Saponina permeabilizadas preparação de fibras em conjunto com a análise de fosforilação oxidativa fornece respirométrico de avaliação integrada da função mitocondrial. Respiração mitocondrial em estados fisiológicos e patológicos pode refletir várias influências regulamentares, incluindo as interações mitocondrial, morfologia e bioquímica.
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Artigo de método
Avaliação fosforilação oxidativa respirométrico em saponina-fibras cardíacas permeabilizadas
Neste artigo
Resumo
Resumo
Investigação da função mitocondrial representa um parâmetro importante da fisiologia cardíaca, como as mitocôndrias estão envolvidas no metabolismo energético, estresse oxidativo, apoptose, envelhecimento, Encefalomiopatias mitocondriais e toxicidade de drogas. Diante disso, tecnologias para medir a função mitocondrial cardíaca estão na demanda. Uma técnica que emprega uma abordagem integrativa para medir a função mitocondrial é respirométrico fosforilação oxidativa análise (OXPHOS).
O princípio da avaliação OXPHOS respirométrico é centrado em torno de medir a concentração de oxigênio utilizando um eletrodo de Clark. À medida que o feixe de fibras permeabilizadas consome oxigênio a concentração de oxigênio, no declínio câmara fechada. Usando protocolos selecionados substrato inibidor desacoplador-titulação, os elétrons são fornecidos para sites específicos da cadeia de transporte de elétrons, permitindo a avaliação da função mitocondrial. Antes da análise da função mitocondrial respirométrico, mecânica e química técnicas de preparação são utilizados para permeabilizar o sarcolema das fibras musculares. Permeabilização química emprega saponina para seletivamente perfurar a membrana celular, mantendo a arquitetura celular.
Este artigo descreve minuciosamente os passos envolvidos na preparação saponina de pele fibras cardíacas para medições de consumo de oxigênio para avaliar OXPHOS mitocondrial. Além disso, solução de problemas conselhos, bem como substratos específicos, inibidores e desacopladores que podem ser usados para determinar a função da mitocôndria em locais específicos da cadeia de transporte de elétrons são fornecidos. Importante, o protocolo descrito podem ser facilmente aplicadas ao tecido cardíaco e esquelético de vários modelos animais e amostras humanas.
Protocolo
1. Preparação do Reagente
- A solução de relaxamento e de preservação (RP Solution) é preparada como descrito anteriormente, com pequenas modificações 1. Resumidamente, a solução consiste em RP 2.77mM CAK EGTA 2, K 2 7.23mM EGTA, imidazol 20mM, ditiotreitol 0,5 mM, taurina 20mM, 50mM K-MES, 6,56 MgCl 2, 5,7 ATP, fosfocreatina 14.3mm, pH 7,1, ajustado à temperatura ambiente (RT). Filtrar a solução através de um filtro 0,45 mM para esterilizar. Divida em 15 porções mL (tubos Falcon de polipropileno) e armazenar a -20 ° C Veja a discussão para as receitas.
- A Solução respirometria mitocondrial (MiR05) é preparado como descrito anteriormente 2 e contém 0,5 mM EGTA, MgCl 3mM 2 .6 H 2 O, taurina 20mM, 10mM KH 2 PO 4, HEPES 20mM, 1g / L BSA, 60mm de potássio lactobionato, 110mm pH de sacarose, 7,1, ajustado a 30 ° C. Filtrar a solução através de um filtro 0,45 mM para esterilizar. Divida em 50 porções mL (tubos Falcon de polipropileno) e armazenar a -20 ° C. Veja a discussão para as receitas. O fator de solubilidade do oxigênio para MiR05 a 30 ° C e 37 ° C é de 0,92 3.
2. Preparação dos tecidos
A. Cardiac fibras preparação mecânica
- Procedimentos foram aprovados pela Universidade de Calgary e Animal Care Use Comitê e respeitar a Associação Canadense de orientações Laboratory Animal Science for experimentação.
- Deslocamento cervical para imobilizar o rato é o método preferido. Alternativamente, intraperotineal injeção (IP) de ketamina e xilazina (80 e 10mg/kg, respectivamente) ou 0,5 mg de pentobarbital sódico pode ser administrado. Nota: pentobarbital sódico é um inibidor reversível da NADH desidrogenase (complexo I) 4.
- Remover o coração e colocá-lo em uma placa de Petri contendo a solução de RP no gelo (Figura 1A). Remova cuidadosamente qualquer tecido conjuntivo e / ou gordura usando um microscópio de dissecação.
