1. Preparação de Bactérias
Nota: A cepa virulenta P1/7 do serotipo 2 do Streptococcus suis (S. suis) foi isolada de um porco doente com meningite. A cepa P1/7 foi cultivada em caldo Todd-Hewitt (THB, fórmula por litro de THB: Infusão Cardíaca, 3,1 g; neopeptona, 20,0 g; dextrose, 2,0 g; cloreto de sódio, 2,0 g; fosfato dissódico, 0,4 g; carbonato de sódio, 2,5 g) e colocada em ágar Todd-Hewitt (THA, fórmula por litro de THA: Infusão Cardíaca, 3,1 g; neopeptona, 20,0 g; dextrose, 2,0 g; cloreto de sódio, 2,0 g; fosfato dissódico, 0,4 g; carbonato de sódio, 2,5 g; ágar, 15,0 g) a 37 °C e 5% de CO2.
- Coleção de células planctônicas da cepa P1/7
- Colete 5 mL de células planctônicas de culturas em fase média logaritarina (OD600=0,6), centrifuge por 3 minutos a 8000 × g e lave 3 vezes com soro salino tamponado com fosfato (PBS).
- Ressuspenda as células com 5 mL de glicerol a 25% em THB, aliquota em 5 tubos e depois armazene a -80 °C.
- Coleta de células de estado do biofilme da cepa P1/7
- Pegue 20 mL de uma cultura durante a noite e adicione 180 mL de THB fresco; divida a cultura diluída igualmente em 10 placas redondas de cultura e, em seguida, coloque as placas em uma incubadora a 37 °C em 5% deCO2 por 24 horas.
- Após a incubação, agite a placa suavemente para ressuspender as bactérias que não aderiram à placa e, em seguida, descarte o sobrenadante por aspiração.
NOTA: Agite a placa suavemente e evite resuspender o sedimento. - Adicione 5 mL de PBS para colher as células do estado do biofilme, ressuspenda completamente o sedimento e então transfira a amostra para um novo tubo.
- Sonice as células do estado do biofilme a partir da última etapa com os seguintes parâmetros: 60 W, 4 ciclos, 5 s ligado e 10 s desligado.
- Centrifuge por 3 minutos a 8000 × g e armazene o sobrenadante a -80 °C.
NOTA: O sobrenadante pode conter componentes de biofilme e pode ser usado para ressuspender as bactérias do biofilme antes da infecção, conforme descrito nos experimentos com animais (Passo 2). - Ressuspenda o sedimento com 10 mL de glicerol a 25% em THB e então armazene as células do estado do biofilme a -80 °C.
2. Experimentos com Animais
- Use FPS de camundongos BALB/c fêmeas de 6 semanas neste estudo. Infectar todos os camundongos pela via subaracnoidal intracraniana, cujo local de injeção está localizado a 3,5 mm rostral da brema.
- Para análise histopatológica, infectar dois grupos de camundongos (5 camundongos por grupo) usando células planctônicas ou células do estado de biofilme em uma dose de 3 × 10unidades formadoras de 7 colônias (UFC), e outros 5 camundongos foram injetados com PBS como controle.
- Para a detecção da expressão de mRNA de TLR2 e citocinas no cérebro, infecte dois grupos adicionais de camundongos (6 camundongos por grupo) usando células planctônicas ou células do estado de biofilme em uma dose de 3 × 107 CFU.
- Determine o número de bactérias viáveis aplicando diluições seriadas sobre a THA.
- Eutanasie todos os camundongos às 12 horas após a infecção para pesquisas adicionais.
NOTA: O glicerol presente no meio original deve ser removido antes da infecção. Tanto as células planctônicas quanto as células do estado de biofilme recuperadas de -80 °C são lavadas 3 vezes com PBS. Em seguida, as células planctônicas são ressuspensas com PBS e diluídas na dose adequada para infecção; As células do estado de biofilme são ressuspensas com o sobrenadante armazenado (a partir da etapa 1.2.5) e diluídas até a dose adequada para infecção. O volume de infecção não deve ultrapassar 50 μL.
- Detecção da expressão de mRNA de TLR2 e citocinas no tecido cerebral
- Extraia o RNA total do tecido cerebral usando um kit de extração de RNA.
- Para cada camundongo, use todo o tecido cerebral para extrair RNA. Divida todo o tecido cerebral em 5 tubos. Pegue até 100 mg de tecido cerebral e adicione 1 mL de solução de lise a cada tubo contendo a matriz de lisis fornecida pelo kit.
