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Artigo de método

Xenoenxerto de tumor da cápsula renal: uma técnica para gerar um modelo animal experimental para avaliar a carcinogênese da próstata

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30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

Fonte: Nicholson, T. M. et al. Xenoenxerto da cápsula renal e implante subcutâneo de pellets para avaliação da carcinogênese da próstata e hiperplasia prostática benigna. J. Vis. Exp. (2013)

Neste vídeo, demonstramos a implantação de enxertos de tecido de câncer de próstata derivados de humanos na cápsula renal de um camundongo receptor imunocomprometido. Essa técnica pode ser usada para avaliar a progressão do tumor e desenvolver novas estratégias terapêuticas.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.

1. Procedimento Cirúrgico: Xenoenxerto da Cápsula Renal

  1. Antes da indução da anestesia, observe o camundongo para garantir a saúde e o bem-estar.
  2. Coloque o mouse na câmara para indução de anestesia com isoflurano a 3-5%. Quando o animal parar de se mover e a frequência respiratória diminuir, transfira para o cone do nariz em decúbito ventral e mantenha a anestesia em 1-3%.
  3. Se necessário, use tesouras para raspar a parte de trás do mouse. Isso não é necessário ao utilizar camundongos nus atímicos (nu/nu).
  4. Aplique pressão firme na membrana do retropé estendido para avaliar a adequação da anestesia. Se o camundongo responder à pressão, é necessário mais tempo para que a anestesia faça efeito. Se necessário, ajuste ligeiramente o fluxo da anestesia para obter uma anestesia adequada.
  5. Quando o camundongo estiver adequadamente anestesiado, desinfete o local da cirurgia com solução cirúrgica de iodo (Betadine) seguida de álcool a 70%.
  6. Use luvas e aventais estéreis; aplique campos estéreis no local da cirurgia. Levante a pele posterior com uma pinça dentada e, usando a tesoura grossa, faça uma incisão na linha média dorsal de 2-3 cm.
  7. Usando uma tesoura romba ou uma sonda, separe a derme subjacente da parede corporal (em ambos os lados da incisão para enxerto bilateral ou em um lado para enxerto unilateral).
  8. Reposicione o mouse na posição lateral e identifique a localização do rim visualizando o perfil renal através da parede muscular. A aplicação de uma leve pressão manual com o polegar e o indicador no abdômen pode ajudar na visualização dos órgãos internos.
  9. Usando uma tesoura de íris fina e tomando cuidado para evitar os principais vasos e nervos espinhais, faça uma incisão de 1 cm na parede do corpo paralela à coluna. Amplie esta incisão para 1,5-2,0 cm (ligeiramente mais longo que o eixo longo do rim) abrindo suavemente a tesoura depois de colocá-la na incisão inicial.
  10. Exteriorize o rim aplicando uma leve pressão fora da parede muscular em ambos os lados do rim usando o dedo indicador e o polegar. Coloque as bordas da pele abaixo do rim exteriorizado, que ficará na parede do corpo. Enquanto o rim estiver exteriorizado, mantenha a hidratação da cápsula renal aplicando solução salina estéril.
  11. Usando uma pinça fina # 5, levante suavemente a cápsula renal do parênquima do rim e, com um bisturi fino, faça uma incisão de 2-4 mm na cápsula. O tamanho da incisão é determinado pelo tamanho do enxerto, mas deve ser minimizado para manter a integridade da cápsula.
  12. Manipule uma pipeta Pasteur de vidro que tenha sido estirada fina e polida com uma extremidade fechada arredondada sob a cápsula tangencial à superfície do rim. Abra suavemente uma pequena bolsa de cápsula para os enxertos, tomando muito cuidado para não danificar o parênquima renal.
  13. A borda cortada da cápsula renal é levantada com a pinça fina e o enxerto é inserido na bolsa sob a cápsula usando a pipeta de vidro polido a fogo. Vários enxertos podem ser colocados sob a cápsula renal e espaçados uniformemente na superfície do rim.
  14. Se durante o enxertia a cápsula ficar desidratada, ela deve ser umedecida com a aplicação de solução salina estéril.
  15. Quando o enxerto estiver completo, levante suavemente os lados da incisão da parede muscular para recolocar o rim de volta na cavidade corporal. Observe que os enxertos não escorregam por baixo da cápsula.
  16. Feche a parede muscular com uma única sutura (4-0, sutura de vicryl FS-2). O procedimento cirúrgico pode ser repetido no rim contralateral reposicionando o camundongo.
  17. Usando uma pinça dentada, alinhe as bordas da incisão da pele e aplique 2-3 clipes de ferida cirúrgica para fechar a incisão. Administre analgesia (usamos 5-10 mg / kg de carprofeno usando uma injeção subcutânea) e coloque o camundongo na posição de decúbito lateral na gaiola de recuperação. Garanta a manutenção da temperatura corporal com o calor de uma lâmpada ou almofada de aquecimento. Observe a recuperação total do mouse, que deve ocorrer em menos de 15 minutos.
  18. Os camundongos devem ser observados nas próximas 24 horas quanto a sinais de dor pós-operatória, sangramento e / ou outras complicações. Inspecione regularmente as incisões cirúrgicas em busca de sinais de infecção.
  19. Remova os clipes da ferida com o dispositivo de remoção do clipe da ferida cirúrgica 7 a 14 dias após a cirurgia.

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Bata cirúrgica estérilFornecimento de veterinários do meio-oeste350.79866.2
Máscara cirúrgicaFornecimento de veterinários do meio-oeste350.50111.2
Luvas estéreis Kimberly Clark Rolamento 55092
Clipper de ferida reflexo F.S.T. 12031-09Corresponde ao tamanho do clipe enrolado
Sutura Vicryl Fornecimento de veterinários do meio-oeste295-92100.2 4-0, FS-2, Absorvível
Tesoura reta afiada / sem corte Ferramentas Científicas Finas (FST)14054-13
Pinça Graefe (serrilhada, dentada, curva)F.S.T.11055-10
Vaporizador de isoflurano Supera Anestesia InnovVAP3000
Câmara de indução Supera Anestesia InnovRES644
Pipetas de vidro Pasteur Fisher CientíficoS670505" de comprimento
Pinça Graefe (serrilhada, curva) F.S.T.11052-10
Pinça Graefe (serrilhada, reta)F.S.T.11050-10
Betadine Webster Veterinária07-836-3379
Solução salina estérilFornecimento de veterinários do meio-oeste193.74504.3 NaCl 0,9%, injetável
Aplicador de ponta de algodão Fornecimento de veterinários do meio-oesteNº 001.06220.2
Clipes de ferida Braintree Científico ACS CSPode usar clipes de 7 mm ou 9 mm
Isoflurano Fornecimento de veterinários do meio-oeste193.33161.3
Microscópio de dissecação Leica L2
Cone de nariz de ratos pequenos Supera Anestesia Innov ACC526
Medidor de vazão de oxigênio Supera Anestesia Innov OXY660
Removedor de clipes F.S.T. 12033-00 universal

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