1. Cultivar Legionella pneumophila
- Espalhe a cepa de L. pneumophila Corby (tipo selvagem, WT) em placas de ágar de extrato de levedura de carvão (BCYE) tamponado e incube-as a 37 °C por 3 dias. Inocular 10 mL de caldo de extrato de levedura (YEB) em um OD600 de 0,3 com L. pneumophila da placa de pré-cultura; incubar a bactéria a 37 °C em um shaker rotativo (150 rpm) por 6 horas.
- Verifique a pureza da cultura líquida espalhando 100 μL da suspensão em uma placa de ágar sanguíneo. Incube durante a noite a 37 °C.
- Adicione a cultura líquida restante a 90 mL de meio YEB fresco e incube em um shaker rotativo (37 °C e 150 rpm) para atingir um OD600 de 3,0-3,5, o que leva aproximadamente 16-20 horas.
2. Preparar e Quantificar Vesículas da membrana externa (OMVs) de L. pneumophila
NOTA: Realize todas as seguintes etapas de centrifugação em condições estéreis e a 4 °C.
- Centrifuge a cultura líquida a 4.000 x g por 20 minutos para pelletar as bactérias. Transfira o sobrenadante para tubos de centrífuga novos, descarte o pellet bacteriano e repita a centrifugação (4.000 x g por 20 minutos). Repita essa etapa uma vez.
- Filtre estéril o sobrenadante restante duas vezes (tamanho dos poros: 0,22 μm). Transfira o supernadante livre de bactérias para tubos de ultracentrífuga e ultracentrífuga a 100.000 x g por 3 horas.
- Decante o sobrenadante e descarte-o. Ressuspenda o pellet OMV em soro salino estéril tamponado com fosfato (PBS) e ultracentrífuga (100.000 x g por 3 horas) para remover proteínas contaminantes e LPS.
- Descarte o sobrenadante e ressuspenda o pellet OMV em 500 μL de PBS estéril. Estirar 20 μL em uma placa de ágar sanguíneo e em uma placa de ágar BCYE para excluir a contaminação bacteriana das vesículas preparadas. Incube a placa de ágar sanguínea durante a noite e a placa de ágar BCYE por 3 dias (ambas a 37 °C).
NOTA: A concentração de 100 mL de cultura de L. pneumophila geralmente é de 1 μg/μL. Armazene os OMVs preparados e quantificados a -20 °C.