Artigo de método

Uma técnica de cromatografia de afinidade para a purificação de uma proteína bacteriana recombinante

28 de novembro de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Becker, B., et al. Um ensaio repórter simples baseado em fluorescência para identificar componentes celulares necessários para o tráfego da cadeia da toxina A da ricina (RTA) em leveduras. J. Vis. Exp. (2017).

Este vídeo demonstra a purificação de uma proteína recombinante marcada com poli-histidina usando cromatografia de afinidade baseada em níquel. Ele descreve etapas importantes, incluindo lise bacteriana por sonicação, clarificação e filtração do lisato, e ligação seletiva e elução da proteína alvo usando imidazol.

Protocolo

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1. Purificação do RTA marcado por Him via Cromatografia de Afinidade

  1. Sonicar células no gelo usando o seguinte protocolo: pulso de 15 s (20 micrômetros), pausa de 30 s. Repita essa etapa cinco vezes.
  2. Lisado de células centrífugas a 21.000 x g e 4 °C por 15 minutos e filtrar o sobrenadante usando um sistema de filtro de seringa estéril (poros de 0,2 μm).
    NOTA: Pellets celulares de amostras sonicadas com sucesso apresentam bordas transparentes.
  3. Use um sistema automatizado de purificação equipado com uma coluna de afinidade baseada em Ni2+ de 5 mL para purificar a fração de RTA marcada com His do supernadante E. coli filtrado por estéril. Em geral, use uma velocidade de elução de 1 mL/min e resfrie todo o sistema de purificação para evitar a ligação ineficiente da toxina e a perda da atividade tóxica.
    NOTA: Os parâmetros para purificação eficiente de RTA estão listados na Tabela 1.
    1. Resumidamente, equilibre a coluna de afinidade com 20 mL de buffer de ligação para remover o buffer de armazenamento. Aplique sobrenadante filtrado estéril na coluna de afinidade usando uma seringa.
    2. Lave a coluna com 25-35 mL de tampão de ligação para remover as proteínas não ligadas da coluna. Realize a etapa de lavagem até que a absorção UV em 280 nm esteja próxima do valor inicial de UV.
    3. Fração de RTA ligada a eluto em 20-35 mL de tampão de elução (500 mM imidazol, 500 mM NaCl, 20 mMKH 2PO4, pH = 7,2) e manter a amostra no gelo (Figuras 1A e Figura 1B).
      NOTA: A elução da fração RTA é marcada por um aumento na absorção de UV. Por favor, note que deve coletar exclusivamente essa fração para evitar contaminação com proteínas ligadas inespecíficas.

Tabela 1: Parâmetros usados para purificação de afinidade baseada em colunas e dessalinização. Lista de todas as configurações relevantes da coluna (por exemplo, vazão, concentração do tampão de elução, equilíbrio e duração da etapa de lavagem) e parâmetros medidos (por exemplo, condutância ou absorção de UV).

Parâmetro de cromatografia de afinidade  
Parâmetros de mediçãoUV (280 nm), Concentração do tampão de elução, Condutância 
ConfiguraçõesVariável/UnidadeValor
VazãomL/min1
Pressão máxima na colunaMpa0.35
Comprimento de ondaNm280 milhas náuticas
Buffer de ligaçãoPosição da bombaUm
Amortecedor de eluçãoPosição da bombaB
Amortecedor de elução de concentração inicial%0
Compensação de volume do sistemaMl10
Equilíbrio em colunasMl20
Injeção de amostra sobre superloop/seringaMlVolume do lisado celular
Etapa de lavagemMl20-35
Etapa de eluçãoMl20-35
Amortecedor de elução de concentração durante a elução%100
Recalibração da coluna com 20% de EtOHMl50
Parâmetro de dessalinização  
Parâmetros de mediçãoUV (280 nm), Condutância 
ConfiguraçõesVariável/UnidadeValor
VazãomL/min4
Pressão máxima na colunaMpa0.35
Comprimento de ondaNm280 milhas náuticas
Buffer de ligaçãoPosição da bombaUm
Amortecedor de eluçãoPosição da bombaB
Amortecedor de elução de concentração inicial%0
Compensação de volume do sistemaMl10
Equilíbrio em colunasMl20
Injeção de amostra sobre superloop/seringaMlVolume do lisado celular
Injeção tampão de dessalinização (sorbitol de 0,8 M)Ml100
Recalibração da coluna com 20% de EtOHMl50

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Resultados

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Figura 1: Cromatografia de afinidade representativa e resultados de dessalinização de células de E. coli contendo pET-RTA(His)6 ou o controle vetorial vazio. (A) Gráfico típico de purifi...

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Espectrofotômetro Ultrospec 2100 proAmersham  
Soniprep 150MSE Modelo antigo, outros modelos disponíveis
Ascensão FluoroskanTermo Científica5210470Modelo antigo, não está mais disponível
ÄKTAPurifierTermo Científica28406266O produto é descontinuado e substituído
Coluna HP do HisTRAPGE Healthcare17-5248-02 
Coluna de dessalgamento HiTRAPGE Healthcare11-0003-29 
Filtro estéril MidisartSartorius16534KTamanho de poros de 0,2 μm
Kit de ensaio proteico BCAFurar23225 
Kit de ensaio de 660 nmTermo Científica22660 
Placas de 96 poçosTermo Científica260860 

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