os anaerobicamente durante a noite a 42 ° C por 12-16 h.
- Avaliar o crescimento microbiano medindo a densidade óptica (DO) ou o crescimento das culturas a 610 nm com um espectrofotómetro UV-visível e registando resultados aceitáveis entre 0,7 e 0,9.
- Risque as culturas noturnas dos tubos MRS de 7 mL em placas de ágar MRS e MRCM-PYR (meio clostridial reforçado modificado-piruvato) e incube-as anaeróbia por 72 h a 42 ° C.
- As colônias isoladas são colhidas das placas de ágar, transferidas para tubos de ensaio MRS frescos de 7 mL, suavemente vórtices e incubadas anaeróbia durante a noite a 42 ° C por 12-16 h.
- Conservar as placas de ágar-ágar contendo as estirpes isoladas a 4 °C no frigorífico durante uma semana.
- Meça e confirme a DO (entre 0,7 e 0,9) dos tubos de ensaio MRS de 7 mL das culturas LAB isoladas das placas estriadas a 610 nm e use-as como culturas de trabalho para todos os experimentos relacionados.
- Para obter uma proporção de 1:10, realize diluições de dez vezes (diluições em série) das culturas LAB cultivadas a partir dos tubos de ensaio MRS finais de 7 mL usando 9 mL de água peptonada (um tampão fisiológico).
- Finalmente, pegue cerca de 250 μL (0,25 mL) de diluições seriadas apropriadas para todos os experimentos de fermentação.
- Ativar o caldo contendo estirpes (250 μL) do passo 2.12, transferindo-os para um caldo fresco de 7 ml de MRS e incubando-os anaeróbios a 42 °C durante 16 h.
NOTA: Todas as cepas de L. bulgaricus foram ativadas no caldo MRS recém-preparado e foram então incubadas anaeróbia a 42 ° C por 16 h para atingir uma densidade óptica (OD610 nm) de crescimento bacteriano entre 0,7 e 0,9. O crescimento bacteriano foi medido com um espectrofotômetro UV-visível a 610 nm. Os valores de pH das culturas noturnas estavam na faixa de 3,5 a 5,3 como resultado da produção de ácido lático, um produto final orgânico da fermentação LAB. Procedimentos de segurança, como circulação adequada do fluxo de ar na capela de biossegurança e evitar queimaduras durante o uso do bico de Bunsen, foram respeitados e observados.