- Cortar o coração pela metade ao longo do septo. Excise peso de 10-25mg molhado (ww) de tecido, cortando a partir da superfície do endocárdio do ventrículo esquerdo (Figura 1B). Garantir a incisão é ao longo da orientação das fibras para minimizar os danos mecânicos ao miocárdio.
- Coloque o dissecados subamostra, de tecido em um prato separado petri contendo a solução de RP no gelo. Usando um microscópio de dissecção cortar o coração em tiras longitudinal ao longo de orientação das fibras com um diâmetro de 1-1.5mm.
- Encurtar as tiras com um bisturi para comprimentos de 2-4mm (Figura 1C).
- Extremo cuidado e usando uma pinça afiada feixes de fibras mecanicamente separada. Feixes de fibras final deve conter um máximo de 6-8 fibras, ligados por pequenas áreas de contato, pesando não mais que 5mg ww. Fibras cardíacas de 1-3mg ww são recomendados. Visualmente, o tecido cardíaco deve mudar de vermelho original para uma coloração rosa pálido (Figura 1D).
B. Cardiac fibra preparação química feixes
- Colocar uma placa de 12 bem no gelo.
- Enxágüe bem o (s) com RP solução para minimizar a contaminação de cálcio 5.
- Transferir os feixes de fibras mecanicamente preparados para um poço contendo 3mL solução RP gelada com 50ug / mL saponina. Nota: A concentração de saponina não depende da quantidade de músculo cardíaco presente na solução.
- Incubar por 20 minutos com agitação leve no gelo.
C. Cardiac lavar Bundle Fiber
- Enxágüe com um novo poço MiR05 para minimizar a contaminação de cálcio 5.
- Transferir os pacotes cardíaca para o novo poço contendo 10 ml gelada MiR05. Incubar por 10 minutos com agitação leve no gelo.
- Repita (1-2) 2-3 vezes com MiR05 fresco. Os passos de lavagem repetitivos são para garantir a remoção ou saponina, ATP, ADP e qualquer substratos remanescentes de feixes de fibras.
D. determinação do peso úmido
- Diretamente antes da análise respiratória, peso úmido é obtido pela blotting os feixes de fibras individuais (1-3mg ww) sobre uma superfície absorvente (papel filtro) usando uma pinça e segurando a fibra para a superfície para 5s ou até que toda a umidade é mau de distância.
- Usando uma outra superfície absorvente, remova o excesso de líquido do fórceps.
- Tara a escala e coloque o feixe de fibras em um plástico pesam barco para medição de massa.
- Transferir o feixe de fibras cardíacas de um novo poço com gelado MiR05. O feixe de fibras está pronto para a avaliação de consumo de oxigênio.
3. Análise OXPHOS respirométrico
A. Equipamentos respirométricos
- O laboratório utiliza e recomenda uma de duas câmaras oxygraph titulação de injeção (Oroboros Oxygraph2-k, Oroboros Instruments). O Oxygraph 2-k oferece respirometria de alta resolução em grande parte pela utilização de hardware e software instrumental (DatLab) que minimiza o fundo instrumental que contribuem paraconsumo de artefatos de oxigênio.
- Calibração do oxygraph é um passo essencial para minimizar os efeitos de confusão de consumo de oxigênio instrumental. Calibração varia ligeiramente, dependendo da oxygraph. Consulte o manual do usuário oxygraph para procedimentos específicos.
B. Qualidade Representante Protocolo de Validação de Controle / Técnica
- Garantir MiR05 foi adicionado ao oxygraph habitação câmaras os sensores de oxigênio polarográfico (POS) e dar o tempo adequado para a saturação do ar e equilíbrio do MiR05 a 37 ° C antes de colocar as fibras cardíacas murino para as câmaras oxygraph.
- As amostras das fibras cardíacas são colocados na MiR05 agitado das câmaras oxygraph. Nota: Certifique-se de agitar as barras são PVDF ou PEEK revestido bares agitador (6mm diâmetro).
- Usando uma seringa cheia de oxigênio, aumentar a concentração de oxigênio das câmaras oxygraph a 250-550uM. Note-se que a concentração de oxigênio é limitante para a preparação de fibras permeabilizadas em até 50% acima de saturação do ar 6. Permitir 5-10min para a estabilização de concentração de oxigênio.
- Usando um micro-Hamilton 25μL, 10μL de glutamato adicionar 2M e 5μL de 800mm malato para obter uma concentração final de 10mM e 2mm, respectivamente. Essas titulações permitir a determinação do complexo basal I-suportado respiração (estado 2; ausência de ADP). Fluxo de oxigênio deverá estabilizar dentro de aproximadamente 5min de titulação. Preparação adequada deve fornecer muito reprodutíveis Estado consumo de oxigênio 2.
