Artigo de método

Sincronização de cultura de cianobactérias e compactação de DNA impulsionadas por ciclos claro-escuro

30 de outubro de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Murata, K. et. al., Visualização da compactação de DNA em cianobactérias por tomografia crioeletrônica de alta voltagem. J. Vis. Exp. (2018)

Este vídeo demonstra o cultivo síncrono de cianobactérias sob ciclos claro-escuro para estudar a compactação do DNA regulada pelo circadiano. A microscopia de fluorescência revela DNA condensado em pontos de tempo definidos, confirmando o alinhamento do ciclo celular em toda a população.

Protocolo

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1. Cultura síncrona de cianobactérias

  1. Cultura de Synechococcus elongatus PCC 7942 em uma placa esterilizada de meio azul-esverdeado 11 (BG 11) (em uma placa de Petri plástica estéril de 9 cm) contendo 1,5% (p / v) de ágar e 0,3% (p / v) de tiossulfato de sódio.
  2. Colocar as placas numa câmara de crescimento a 23 °C com uma intensidade luminosa de 50 μE/m2/s e submetê-las a ciclos de 12 h de luz/12 h de escuridão.
  3. Transfira as células para placas de ágar BG11 frescas uma vez por semana.
    NOTA: As culturas no ágar aparecerão como faixas verdes de células em proliferação ativa após uma semana nessas condições de cultivo.
  4. Pegue aglomerados verdes de células com um laço de arame esterilizado por chama e listre as células em uma nova placa de ágar BG11. Faça isso em um banco limpo.

2. Monitoramento por microscopia de fluorescência

  1. Use células cultivadas na placa de ágar por 6 dias para observar a compactação do DNA. Colete as células da placa no final do período de luz, despejando 1 mL de solução de sacarose 0,2 M sobre as células. Repita derramando a solução nas células para que a maioria das células seja coletada. Transfira a solução de células suspensas para um microtubo para coloração de DNA.
  2. Adicione a solução de corante de coloração de DNA (por exemplo, Hoechst 33342) a 500 μL da solução de células suspensas em um microtubo até uma concentração final de 1 μg / mL. Em seguida, mantenha o tubo no escuro por 10 min.
  3. Centrifugue por 1 min a 2.000 x g para sedimentar as células. Rejeitar o sobrenadante e adicionar 10 μL de solução de sacarose 0,2 M para obter uma suspensão de células densas.
  4. Transfira 1 μL da solução contendo células coradas para um vidro de lâmina, coloque uma lamínula e observe com um microscópio de fluorescência equipado com um filtro ultravioleta (UV) usando uma lente objetiva com ampliação de 100X e óleo de imersão.
  5. Confirme se a compactação do DNA é observada neste ponto na maioria das células.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Solução Hoechst 33342Dojindo346-079511mg/mL em água
Ágar em pó (para cultura de plantas)Wako016-11875 
Ácido bóricoWako027-02192 
Cloreto de manganês tetra-hidratadoWako139-00722 
Sulfato de zinco heptahidratadoWako264-00405 
Molibdato de sódioWako196-02472 
Sulfato de cobre pentahidratadoWako039-04412 
Nitrato de cobalto hexahidratadoWako031-03752 
Nitrato de sódioWako191-02542 
Sulfato de magnésio heptahidratadoWako131-00405 
Cloreto de cálcio desidratadoWako031-00435 
Ácido cítricoWako036-05522 
EDTA-2NaDojindo343-01861 
Carbonato de sódioWako197-01581 
Fosfato de potássio dibásicoWako164-04295 
TES (buffer de Good)Dojindo344-02653 
Citrato férrico de amônioWako092-00802 
Tiossulfato de sódio pentahidratadoWako197-03585 
Microscópio fluorescenteNikonECLIPSE 50i 

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

Microscopia de Fluoresc nciaRegula o CircadianaSincroniza o CelularSuplementa o de TiossulfatoColora o com HoechstSolu o de SacaroseObjetiva de Imers o em leo

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