- Processe o tubo em um homogeneizador por 40 s na configuração 6,0, e então centrifuge o tubo a 12000 × g e 4 °C por 5 minutos.
- Após a centrifugação, transfira a fase superior para um novo tubo microcentrífuga.
- Incubar a amostra transferida por 5 minutos em temperatura ambiente; adicione 300 μL de clorofórmio, faça vórtice por 10 s e depois incube por 5 minutos em temperatura ambiente.
- Centrifuge o tubo a 12000 × g e 4 °C por 5 minutos. Transfira a fase superior para um novo tubo.
- Adicione 500 μL de etanol absoluto frio ao tubo antes de invertê-lo 5 vezes e depois armazene a amostra a -20 °C por pelo menos 1 hora.
- Centrifuge o tubo a 12000 × g e 4 °C por 15 minutos e remova o sobrenadante. Lave o pellet com 500 μL de etanol frio a 75% em água livre de RNase (H2O).
- Remova o etanol, seque o pellet ao ar por 5 minutos em temperatura ambiente e ressuspenda o RNA em 100 μL deH2Olivre de RNase.
- Incube o RNA por 5 minutos em temperatura ambiente e determine a concentração de RNA usando um bioanalisador de RNA.
- Realize a síntese complementar de DNA (cDNA), incluindo a eliminação do DNA genômico (gDNA), utilizando um termociclador com kit de reagentes de transcrição reversa (RT).
- Adicione 1 μg de RNA a um tubo contendo 2 μL de 5x tampão de eliminação de gDNA, 1 μL de enzima de eliminação de gDNA eH2Olivre de RNase até que o volume atinja 10 μL. Incube por 2 minutos a 42 °C.
- Adicione 10 μL de mistura master (1 μL de enzima RT Mix I, 1 μL de mistura de primer RT, 4 μL de 5x Buffer 2 e 4 μL de H2livre de RNase) à solução de reação a partir da última etapa e depois misture suavemente. Proceda imediatamente com a reação RT: 37 °C por 15 minutos e depois 85 °C por 5 segundos.
- Realize a análise quantitativa da reação em cadeia da polimerase em tempo real (RT-qPCR) usando uma máquina de PCR em tempo real com um kit SYBR RT-qPCR. Adicione 10 μL de 2x enzima, 0,8 μL de primer direto, 0,8 μL de primer reverso, 0,4 μL de 50x ROX Reference Dye II, 2 μL de molde de cDNA e H2Olivre de RNase até atingir um volume total de 20 μL.
- Execute cada amostra em triplicado usando os seguintes parâmetros térmicos: 30 s a 94 °C, seguido por 40 ciclos de 5 s a 95 °C e 34 s a 60 °C, com um estágio final de 15 s a 95 °C, 1 min a 60 °C e 15 s a 95 °C. Primers para RT-qPCR estão listados na Tabela 1. Genes de manutenção B2m e rRNA 18s foram usados como controles internos.
- Calcule a variação relativa da dobra com base no método 2-ΔΔCt .
Tabela 1: Espoletas para RT-qPCR.
| Nome do Guia | Sequência (5'-3') | Símbolo genético |
| IL-6 avançado | CTTCCATCCAGTTGCCTTCT | Il6 |
| Reverso do IL-6 | CTCCGACTTGTGAAGTGGTATAG | Il6 |
| TLR2 para frente | CACTATCCGGAGGTTGCATATC | Tlr2 |
| TLR2 reverso | GGAAGACCTTGCTGTTCTCTAC | Tlr2 |
| Atacante CCL2 | CTCACCTGCTGCTACTCATTC | Ccl2 |
| CCL2 reverso | ACTACAGCTTTTTTGGGACAC | Ccl2 |
| TNF-α adiante | TTGTCTACTCCCAGGTTCTCT | Tnf |
| Reverso TNF-α | GAGGTTGACTTTTTCCTGGTATG | Tnf |
| β2m para frente | GGTCTTTCTGTGTGCTTGTCT | B2m |
| β2m reverso | TATGTTCGGCTTCCCATTCTC | B2m |
| Atacantes de 18 | GTAACCCGTTGAACCCCATT | 18s rRNA |
| 18s reverso | CCATCCAATCGGTAGTAGCG | 18s rRNA |