- Após 2-5min de consumo de oxigênio estável, adicionar 20μL de ADP 500mM para uma concentração final de 5mM (saturação), utilizando uma micro Hamilton 25μL, para a respiração (estado 3) máxima mitocondrial através de estudos complexos I. Poucos usar esta alta de uma concentração da ADP, no entanto, é importante notar que a saturação superior a 90% só é atingida em concentrações acima de 7 5mm.
- Após 2-5min de consumo de oxigênio estável, adicione 5μL de 4mm citocromo c para obter uma concentração final de 10μM, usando uma micro Hamilton 10μL, para análise de controle de qualidade da membrana mitocondrial externa (OMM) integridade.
- Após 2-5min de consumo de oxigênio estável, adicione 1μL de 4mg / oligomicina mL, utilizando uma micro Hamilton 10μL, para inibir a ATP sintase. Esta etapa vai oferecer titulação validação de intacto membrana interna da mitocôndria.
- Após a avaliação OXPHOS respirométrico. A amostra é retida para o peso seco ou determinação do marcador mitocondrial.
- Remover MiR05 das câmaras de vidro do oxygraph. Lavar as câmaras de pelo menos três vezes com água destilada (DDH 2 O).
- Lavar as câmaras de pelo menos três vezes com etanol 100% (EtOH) para remover EtOH solúvel inibidores tais como oligomicina.
- Lavar as câmaras com 70% EtOH três vezes com o final de EtOH 70% lavar 30min duradoura para esterilizar as câmaras oxygraph.
- Antes da adição de MiR05 para o protocolo de titulação experimental garantir as câmaras que contêm o POS são lavados pelo menos cinco vezes com DDH 2 O.
- Da titulação de validação pode ser realizada como um protocolo individual (Figura 2) ou da titulação podem ser incluídos em um protocolo de titulação bem planejada de acordo com os objectivos experimentais e de diagnóstico dos estudos de respirometria.
4. Resultados representativos:
Consumo de oxigênio em devidamente preparado murino fibras cardíacas é avaliada pelo protocolo de controle de qualidade como mostrado na Figura 2. Figuras 3-5 fornecem exemplos comumente encontrados de forma incorreta preparado fibras cardíacas. A relação de controle respiratório (RCR) representa um índice importante na respirometria. Este parâmetro indica o acoplamento entre o consumo de oxigênio ea fosforilação oxidativa. Em preparações de fibras permeabilizadas, a RCR é a taxa de respiração em estado relativo 3 para o estado 2 estado 3 ou, alternativamente, sobre o estado 4 (induzida por oligomicina e / ou Atractilosídeo, ATR). Além disso, RCR pode ser usado como um marcador de garantia de qualidade e pode identificar alterações no acoplamento resultantes das intervenções experimentais ou patológicas 5. Bem-coupled permeabilizadas murino preparações cardíacas produzir um RCR entre 3-6, dependendo da solução de incubação utilizada 1, 8, 9.
A titulação do citocromo c é usado como uma validação de preparação adequado dos tecidos. Citocromo c é uma proteína localizada no espaço intermembranar na membrana mitocondrial interna 10. Quando a membrana externa da mitocôndria está intacta, o citocromo c endógena permanece no espaço intermembranar ea titulação de exógenos citocromo c tem um efeito insignificante sobre a respiração (Figura 2). Se a membrana externa da mitocôndria está danificado, o endógeno citocromo c pode ser liberado a partir do espaço intermembranar e vai inibir a respiração até exógenos citocromoc adição (Figura 3). Preparação adequada deve experimentar apenas uma ligeira elevação no fluxo de oxigénio na sequência do citocromo c além na faixa de 5-15% 5. Além disso, esta titulação experimental permite a avaliação da influência do estressor patológica ou experimental sobre intacto membrana mitocondrial externa. Se um citocromo c efeito é experiente, assegurar os cuidados durante a preparação mecânica do tecido e / ou reduzir a concentração de saponina.
