Este vídeo demonstra a purificação de uma proteína recombinante marcada com poli-histidina usando cromatografia de afinidade baseada em níquel. Ele descreve etapas importantes, incluindo lise bacteriana por sonicação, clarificação e filtração do lisato, e ligação seletiva e elução da proteína alvo usando imidazol.
Protocolo
1. Purificação do RTA marcado por Him via Cromatografia de Afinidade
Sonicar células no gelo usando o seguinte protocolo: pulso de 15 s (20 micrômetros), pausa de 30 s. Repita essa etapa cinco vezes.
Lisado de células centrífugas a 21.000 x g e 4 °C por 15 minutos e filtrar o sobrenadante usando um sistema de filtro de seringa estéril (poros de 0,2 μm). NOTA: Pellets celulares de amostras sonicadas com sucesso apresentam bordas transparentes.
Use um sistema automatizado de purificação equipado com uma coluna de afinidade baseada em Ni2+ de 5 mL para purificar a fração de RTA marcada com His do supernadante E. coli filtrado por estéril. Em geral, use uma velocidade de elução de 1 mL/min e resfrie todo o sistema de purificação para evitar a ligação ineficiente da toxina e a perda da atividade tóxica. NOTA: Os parâmetros para purificação eficiente de RTA estão listados na Tabela 1.
Resumidamente, equilibre a coluna de afinidade com 20 mL de buffer de ligação para remover o buffer de armazenamento. Aplique sobrenadante filtrado estéril na coluna de afinidade usando uma seringa.
Lave a coluna com 25-35 mL de tampão de ligação para remover as proteínas não ligadas da coluna. Realize a etapa de lavagem até que a absorção UV em 280 nm esteja próxima do valor inicial de UV.
Fração de RTA ligada a eluto em 20-35 mL de tampão de elução (500 mM imidazol, 500 mM NaCl, 20 mMKH 2PO4, pH = 7,2) e manter a amostra no gelo (Figuras 1A e Figura 1B). NOTA: A elução da fração RTA é marcada por um aumento na absorção de UV. Por favor, note que deve coletar exclusivamente essa fração para evitar contaminação com proteínas ligadas inespecíficas.
Tabela 1: Parâmetros usados para purificação de afinidade baseada em colunas e dessalinização. Lista de todas as configurações relevantes da coluna (por exemplo, vazão, concentração do tampão de elução, equilíbrio e duração da etapa de lavagem) e parâmetros medidos (por exemplo, condutância ou absorção de UV).
Parâmetro de cromatografia de afinidade
Parâmetros de medição
UV (280 nm), Concentração do tampão de elução, Condutância
Configurações
Variável/Unidade
Valor
Vazão
mL/min
1
Pressão máxima na coluna
Mpa
0.35
Comprimento de onda
Nm
280 milhas náuticas
Buffer de ligação
Posição da bomba
Um
Amortecedor de elução
Posição da bomba
B
Amortecedor de elução de concentração inicial
%
0
Compensação de volume do sistema
Ml
10
Equilíbrio em colunas
Ml
20
Injeção de amostra sobre superloop/seringa
Ml
Volume do lisado celular
Etapa de lavagem
Ml
20-35
Etapa de elução
Ml
20-35
Amortecedor de elução de concentração durante a elução
%
100
Recalibração da coluna com 20% de EtOH
Ml
50
Parâmetro de dessalinização
Parâmetros de medição
UV (280 nm), Condutância
Configurações
Variável/Unidade
Valor
Vazão
mL/min
4
Pressão máxima na coluna
Mpa
0.35
Comprimento de onda
Nm
280 milhas náuticas
Buffer de ligação
Posição da bomba
Um
Amortecedor de elução
Posição da bomba
B
Amortecedor de elução de concentração inicial
%
0
Compensação de volume do sistema
Ml
10
Equilíbrio em colunas
Ml
20
Injeção de amostra sobre superloop/seringa
Ml
Volume do lisado celular
Injeção tampão de dessalinização (sorbitol de 0,8 M)
Ml
100
Recalibração da coluna com 20% de EtOH
Ml
50
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Resultados
Figura 1: Cromatografia de afinidade representativa e resultados de dessalinização de células de E. coli contendo pET-RTA(His)6 ou o controle vetorial vazio. (A) Gráfico típico de purifi...
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