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Artigo de método

Extração de lisado de proteína: uma técnica para lisar organoides para coletar proteínas celulares

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30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Fonte: Crowell, P. D. et al. Avaliando a capacidade de diferenciação de células epiteliais da próstata de camundongo usando cultura organoide. J. Vis. Exp. (2019)

Neste vídeo, demonstramos a extração de lisados de proteínas de organoides de próstata cultivados em um anel de matriz de membrana basal. A análise das frações proteicas extraídas pode ajudar a estudar a expressão do marcador de linhagem nos organoides.

Protocolo

1. Extraindo lisado de proteína de organoides de próstata para análise de Western Blot - TEMPO: 2,5-4 H

NOTA: Antes de coletar organoides para extração de lisado de proteína, prepare e pré-aqueça o meio contendo dispase (Tabela 1).

  1. Remova o meio de cada poço inclinando a placa de 24 poços em um ângulo de 45° e removendo suavemente o meio existente do centro de cada poço usando uma pipeta P1000, evitando o anel de gel da matriz.
  2. Para coletar organoides, jatee repetidamente o gel da matriz pipetando 1 mL de meio contendo dispase diretamente no anel de gel da matriz até que todo o anel seja desalojado e transfira para um tubo de microcentrífuga de 1,5 mL.
    NOTA: É fundamental evitar o contato direto com os poços revestidos com Poly-HEMA. O contato direto pode causar contaminação do material coletado com Poly-HEMA, o que pode impactar negativamente a sobrevivência celular.
  3. Coloque o(s) tubo(s) de microcentrífuga de 1,5 mL em uma incubadora de CO37 a 37 °C 5% 2 por 30 min a 1 h para permitir a digestão completa do gel da matriz por dispase.
  4. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 5 min a RT e remover o sobrenadante com uma micropipeta.
  5. Adicione solução salina tamponada com fosfato (PBS) ao pellet organoide e ressuspenda sacudindo suavemente.
    NOTA: A falha em ressuspender suficientemente o pellet organoide pode resultar na contaminação do material organoide com dispase residual ou gel de matriz.
  6. Pelete os organoides por centrifugação a 800 x g durante 5 min a RT e remova o sobrenadante utilizando uma micropipeta.
  7. Congele rapidamente os grânulos organoides colocando cada tubo em uma solução contendo gelo seco e metanol. Conservar o(s) tubo(s) até utilização futura a -80 °C. Em alternativa, extrair o lisado de proteínas imediatamente após o passo 1.6.
  8. Ressuspenda os grânulos organoides em 100 μL de tampão de lise de proteína (Tabela 1) por 10 μL de volume de células compactadas. Deslize para ressuspender.
    NOTA: Se retomar após o congelamento rápido, certifique-se de que o tampão de lise de proteína esteja descongelado antes de remover as amostras de -80 °C, pois o tampão de lise deve ser adicionado às amostras imediatamente para evitar a atividade da fosfatase e da protease.
  9. Incube as amostras em tampão de lise de proteína em gelo por pelo menos 45 min.
    NOTA: Recomenda-se sonicar antes da incubação em gelo para aumentar a eficiência da recuperação de proteínas nucleares; no entanto, a sonicação não é necessária. Se a sonicação não for realizada, prossiga para a etapa 1.10.
    1. Para sonicar, mergulhe os tubos em gelo úmido e aplique suavemente a ponta do desmagnetizador sônico no tubo da microcentrífuga. Sonicar por 40 s a 20 kHz.
  10. Prossiga para Western blot seguindo os protocolos estabelecidos.

Tabela 1: Instruções para a preparação de soluções-chave

Receitas
Mídia contendo dispase1 mg/mL de dispase + 10 μM de inibidor de ROCK em DMEM F12 avançado. Esterilize o filtro usando um filtro de 0,22 μm.
Meios de dissociação10% FBS + 1x Penicilina-Estreptomicina em RPMI 1640. Esterilize o filtro usando um filtro de 0,22 μm.
Tampão de lise de proteínaTampão RIPA + inibidores de fosfatase + inibidores de protease
Solução de bloqueio10% FBS em PBS com 0,2% Triton X-100

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
A83-01 Tocris Nº 2939
DMEM/F-12 avançado Thermo Fisher Científico 12634010
Suplemento B-27 (50x), Sem SoroThermo Fisher Científico17504044
Dispase II, Pó Thermo Fisher Científico 17-105-041
Soro fetal bovino (FBS) sigma Rolamento F8667
Garrafa térmica GlutaMAX Fisher Científico 35050061
Inibidor de fosfatase de parada Thermo Fisher Científico Nº 78428
Matriz de membrana Matrigel GFRCorning CB-40230C
N-acetil-L-cisteína sigmaRolamento A9165
Normocin Thermo Fisher Científicoformiga-nr-1
Penicilina-estreptomicina (10.000 U/
mL)
Thermo Fisher Científico 15-140-122
Poli(2-hidroxietil metacrilato)
(Poli-HEMA)
sigma Pág. 3932-25G
Ensaio de radioimunoprecipitação
(RIPA)
Thermo Fisher Científico PI89901
EGF Humano Recombinante, AnimalFreePeproTech AF-100-15
Cabeça Humana Recombinante PeproTech 120-10C
RPMI 1640 Médio, HEPES (cs of
10)
Thermo Fisher Científico 22400105
Desmembrador Sônico Thermo Fisher CientíficoFB120
Tritão X-100sigmaX100-5ML
Cloridrato de Y-27632 (inibidor de ROCK) Selleck QuímicaS1049-50MG

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