$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Cultura síncrona de cianobactérias
- Cultura de Synechococcus elongatus PCC 7942 em uma placa esterilizada de meio azul-esverdeado 11 (BG 11) (em uma placa de Petri plástica estéril de 9 cm) contendo 1,5% (p / v) de ágar e 0,3% (p / v) de tiossulfato de sódio.
- Colocar as placas numa câmara de crescimento a 23 °C com uma intensidade luminosa de 50 μE/m2/s e submetê-las a ciclos de 12 h de luz/12 h de escuridão.
- Transfira as células para placas de ágar BG11 frescas uma vez por semana.
NOTA: As culturas no ágar aparecerão como faixas verdes de células em proliferação ativa após uma semana nessas condições de cultivo. - Pegue aglomerados verdes de células com um laço de arame esterilizado por chama e listre as células em uma nova placa de ágar BG11. Faça isso em um banco limpo.
2. Monitoramento por microscopia de fluorescência
- Use células cultivadas na placa de ágar por 6 dias para observar a compactação do DNA. Colete as células da placa no final do período de luz, despejando 1 mL de solução de sacarose 0,2 M sobre as células. Repita derramando a solução nas células para que a maioria das células seja coletada. Transfira a solução de células suspensas para um microtubo para coloração de DNA.
- Adicione a solução de corante de coloração de DNA (por exemplo, Hoechst 33342) a 500 μL da solução de células suspensas em um microtubo até uma concentração final de 1 μg / mL. Em seguida, mantenha o tubo no escuro por 10 min.
- Centrifugue por 1 min a 2.000 x g para sedimentar as células. Rejeitar o sobrenadante e adicionar 10 μL de solução de sacarose 0,2 M para obter uma suspensão de células densas.
- Transfira 1 μL da solução contendo células coradas para um vidro de lâmina, coloque uma lamínula e observe com um microscópio de fluorescência equipado com um filtro ultravioleta (UV) usando uma lente objetiva com ampliação de 100X e óleo de imersão.
- Confirme se a compactação do DNA é observada neste ponto na maioria das células.