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Análise precisa e de alta capacidade do crescimento bacteriano usando um leitor de microplacas

November 28th, 2025

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Abstract

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Fonte: Kurokawa, M., et al. Análise precisa e de alta produtividade do crescimento bacteriano. J. Vis. Exp. (2017)

Este vídeo demonstra a quantificação de alto rendimento do crescimento bacteriano usando um leitor de microplacas. Ele descreve as etapas envolvidas na preparação da cultura, medição de densidade óptica e análise da dinâmica do crescimento.

Protocol

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Registro em tempo real do crescimento
    1. Desenhe um pictograma de placa de 96 poços (tabela 8 × 12) para indicar as posições das amostras de cultura inoculadas na placa de 96 poços. Imprima a tabela e use-a como referência para o experimento.
      NOTA: Os poços localizados nas bordas da microplaca devem conter apenas meio em branco devido à evaporação.
    2. Coloque uma microplaca esterilizada de fundo plano de 96 poços com tampa, pontas de pipeta P-1000 e 1000 μL, pontas de pipeta P-200 e 200 μL, vários microtubos de 1,5 mL, uma pipeta multicanal de 8 canais, um reservatório de reagente esterilizado, M63 em temperatura ambiente e os estoques de glicerol de Escherichia coli em uma bancada limpa.
    3. Adicione aproximadamente 25 mL de M63 ao reservatório do reagente. Use este estoque de reservatório para todas as etapas a seguir.
    4. Adicione 900 μL de M63 aos microtubos em preparação para a realização de diluições seriadas.
    5. Descongele o estoque de glicerol em temperatura ambiente. Adicione 900 μL de M63 ao estoque de glicerol descongelado e ao vórtice. Isso resulta em uma diluição de 10 vezes o estoque original de glicerol.
    6. Transfira 100 μL da diluição de 10 vezes para outro microtubo contendo 900 μL de M63 e vórtice. Isso resulta em uma diluição de 100 vezes.
    7. Repita o passo 1.6 até atingir o número desejado de diluições.
    8. Preencha os poços na borda da microplaca com 200 μL M63 usando uma pipeta de 8 canais (P-200).
      NOTA: Esses poços podem ser usados como blank.
    9. Carregue 200 μL de cada amostra diluída preparada nos passos 1.4 - 1.7 para os poços de microplacas de acordo com a tabela de referência (passo 1.1). Faça vórtice nas amostras diluídas antes de carregar e carregue a mesma amostra em múltiplos poços em locais variados na placa.
    10. Coloque a microplaca de 96 poços no leitor de placa.
    11. Abra "Leia Agora" no "Gerenciador de Tarefas" e escolha o programa. Clique em "OK" para começar a medir. Salve a gravação como um novo arquivo experimental para análise de dados.

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Fosfato de dipotássioWako164-04295 
Fosfato de monopotássioWako166-04255 
Sulfato de amônioWako019-03435 
Sulfato de magnésio heptahidratadoWako138-00415 
Tiamina-HClWako201-00852 
GlicoseWako049-31165 
HclWako080-01066 
Sulfato de ferro (II) heptahidratadoWako094-01082 
KOHWako168-21815 
GlicerolWako075-00611 
Pontas de pipeta, 200 μLWATSON110-705Y 
Pontas de pipeta, 1.000 μLWATSON110-8040 
Microtubo (1,5 mL)WATSON131-715C 
8 pipeta multicanalWATSONNT-8200 
Agitador PasorinaCOMO UM SÓ2-4990-02 
Cilindro de vidro (200 mL)COMO UM SÓ1-8562-07 
Medidor de pH de precisãoCOMO UM SÓAS800 / 1-054-01 
Pipetman P-200GILSON1-6855-05 
Pipetman P-1000GILSON1-6855-06 
Suporte para microtubosBiografia da BM801-02Y 
VórticeBiografia da BMBM-V1 
Microplaca Corning Costar de 96 poços com tampa (fundo plano, transparente)Sigma-AldrichCorning, 3370 
Reservatório de reagente Corning Costar (50 mL)Sigma-AldrichCorning, 4870 
EPOCH2BioTek2014-EP2-002 / EPOCH2T 
Bancada limpa de BIOPanasonicMCV-B131F 
Cepas bacterianasOrganização de bancos de cepa; Projeto Nacional de Recursos Biológicos (NBRP) no Japão  

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Bacterial GrowthMicroplate ReaderOptical DensitySerial DilutionCulture PreparationGrowth Rate AnalysisHigh Throughput QuantificationM63 Media96 Well PlateData Analysis

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