1. Imunomarcação de proteínas: Para rotular proteína(s) de interesse
- Decante o PBS (solução salina tamponada com fosfato) e adicione 200 µL de tampão bloqueador (1% p/v BSA (albumina sérica bovina), 10% v/v FBS (soro bovino fetal) em PBS com 0,1% v/v Tween-20 (PBST) sobre o lamínula. Incube por 1 h à temperatura ambiente (TA).
- Decante o tampão bloqueador e aplique 200 µL do anticorpo primário diluído em PBST + 1% p/v BSA. Incube por 1 h à temperatura ambiente.
- Lave a lâmina duas vezes com PBST por 10 min à temperatura ambiente com agitação.
- Aplique um anticorpo secundário de escolha por 1 h à temperatura ambiente em PBST + 1% p/v BSA.
- Lave a lâmina com PBST por 10 min à temperatura ambiente com agitação.
2. Coloração nuclear: Contra-colorir núcleos após imunomarcação
- Decante o PBST e adicione DAPI (4',6-diamidino-2-fenilindol) ou corante nuclear de escolha por 1 min a RT.
- Lave a lâmina duas vezes com PBS por 10 min a RT com agitação.