A adição de oligomicina e / ou ATR é utilizado para avaliar alterações na respiração fugas; consumo de oxigênio não contribuindo para a ADP fosforilação 11. Além disso, esta etapa de titulação pode ser usado como uma validação de preparação de amostras adequadas. Fibras de controle ou do tipo selvagem deve ser sensível a esta adição e experimentar uma redução significativa no fluxo de oxigênio. A RCR baixo e reduzida sensibilidade à oligomicina e / ou ATR, resultando em um fluxo de oxigênio relativamente elevada indica dano à membrana mitocondrial interna durante a preparação (Figura 4). Dano é provavelmente induzida durante a separação mecânica das fibras cardíacas, como a membrana mitocondrial interna é menos suscetível a insultar por saponina em relação à membrana mitocondrial externa. No entanto, tanto a preparação mecânica e química pode ter de ser ajustada em conformidade, para evitar mal preparada fibras cardíacas 5, 12.
Os feixes de fibra saponina de pele de ratos não devem permanecer na solução de RP por mais de 6h ou a solução MiR05 por mais de 2h. Falta de resposta ao substrato inibidor desacoplador-titulações como visto na Figura 5 podem ser indicativos de períodos de incubação prolongada. Esforços subseqüentes deve minimizar os períodos entre o sacrifício de animais e medição do consumo de oxigênio.
Figura 1. Preparação mecânica de murino feixes de fibras cardíacas. A. dissecção O coração inteiro imediatamente seguinte. B. A amostra de 10-25mg do ventrículo anterior esquerda. C. tecido cardíaco separados em um milímetro de diâmetro e tiras de 2-4mm de comprimento. D. final feixes de fibras cardíacas pronto para permeabilização química com saponina.
Figura 2. Os resultados representativos de preparação adequado dos tecidos, utilizando avaliação polarográfico. O estado de fluxo de oxigênio 2 é suportado pelo complexo I substratos glutamato e malato (M / G) e é significativamente estimulada após a adição de ADP (estado 3). Nenhum efeito estimulador do exógenos além citocromo c indica a membrana mitocondrial externa está intacta. Sensibilidade do consumo de oxigênio para oligomicina sugere a integridade da membrana mitocondrial interna está intacta. Concentração de oxigênio em uma câmara fechada 2 mL é identificado pela linha azul. Consumo de oxigênio da amostra de tecido cardíaco em uma câmara fechada 2 mL é representada pela linha vermelha. Malato e glutamato, M / G; adenosina difosfato, a ADP; citocromo c, Cyto c; oligomicina, o.
Figura 3. Citocromo c teste de validação efeito utilizando avaliação polarográfico. O estado de fluxo de oxigênio 2 é suportado pelo complexo I substratos glutamato e malato (M / G) e é significativamente estimulada após a adição de ADP (estado 3). Efeito estimulante do exógenos além citocromo c indica a integridade da membrana externa mitocondrial é comprometida. Concentração de oxigênio em uma câmara fechada 2 mL é identificado pela linha azul. Consumo de oxigênio da amostra de tecido cardíaco em uma câmara fechada 2 mL é representada pela linha vermelha. Malato e glutamato, M / G; adenosina difosfato, a ADP; citocromo c, Cyto c.
Figura 4. Mitocondrial interna da membrana teste de validação de integridade utilizando avaliação polarográfico. O estado de fluxo de oxigênio 2 é suportado pelo complexo I substratos glutamato e malato (M / G) e um estímulo relativamente fraca do consumo de oxigênio após a adição de ADP (estado 3). Pouca sensibilidade do consumo de oxigênio para oligomicina sugere a membrana mitocondrial interna é danificada. Concentração de oxigênio em uma câmara fechada 2 mL é identificado pela linha azul. Consumo de oxigênio da amostra de tecido cardíaco em uma câmara fechada 2 mL é representada pela linha vermelha. Malato e glutamato, M / G; adenosina difosfato, a ADP oligomicina, o.
Figura 5. Polarográfico seguinte avaliação de incubação prolongada em MiR05. Consumo de oxigênio é insensível à adição exógena de glutamato e malato (M / G) e consumo de oxigênio após a adição de ADP (estado 3) é reduzida. Não há efeito estimulante do exógenos além citocromo c e insensibilidade do consumo de oxigênio para oligomicina é experiente. Falta de resposta a adições para a solução de incubação extramitochondrial sugere estabilidade funcional mitocondrial é comprometida. Concentração de oxigênio em uma câmara fechada 2 mL é identificado pela linha azul. Consumo de oxigênio da amostra de tecido cardíaco em uma câmara fechada 2 mL é representada pela linha vermelha. Malato e glutamato, M / G; adenosina difosfato, a ADP; citocromo c, Cyto c.
1. Notas: Preparação do Reagente
Preparação de K 2 Solução stock EGTA 100mM
| Nome do reagente | Concentração Final (mM) | g/100 mL H 2 O |
| Etilenoglicol-bis-(2-aminoethylether) - N, N, N ', N'-tetraacetic ácido (EGTA) | 100 | 3,805 |
| Hidróxido de potássio (KOH) | 200 | 1,15 |
Nota: Ajuste o pH para 7,4 em temperatura ambiente.
