1. Preparação de contas de vidro
- Coloque 100 contas de vidro de 3 mm de diâmetro em um frasco de laboratório de 100 mL e tampe-o bem.
- Autoclave o conteúdo a 120 °C por 10 min.
- Deixe a garrafa esfriar até a temperatura ambiente e coloque-a no gabinete de biossegurança.
2. Preparação do Caldo de Lisogenia (LB)
- Dissolva 8 g de pó de caldo LB-Lennox em um frasco de laboratório de 500 mL com 400 mL de água.
- Mexa o conteúdo com uma barra de agitação magnética de politetrafluoretileno (PTFE) por 20 min e, em seguida, tampe bem.
- Autoclave o conteúdo a 120 °C por 10 min.
- Deixe a solução esfriar até a temperatura ambiente e coloque-a no gabinete de biossegurança.
- Usando uma pipeta, alíquota do caldo em oito tubos de centrífuga de 15 mL (12,5 mL cada) na cabine de biossegurança.
- Aliquotar o caldo restante em três frascos de laboratório de 100 mL na cabine de biossegurança (100 mL cada). Tampe bem as três garrafas. Mantenha-os no gabinete de biossegurança.
3. Cultura de algas Shewanella
- Use a cepa criopreservada ultracongelada.
- No gabinete de biossegurança, retire 1 mL do material congelado do tubo congelado com uma espátula de aço inoxidável e coloque-o em um tubo de centrífuga preparado na etapa 3.5.
- Incubar as culturas durante 24 h numa incubadora a 37 °C.
4. Preparação de placas de Petri LB-Lennox (caldo com ágar)
- Dissolva dois comprimidos de LB-Lennox (caldo com ágar) em um frasco de laboratório de 100 mL com 100 mL de água.
- Mexa o conteúdo com uma barra de agitação magnética de PTFE por 20 min e tampe bem.
- Autoclave o conteúdo a 120 °C por 10 min.
- No gabinete de biossegurança, alíquota manualmente 100 mL de solução em 4 placas de Petri, garantindo que cada uma receba ~ 25 mL. Deixe a solução esfriar até a temperatura ambiente.
5. Preparação de bactérias monoclonais
- No gabinete de biossegurança, rotule os três frascos preparados nas etapas 2.6, #1, #2 e #3, respectivamente.
- Pipete 0,1 mL da suspensão bacteriana resultante na etapa 3.3 para o frasco #1. Tampe o frasco e balance-o manualmente por 1 min para obter uma solução homogênea.
- Pipete 0,1 mL do líquido bacteriano resultante na etapa 5.2 para o frasco #2. Tampe o frasco e balance-o manualmente por 1 min para obter uma solução homogênea.
- Pipete 0,1 mL do líquido bacteriano resultante na etapa 5.3 para o frasco #3. Tampe o frasco e agite-o com a mão por 1 min para obter uma solução homogênea.
- Pipete o líquido do frasco #3 nas 4 placas de Petri preparadas na etapa 4.4, usando um volume de 0,02 mL cada.
- Coloque as contas de vidro preparadas na etapa 1.3 nas 4 placas de Petri usadas, 4 contas em cada prato.
- Feche as tampas das placas de Petri e agite-as com a mão por 1 min.
- Vire as placas de Petri de cabeça para baixo e incube em uma incubadora a 37 °C por 24 h.
6. Multiplicação de bactérias monoclonais
- Pegue 7 tubos preparados na etapa 2.5.
- Retire as bactérias monoclonais resultantes das 4 placas de Petri preparadas na etapa 5.8 com uma espátula de aço inoxidável e coloque-as em 7 tubos separadamente.
- Deixe os 7 tubos em uma incubadora a 37 °C por 24 h.
- Escolha aquele com a maior dispersão de luz usando o método colorimétrico visual.