Artigo de método

Visualização da Supressão Transcricional em Células Infectadas por Vírus

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30 de setembro de 2026

Neste artigo

Resumo

Fonte: Kalveram, B. et al. Utilização da Química Click para Medir o Efeito da Infecção Viral na Síntese de RNA da Célula Hospedeira. J. Vis. Exp. (2013)


Este vídeo demonstra o uso da química click e da microscopia de fluorescência para visualizar a transcrição de RNA recém-sintetizado em células de mamíferos. Ele destaca como a infecção viral suprime a transcrição do hospedeiro por meio da comparação de sinais fluorescentes entre células infectadas e células controle.

Protocolo

  1. Infecte células com o vírus da febre do Rift Valley (RVFV) cepa MP-12 e marque o RNA recém-sintetizado com 5-etiniluridina (EU)

    1. Plaque células de rim embrionário humano 293 (HEK293) em uma placa de cultura de tecidos de 6 poços com meio de crescimento (meio de Eagle modificado de Dulbecco (DMEM) contendo 10% de soro bovino fetal, 100 U/mL de penicilina, 100 μg/mL de estreptomicina). Incube em um incubador umidificado a 37 °C e 5% de CO2 até que as células atinjam 80 - 100% de confluência.
    2. Infecte as células com MP-12 com uma multiplicidade de infecção (MOI) de 3. Inclua pelo menos dois poços não infectados: um dos poços servirá como controle não infectado, e o outro será tratado com actinomicina D (ActD). Remova o meio de crescimento e dilua o estoque viral de modo que o volume total adicionado a cada poço seja de 400 μL. Incube por 1 hora em um incubador umidificado a 37 °C e 5% de CO2.
    3. Remova o inóculo e adicione 2 mL de meio de crescimento fresco por poço. Incube a 37 °C por 12 horas.

    NOTA: Caso adapte este protocolo para uso com outro vírus, recomenda-se realizar um experimento de curso temporal para determinar o ponto ideal de marcação e coleta. Configure este curso temporal de modo que os tempos de infecção sejam escalonados e todas as amostras possam ser marcadas, coletadas e coradas ao mesmo tempo.

    1. Aos 12 horas pós-infecção (hpi), substitua o meio de crescimento por um meio contendo 0,5 mM de EU. Em um dos poços mock-infectados, adicione também 5 μg/mL de ActD. Este poço servirá como controle de supressão da transcrição, já que a ActD inibe a síntese de RNA dependente de DNA. Retorne as células ao incubador.
    2. Aos 13 hpi, lave as células uma vez com solução salina tamponada com fosfato (PBS) e colete-as por tripsinização. Lave as células coletadas três vezes com PBS contendo 1 mM de ácido etilenodiaminotetraacético (EDTA).

    NOTA: Durante esta e as etapas subsequentes, não centrifugue as células a mais de 500-1.000 x g para evitar a ruptura celular. Centrifugue as células por 1-2 minutos para sedimentação.

    NOTA: Se for planejada imunomarcação de superfície após a reação de "click", colete as células usando um raspador de borracha ("rubber policeman") ou raspador celular descartável.

    1. Fixe as células ressuspendendo-as em 1 mL de paraformaldeído a 4% (PFA) e incube por 30 minutos à temperatura ambiente (RT).
    2. Lave uma vez com 1 mL de PBS-EDTA por poço. Prossiga imediatamente para a etapa 2.

    NOTA: É importante prosseguir imediatamente com a reação de "click", pois o RNA se degrada se mantido nesta etapa por períodos prolongados. Da mesma forma, se estiver realizando um experimento de curso temporal, certifique-se de marcar, fixar e corar todas as amostras ao mesmo tempo.

  2. Reação de "Click" para Detectar o RNA Marcado

    1. Permeabilize as células adicionando 1 mL de Triton X-100 a 0,2% em PBS. Incube por 10 minutos à temperatura ambiente (RT).

    NOTA: Todas as soluções utilizadas nas etapas 2.1 a 2.3 devem ser livres de nucleases.

    1. Lave três vezes com 1 mL de PBS por poço.
    2. Remova as lamínulas da placa de 12 poços e transfira-as para uma câmara umidificada. Cubra cada lamínula com 50 - 100 μL de solução de coloração de "click" (Tris 100 mM pH 8,5, CuSO4 1 mM, azida fluorescente 20 μM [máximo de excitação/emissão: 590/617 nm], ácido ascórbico 100 mM). Incube por 1 hora à temperatura ambiente no escuro.

    NOTA: Para montar a câmara umidificada, forre o fundo de uma placa de cultura celular ou placa de Petri de 10 cm de diâmetro com filme plástico de parafina. Forre a borda interna do recipiente com toalhas de papel umedecidas. Coloque as lamínulas sobre o filme plástico de parafina.

    NOTA: Tenha cuidado para que as lamínulas não sequem durante esta ou qualquer outra etapa do protocolo. O ideal é adicionar a solução de coloração a cada lamínula imediatamente após sua colocação na câmara umidificada.

    NOTA: Prepare a solução de coloração de "click" fresca imediatamente antes desta etapa. Soluções estoque de Tris 1,5 M pH 8,5, CuSO4 100 mM e ácido ascórbico 500 mM podem ser armazenadas a 4 °C. No entanto, descarte qualquer solução estoque de ácido ascórbico que tenha ficado amarelada.

    NOTA: Certifique-se de escolher um fluoróforo compatível com os filtros do seu microscópio de fluorescência.

    1. Remova as lamínulas da câmara umidificada e coloque-as em uma placa de 12 poços nova, lavando três vezes com 1 mL de PBS por poço.
    2. Monte as lamínulas colocando uma gota (aproximadamente 15 μL) de Fluoromount-G em uma lâmina de microscopia. Mergulhe a lamínula em H2O, remova o excesso de H2O tocando a lateral em uma toalha de papel e posicione o lado das células para baixo na gota de Fluoromount-G. Deixe secar ao ar por 5 minutos.

    NOTA: Se for realizar a imagem em um microscópio invertido, deixe o Fluoromount-G solidificar a 4 °C durante a noite ou fixe as lamínulas à lâmina de microscopia selando as bordas com esmalte transparente.

    NOTA: As lâminas podem ser analisadas imediatamente ou armazenadas a 4 °C no escuro por até uma semana.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
5-Etinil uridinaBerry AssociatesPY 7563Dissolver em DMSO para estoque de 100 mM
Cobrislides redondos de 12 mmFisherbrand12-545-82 
Actinomicina D (ActD)Sigma9415Dissolver em DMSO para estoque de 10 mM
Microscópio de fluorescência  por exemplo, Olympus IX71
CuSO₄SigmaC-8027Dissolver em H₂O para estoque de 100 mM
DMEM (meio Eagle modificado de Dulbecco)Invitrogen11965092 
FBS (soro bovino fetal)Invitrogen16000044 
Azida fluorescente (acoplada ao Alexa Fluor 594)InvitrogenA10270 
Fluoromount-GSouthern Biotech0100-01 
Ácido L-ascórbicoSigmaA-5960Dissolver em H₂O para 500 mM
ParaformaldeídoSigma158127 
Penicilina-EstreptomicinaInvitrogen15140122 
Triton X-100SigmaT-8787 
Tripsina-EDTAInvitrogen25200056 
Base de TrizmaSigmaT-1503dissolver em H₂O para estoque de 1,5 M, pH 8,5

Etiquetas

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