Preparação de Ca 2 Solução stock EGTA 100mM
| Nome do reagente | Concentração Final (mM) | g/100 mL H 2 O | Comentários (opcional) |
| Etilenoglicol-bis-(2-aminoethylether) - N, N, N ', N'-tetraacetic ácido (EGTA) | 100 | 3,805 | Calor a 80 ° C e mexa suavemente. |
| Carbonato de Cálcio (CaCO 3) | 100 | 1,001 | A concentração de cálcio deve ser preciso como o cálcio regula a função das organelas diversos, incluindo as mitocôndrias. Garantir a solubilização completa de todos os CaCO 3. A solução final deve ser completamente transparente. CaCO 3 é inicialmente misturado com EGTA e um pouco de água para ativar a formação de ácido carbônico e evaporação CO 2. Esta reação pode ser acelerada por aquecimento até 80 ° C. |
| Hidróxido de potássio (KOH) | 200 | 1,15 | Neutralize com KOH após a evaporação do CO 2 é concluída. |
Nota: Ajuste o pH para 7,4 em temperatura ambiente.
Preparação de Relaxamento e solução de preservação (Solução RP) 1
| Reagente | Concentração Final (mM) | Por litro | Comentários |
| K 2 EGTA | 7,23 | 72,3 mL | |
| CAK 2 EGTA | 2,77 | 27,7 mL | |
| Imidazol | 20 | 1.36g | |
| Ditiotreitol | 0,5 | ||
| Taurina | 20 | 2.52g | |
| Adenosina 5'-trifosfato de hidrato de sal dissódico (ATP) | 5,7 | 3.14g | |
| Fosfocreatina (PCr) | 14,3 | 4,0 G | |
| Cloreto de magnésio (MgCl 2) | 6,56 | 0.624g | |
| K-MES | 50 | 14.0g |
Nota: Ajuste o pH para 7,1 em temperatura ambiente
Preparação da solução respirometria mitocondrial (MiR05 Solution) 2
| Reagente | Concentração Final (mM) | Por litro | Comentários (opcional) |
| Etilenoglicol-bis-(2-aminoethylether) - N, N, N ', N'-tetraacetic ácido (EGTA) | 0,5 | 0.190g | Usado como um quelante de cálcio |
| Magnésio hexa-hidratado (MgCl 2 .6 H 2 O) | 3,0 | 0.610g | A qualidade da preparação de fibras não podem ser testadas sem Mg 2 +. |
| Taurina | 20,0 | 2.502g | A taurina é um estabilizador de membrana e antioxidante. 20mM é a concentração intracelular presente no coração. |
| Fosfato de potássio monobásico (KH 2 PO 4) | 10,0 | 1.361g | |
| 20,0 | 4.77g | ||
| Potássio lactobionato | 60,0 | 120 mL de 0,5 M K-lactobionato estoque | Ações K-lactobionato 0.5M: Add 35,83 g de ácido lactobiônico a 100 mL H 2 O e pH para 7,0 em temperatura ambiente. Ajustar o volume para 200 mL com DDH 2 O. Utilizado para replicar a concentração intracelular de K + alta. KCl foi utilizado anteriormente, no entanto, a alta Cl-quinase inibe a função mitocondrial da creatina. |
| Sacarose | 110,0 | 37.65g | Usado como um limpador ROS. |
| Albumina de soro bovino (BSA) | 1g / L | 1g | Usado como uma membrana estabilizador, antioxidante e quelante de cálcio e de ácidos graxos livres. |
Nota: Ajuste o pH para 7,1 a 30 ° C
3. Notas: Análise OXPHOS respirométricos
Substratos B. Select, desacopladores e inibidores
Lista de selecionados para análise Substratos respirometria mitocondrial
| Substrato | [Material] | Preparação | Volume por 2 mL | [Final] | Comentários |
| Adenosina 5'-difosfato di-sal monopotássico (ADP) | 500mM | 246mg / mL DDH 2 O. Ajustar o pH para 7,1 em temperatura ambiente. Armazenar a -80 ° C em 250 mL alíquotas. | 20ul | 5mM | Para manter constante Mg 2 + + durante experimentos de respirometria adicionar 0,6 mol MgCl 2 / mol ADP. |
| Ascorbato | 800mm | 0.1584g / mL DDH 2 O. Armazenar a -20 ° C em 200 mL alíquotas. Sensível à luz | 5 mL | 2mM | Atua como substrato quando utilizado em paralelo com TMPD. Deve corrigir para o fluxo de oxigênio para auto-oxidação. |
| Citocromo C | 4mM | 50mg / mL DDH 2 O. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. | 5 mL | 10um | |
