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1. Preparação de células bacterianas e almofadas inoculantes
- Meça a densidade óptica, OD600, de cada subcultura e dilua Pseudomonas aeruginosa para um OD600 = 0,03 e Staphylococcus aureus para um OD600 = 0,10 em M8T (Meio Mínimo 8 + triptona) pré-aquecido a 37 ° C. Misture P. aeruginosa e S. aureus em uma proporção de 1: 1 e vórtice.
NOTA: Se as cepas exigirem antibióticos, elas podem ser adicionadas à noite e à subcultura, mas não devem ser adicionadas ao misturar espécies para imagens se afetarem as outras espécies na cocultura. A estabilidade do plasmídeo e os efeitos dos antibióticos em todas as espécies na cocultura precisarão ser determinados para cada organismo / plasmídeo usado. - Pipetar 1 μL de cocultura uniformemente no fundo de uma lamínula de vidro pré-aquecida e estéril de 35 mm.
- Remova o recorte de silicone do molde usando uma pinça estéril.
- Remova a almofada do prato usando espátulas estéreis.
- Deslize a espátula ligeiramente dobrada sob a borda da almofada enquanto segura o molde de cabeça para baixo para soltá-lo em uma tampa estéril da placa de Petri.
NOTA: Não force a almofada para fora, ou ela rasgará. Acompanhe qual lado da almofada é a parte inferior.
- Transfira a almofada para o prato com as células bacterianas, com o lado inferior para baixo, deslizando a espátula em ângulo de 90° sob a almofada e colocando-a em cima da lamínula inoculada. Use a espátula angular de 90° para nivelar a almofada contra a lamínula e pressione suavemente as bolhas de ar.
- Remova o excesso de umidade dos lenços umedecidos e coloque-os ao redor da borda do prato, certificando-se de que não toquem na almofada. A amostra agora está pronta para geração de imagens.