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1. Quantificação da localização polar e dinâmica de componentes Dot/ICM
NOTA: As etapas a seguir são projetadas para imagens com 0,129 μm por pixel que foram adquiridas com binning 2 x 2.
- Quantificação da polaridade para proteínas de fusão sfGFP (superpasta green fluorescent protein) (Figura 1)
- Ajuste o contraste da imagem para que as bactérias fiquem claramente visíveis. Use a ferramenta de região para colocar um retângulo de 0,25 x 1,3 μm2 começando no pólo e estendendo-se até o citoplasma. O retângulo deve permanecer precisamente dentro das bordas bacterianas.
- Marque pelo menos 200 bactérias e use o botão Região para mascarar para criar máscaras para as regiões de interesse. Em Estatísticas de máscara e Escopo da máscara, escolha Objeto. Em seguida, em Recursos e Intensidade, marque Intensidade Média e Variância.
- Exporte os dados e calcule os escores de polaridade de cada bactéria como a razão entre a variância e a intensidade média.
- Para aplicações de alto rendimento, use uma objetiva de fase e uma configuração de condensador apropriada para adquirir imagens com os canais de fase e 488 nm. Certifique-se de escolher campos de visão onde as bactérias estão totalmente separadas.
- Ajuste o contraste do canal de fase da imagem para um nível em que as bactérias sejam claramente visíveis. Abra a imagem de canal duplo, inicie a janela Criar máscara de segmento e altere o canal para fase.
- Ajuste um limite apropriado e remova objetos pequenos com o botão Definir objetos . Em Refinar máscara, escolha Remover objetos de bordas e, posteriormente, separe as máscaras de bactérias adjacentes umas às outras.
- Calcule as pontuações de polaridade do sinal no canal 488 para cada célula, conforme descrito anteriormente nas etapas 1.1.2 a 1.1.3.
- Quantificação da dinâmica para proteínas de fusão sfGFP (Figura 2)
NOTA: A dinâmica é definida como mudanças na intensidade ao longo do tempo, e as etapas a seguir são projetadas para curtos períodos de imagem (ou seja, vários minutos). Adicione à almofada os suplementos apropriados se desejar períodos de imagem mais longos.- Na janela Image Capture , marque Timelapse, insira o tempo dos intervalos na caixa de intervalo e insira 2 na caixa # de Pontos de Tempo . Adquira duas imagens sucessivas de Legionella pneumophila expressando a proteína fluorescente de interesse.
- Ajuste o contraste da imagem até que as células fiquem claramente visíveis. Siga a Figura 2A e as descrições abaixo para colocar três máscaras diferentes. Use a ferramenta de região para colocar um quadrado de 0,25 x 0,25 μm no meio de pelo menos 400 células.
- Use o botão Região para mascarar para criar uma máscara (máscara 1) dos quadrados de interesse. Crie uma nova máscara vazia (máscara 2) e use a ferramenta pixel ou a ferramenta polígono para marcar toda a área da célula de pelo menos 25 células aleatórias, que serão usadas para calcular o branqueamento de fluorescência. Crie uma nova máscara vazia (máscara 3) e use a ferramenta pincel grande para marcar áreas entre as células, que serão usadas para subtração de fundo.
- Em Estatísticas de máscara e Escopo da máscara, escolha Objeto para máscara 1 e máscara 2. Em seguida, em Recursos e intensidade, escolha Intensidade média e exporte os dados das duas máscaras. Para a máscara 3, exporte a intensidade média de toda a máscara.
- Calcule a mudança na intensidade de fluorescência para cada objeto na máscara 1 usando as seguintes fórmulas:


onde a máscara 1 é um quadrado de 0,25 μm × 0,25 μm colocado no centro da célula, a máscara 2 cobre toda a célula, a máscara 3 é o fundo entre as células, t1 é a intensidade média no primeiro ponto de tempo e t2 é a intensidade média no segundo ponto de tempo.