| Carbonil cianeto p (trifluoromethoxy) phenylhydrazone (FCCP) | 0,1 mM | 0.254mg/10 mL EtOH 100%. Loja em frascos de vidro a -20 ° C em 500 mL alíquotas. | Passos de 1 mL | Age como um desacoplador. Determina a capacidade máxima de transporte de elétrons e qualquer limitação de transporte de elétrons pelo sistema de fosforilação. | |
| Glutamato | 2M | 0.3742g / mL DDH 2 O. Ajustar o pH para 7,1 em temperatura ambiente. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. | 10ul | 10mM | Atua como um substrato para a NADH desidrogenase (complexo I). |
| Malato | 800mm | 0.1073g / mL DDH 2 O. Ajustar o pH para 7,1 em temperatura ambiente. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. | 5ul | 2mM | Atua como um substrato para a NADH desidrogenase (complexo I). Não pode sustentar a respiração sozinho. |
| Piruvato | 1M | 11mg/0.1 mL DDH 2 O. Prepare fresco. | 5 mL | 2,5 mm | Atua como um substrato para a NADH desidrogenase (complexo I). |
| Succinato | 1000mm | 1.3505g / 5 mL DDH 2 O. Ajustar o pH para 7,1 em temperatura ambiente. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. | 20ul | 10mM | Atua como um substrato para succinato desidrogenase (complexo II). |
| N, N, N ', N'-tetrametil- pphenylenediamine Dicloridrato de (TMPD) | 200mM | 47.1mg / mL DDH 2 O. Adicionar ascorbato 0.8M a concentração final de 10mM para evitar auto-oxidação Armazenar a -20 ° C em 200 mL alíquotas. | 5 mL | 0,5 mM | Auto-oxidação da solução de reserva evidente pelo aparecimento de coloração azul. Atua como substrato quando utilizado em paralelo com TMPD. Deve corrigir para o fluxo de oxigênio para auto-oxidação. |
Inibidores da lista de selecionados para análise mitocondrial respirometria
| Substrato | [Material] | Preparação | Volume por 2 mL Câmara | [Final] | Comentários |
| A Antimicina | 5mM | 27.4mg/10 mL EtOH 100%. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. | 1 mL | 2.5μM | Inibidor da coenzima Q: citocromo c oxidorredutase (complexo III) |
| Atractilosídeo | 50mM | 40mg / mL DDH 2 O. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. | 30 mL | 0.75mm | Inibidor da ATP sintase. |
| Oligomicina | 4mg / mL | 4mg / mL EtOH 100%. Armazenar a -20 ° C em 200 mL alíquotas. | 1 mL | Inibidor da ATP sintase. | |
| Cianeto de potássio | 1M | 65.1mg / mL DDH 2 O. Prepare fresco. Ajustar o pH para 7,1 em RT | 1 mL | 1mM | Inibidor do citocromo c oxidase (complexo IV). Utilize TMPD seguinte e titulação ascorbato de acesso auto-oxidação. |
| Rotenona | 0,1 mM | 0.39mg/10 mL EtOH 100%. Armazenar a -20 ° C em 250 mL alíquotas. Sensível à luz. | 1 mL | 0.05μM | Inibidor da desidrogenase NADH (complexo I). Concentrações mais elevadas podem ser necessárias, no entanto, para reduzir a retenção de rotenona na câmara de começar como descrito. |
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Discussão
A saponina técnica das fibras cardíacas permeabilizadas oferece um compromisso único entre in vitro e in vivo de avaliação do consumo de oxigênio mitocondrial OXPHOS. Vantagens desta técnica incluem o aumento da relevância fisiológica em comparação com mitocôndrias isoladas como arquitetura celular é preservada. Enquanto a membrana plasmática é degradado, as estruturas de membrana intracelular, incluindo 12 mitocôndrias, 14, retículo sarcoplasmático 14, miofilamentos eo citoesquel...
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Divulgações
Não há conflitos de interesse declarados.
Agradecimentos
Este estudo foi financiado pelos Institutos Canadenses de Pesquisa em Saúde e Canadá Genoma. JS realiza premiação salário apoio da Heritage Foundation Alberta para a investigação médica, Heart and Stroke Foundation of Canada e da Associação de Diabetes do Canadá. O laboratório gostaria de agradecer a assistência técnica de instrumentos Oroboros durante a aquisição da técnica de fibra saponina permeabilizadas.
