É necessária uma assinatura do JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou inicie seu teste gratuito.

Artigo de método

Imagem de imunofluorescência de montagem total: uma técnica de fixação e coloração para avaliar organoides intactos

8.4K visualizações

30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Fonte: Crowell, P. D. et al. Avaliando a capacidade de diferenciação de células epiteliais da próstata de camundongo usando cultura organoide. J. Vis. Exp. (2019)

Este vídeo descreve a técnica de coloração imunofluorescente de organoides intactos de câncer de próstata e sua imagem por microscopia confocal de montagem total. Esta técnica tem como objetivo avaliar a capacidade de diferenciação ex vivo de células epiteliais basais e luminais da próstata.

Protocolo

1. Fixação e Coloração de Organoides da Próstata para Análise Imuno-Histoquímica por Microscopia Confocal de Montagem Inteira

  1. Coleta de organoides de próstata de placas de 24 poços — TEMPO: 45-60 min
    NOTA: Ao coletar organoides de próstata para processar para microscopia confocal, é fundamental manuseá-los com cuidado para manter sua estrutura. O protocolo de coleta abaixo é projetado para reduzir a ruptura da estrutura organoide durante o isolamento.
    1. Remova a mídia de cada poço da placa contendo organoides inclinando a placa em um ângulo de 45°.
    2. Digerir o gel da matriz incubando-o com 500 μL de meios contendo dispase (Tabela 1) durante 30 min numa incubadora de CO2 a 37 °C a 5%.
    3. Coletar a suspensão organoide digerida em um tubo de microcentrífuga e granular os organoides por centrifugação a 800 x g por 3 min em RT. Remover o sobrenadante.
  2. Coloração imunofluorescente total de organoides da próstata — TEMPO: 3-4 dias (1-5 h/dia)
    1. Adicione 500 μL de paraformaldeído a 4% em PBS e incube por 2 h em RT com agitação suave.
    2. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min à RT, remover o sobrenadante e lavar o pellet com 1 ml de PBS durante 15 min com agitação suave.
    3. Lave o pellet como na etapa 1.2.2 por mais duas vezes.
    4. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante. Adicionar 1 μg/ml de DAPI na solução de bloqueio (Tabela 1). Incubar durante 2 h em temperatura alta ou, em alternativa, durante a noite a 4 °C, agitando suavemente.
    5. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante. Adicionar o anticorpo primário (anti-p63 de coelho, anticitoqueratina 8 de ratinho) na solução de bloqueio e incubar durante a noite a 4 °C com agitação suave.
    6. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante. Lave o pellet com 1 mL de PBS por 15 min com agitação suave.
    7. Lave o pellet como na etapa 1.2.6 por mais duas vezes.
    8. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante. Adicione o anticorpo secundário (cabra anti-coelho IgG-Alexa Fluor 594, cabra anti-camundongo IgG-Alexa Fluor 488) na solução de bloqueio e incube durante a noite a 4 ° C com agitação suave.
    9. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min à RT, remover o sobrenadante e lavar o pellet com 1 ml de PBS durante 15 min com agitação suave.
    10. Lave o pellet como na etapa 1.2.9 por mais duas vezes.

2. Limpeza de tecido e montagem dos organoides de próstata corados para microscopia confocal de montagem total - TEMPO: 7 H

  1. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante.
  2. Adicione 1 mL de sacarose a 30% em PBS com Triton X-100 a 1% e incube por 2 h em RT com agitação suave.
  3. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante.
  4. Adicione 1 mL de sacarose a 45% em PBS com Triton X-100 a 1% e incube por 2 h em RT com agitação suave.
  5. Pulverizar os organoides por centrifugação a 800 x g durante 3 min a RT e remover o sobrenadante.
  6. Adicione 1 mL de sacarose a 60% em PBS com Triton X-100 a 1% e incube por 2 h em RT com agitação suave.
  7. Pelotizar os organoides por centrifugação a 800 x g por 3 min em RT e remover 95% do sobrenadante.
    NOTA: O pellet fica mais solto à medida que a concentração de sacarose aumenta. Recomenda-se observar os organoides corados com DAPI sob a luz ultravioleta para confirmar que eles não foram perdidos durante a remoção do sobrenadante.
  8. Transfira uma gota de 10-20 μL da suspensão restante para uma lamínula com câmara e prossiga para microscopia confocal.
    NOTA: Os fragmentos de lamínula podem ser colocados em ambos os lados da gota para serem usados como espaçadores (Figura 1C). Isso evita que os organoides entrem em colapso quando uma lamínula é colocada sobre a gota.

Tabela 1: Instruções para a preparação de soluções-chave

componenteconcentração
B-271x (diluir de 50x concentrado)
GlutaMAX1x (diluir a partir de 100x concentrado)
N-acetil-L-cisteína1,25 mM
Normocin50 μg/mL
EGF Humano Recombinante, Livre de Animais50 ng/mL
Cabeça Humana Recombinante100 ng/mL
Meio condicionado R-spondin 110% de mídia condicionada
A83-01200 nM
DHT1 nM
Cloridrato de Y-27632 (inibidor de ROCK)10 μM
DMEM/F-12 avançadoMídia base
R-spondin 1-mídia condicionada é gerada conforme descrito em Drost, et al. Após a adição de todos os componentes, filtre e esterilize os meios organoides do camundongo usando um filtro de 0,22 μm. O inibidor de ROCK é adicionado apenas durante o estabelecimento da cultura e a passagem de organoides.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

figure-results-1
Figura 1: Análise da expressão do marcador de linhagem em organoides da próstata por Western blot e microscopia confocal de montagem total.(A) Imagens representativas de contraste de fase de organoides derivados basais (superior) e luminosos (inferiores) após 7 dias de cultura. Barra de escala = 100 μm. (B) Análise de Western blot de organoides derivados da base (Bas...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
16% Paraformaldeído Thermo Fisher CientíficoTelefone: 50-980-487
4',6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) Thermo Fisher Científico D1306
DMEM/F-12 avançado Thermo Fisher Científico12634010
Dispase II, Pó Thermo Fisher Científico17-105-041
Soro fetal bovino (FBS) sigmaRolamento F8667
IgG-Alexa Fluor 488 da anti-rato da cabra InvitrogenRolamento A28175
Cabra anti-coelho IgG-Alexa Fluor 594 InvitrogenA11012
Anticitoqueratina 8 de camundongo BioLegend904804
Penicilina-estreptomicina (10.000 U/mL) Thermo Fisher Científico15-140-122
Coelho anti-p63 BioLegend619002
RPMI 1640 Médio, HEPES (cs de 10) Thermo Fisher Científico22400105
sacarose sigmaS0389-500G
Tritão X-100 sigma X100-5ML

Etiquetas

Organoides de PróstataMicroscopia ConfocalColoração de OrganoidesCélulas Epiteliais BasaisCélulas Epiteliais LuminaisTransparência TecidualGradiente de SacaroseIncubação com AnticorposColoração com DAPI