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Etanol a 100% | Fisher Scientific | HC600 | |
| Etanol 70% | Fisher Scientific | HC-1000 | |
| Adenosina 5′sal monopotássico de difosfato diidratado (ADP) | Sigma-Aldrich | A5285 | |
| Albumina de soro bovino essencialmente livre de ácidos graxos–gratuito | Sigma-Aldrich | A-6003 | |
| Antimicina A | Sigma-Aldrich | A8674 | |
| Ácido ascórbico | Sigma-Aldrich | A4403 | |
| Adenosina 5′cloreto de trifeniltetrazólio (TTC) | Sigma-Aldrich | A2383 | |
| Atractilosídeo | Sigma-Aldrich | A6882 | |
| Carbonato de cálcio | Sigma-Aldrich | C4830 | |
| Carbonyl cianeto p-(trifluorometoxi) fenilhidrazone (FCCP) | Sigma-Aldrich | C2920 | |
| Citocromo c | Sigma-Aldrich | C7752 | |
| Digitonina | Sigma-Aldrich | D141 | |
| Ditiotreitol | Sigma-Aldrich | D9779 | |
| Etilenoglicol-bis-(2-amino–tiletílico)-N,N,N′,′ácido tetraacético (EGTA) | Sigma-Aldrich | E4378 | |
| Ácido glutâmico | Sigma-Aldrich | 27647 | |
| HEPES | Sigma-Aldrich | H4034 | |
| Imidazol | Sigma-Aldrich | I5513 | |
| Ketamina | Pfizer Pharma GmbH | Ketaset | |
| Ácido lactobiônico | Sigma-Aldrich | 153516 | |
| Cloreto de magnésio (MgCl2) | Sigma-Aldrich | M9272 | |
| Cloreto de magnésio hexaidratado (MgCl2∙6H2O) | Sigma-Aldrich | M9272 | |
| Ácido málico | Sigma-Aldrich | M1000 | |
| MES | Sigma-Aldrich | M3671 | |
| N,N,N’,’-Tetrametil-p-fenilenodiamina diidrocloridrato (TMPD) | Sigma-Aldrich | T3134 | |
| Oligomicina | Sigma-Aldrich | O4876 | |
| Fosfocreatina | Sigma-Aldrich | P7936 | |
| Cloreto de Potássio | Sigma-Aldrich | P9541 | |
| Hidróxido de Potássio | Sigma-Aldrich | P5958 | |
| Cianeto de potássio | Fluka | 60178 | |
| Fosfato monobásico de potássio | Sigma-Aldrich | P5655 | |
| Rotenona | Sigma-Aldrich | R8875 | |
| Saponina | Sigma-Aldrich | 47036 | |
| Pentobarbital de sódio | Ceva Saúde Animal | 1715 138 | Conc. 54,7 mg/ml |
| Piruvato de sódio | Sigma-Aldrich | P2256 | |
| Ácido succínico | Sigma-Aldrich | S3674 | |
| Sacarose | Sigma-Aldrich | S7903 | |
| Taurina | Sigma-Aldrich | T8691 | |
| Xilazina | Bayer AG | Rompun | |
| ddH₂O2O | |||
| Gelo | |||
| Oroboros Oxygraph-2k | Oroboros Instruments | ||
| Kimwipes | VWR international | 21905-026 | |
| Tubos de centrífuga de polipropileno de 15 ml | VWR international | 89004-368 | |
| Tubos de centrífuga de polipropileno de 50 ml | VWR international | 89004-364 | |
| Pinça de joalheiro reta | George Tiemann && Cia. | 160-50B | |
| Pinça Curva para Ourives | George Tiemann && Cia. | 160-57B | |
| Tesoura cirúrgica reta | George Tiemann && Cia. | 105-402 | |
| Lâmina Cirúrgica Estéril | VWR international | BD371610 | |
| 0.45-μm Filtros de seringa | VWR international | CA28145-485 | |
| pHmetro | VWR international | CA11388-308 | |
| Placas de Petri de vidro | VWR international | 89000-300 | |
| Placas de cultura de tecidos de poliestireno, 12 poços | VWR international | 82050-926 | |
| Agitador de Placa | VWR international | 97042-594 | |
| Fisherbrand Microbars | Fisher Scientific | 14-511-67 | |
| Balança de Pesagem | VWR international | CA11278-162 | |
| 10μSeringa Micro Hamilton | Fisher Scientific | 14-815-1 | |
| 25μSeringa Micro Hamilton | Fisher Scientific | 14-824-7 | |
| 50μsiringa micro de l Hamilton | Fisher Scientific | 14-824-5 | |
| Garrafas Squeeze Nalgene | Wilkem Scientific | LNA2407-1000 | |
| Placas de Pesagem de Poliestireno | VWR international | 89106-750 | |
| Microscópio de dissecação | Olympus Corporation |
Referências
- Saks, V. A., Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V. Permeabilized cell and skinned fiber techniques in studies of mitochondrial function in vivo. Mol Cell Biochem. 184, 81-100 (1998).
- Gnaiger, E., Kuznetsov, A. V., Schneeberger, S. Mitochondria in the cold. Life in the Cold. Heldmaier, G., Klingenspor, M. , Springer. Berlin, Heidelberg, New York. 431-442 (2000).
- Rasmussen, H. N., Rasmussen, U. F. Oxygen solubilities of media used in electrochemical respiration measurements. Anal Biochem. 319, 105-113 (2003).
- Visscher, G. D. e, Rooker, S., Jorens, P. Pentobarbital fails to reduce cerebral oxygen consumption early after non-hemorrhagic closed head injury in rats. J Neurotrauma. 22, 793-806 (2005).
- Kuznetsov, A. V., Veksler, V., Gellerich, F. N. Analysis of mitochondrial function in situ in permeabilized muscle fibers, tissues and cells. Nat Protoc. 3, 965-976 (2008).
- Gnaiger, E. Oxygen conformance of cellular respiration. A perspective of mitochondrial physiology. Adv Exp Med Biol. 543, 39-55 (2003).
- Gnaiger, E. Capacity of oxidative phosphorylation in human skeletal muscle: new perspectives of mitochondrial physiology. Int J Biochem Cell Biol. 41, 1837-1845 Forthcoming.
- Sena, S., Hu, P., Zhang, D. Impaired insulin signaling accelerates cardiac mitochondrial dysfunction after myocardial infarction. J Mol Cell Cardiol. 46, 910-918 (2009).
- Boudina, S., Sena, S., O'Neill, B. T. Reduced mitochondrial oxidative capacity and increased mitochondrial uncoupling impair myocardial energetics in obesity. Circulation. 112, 2686-2695 (2005).
- Lenaz, G., Genova, M. L. Structure and organization of mitochondrial respiratory complexes: a new understanding of an old subject. Antioxid Redox Signal. 12, 961-1008 Forthcoming.
- Lemieux, H., Hoppel, C. L. Mitochondria in the human heart. J Bioenerg Biomembr. 41, 99-106 (2009).
- O, Retarded diffusion of ADP in cardiomyocytes: possible role of mitochondrial outer membrane and creatine kinase in cellular regulation of oxidative phosphorylation. Biochim Biophys Acta. 1144, 134-148 (1993).
- Endo, M., Kitazawa, T. E-C coupling studies in skinned cardiac fibers. Biophysical Aspects of Cardiac Muscle. Morad, M. , Academic. New York. 307-327 (1978).
- Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V., Sharov, V. G. Mitochondrial respiratory parameters in cardiac tissue: a novel method of assessment by using saponin-skinned fibers. Biochim Biophys Acta. 892, 191-196 (1987).
- Bangham, A. D., Horne, R. W., Glauert, A. M. Action of saponin on biological cell membranes. Nature. , 196-952 (1962).
- Daum, G. Lipids of mitochondria. Biochim Biophys Acta. 822, 1-42 (1985).
- Milner, D. J., Mavroidis, M., Weisleder, N. Desmin cytoskeleton linked to muscle mitochondrial distribution and respiratory function. J Cell Biol. 150, 1283-1298 (2000).
- Skladal, D., Sperl, W., Schranzhofer, R. Preservation of mitochondrial functions in human skeletal muscle during storage in high energy preservation solution (HEPS). What is Controlling Life?. Skladal, E., Gellerich, F., Wyss, M. , Univ. Press. Vol 3. Modern Trends in BioThermoKinetics 268-271 (1994).
- Kuznetsov, A. V., Wiedemann, F. R., Winkler, K. Use of saponin-permeabilized muscle fibers for the diagnosis of mitochondrial diseases. Biofactors. 7, 221-223 (1998).
- Gnaiger, E. Polarographic oxygen sensors, the oxygraph and high-resolution respirometry to assess mitochondrial function. Drug-Induced Mitochondrial Dysfunction. Dykens, J., Will, Y. , John Wiley & Sons, Inc. 327-352 (2008).
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