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Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE.
1. Colheita e descelularização renal
- Colha o rim esquerdo com a aorta abdominal e a veia cava inferior.
- Ligue o ureter, a aorta torácica, a veia cava superior e os ramos da aorta abdominal.
- Mantenha o órgão hidratado em PBS de Dulbecco (DPBS) em uma placa de Petri de 10 cm.
- Canule a aorta abdominal e a veia cava inferior com um cateter 23G. Para remover o sangue residual, conecte a cânula com uma bomba peristáltica e lave com DPBS (500 mL) e 16 U/mL de heparina por 90 min a uma taxa de 5 rpm a 37 °C.
- Para descelularizar o rim, perfundir o rim com Triton X-100 a 1% (1 L) por 3 h e, em seguida, com solução de dodecil sulfato de sódio (SDS) a 0,75% (2 L) por 6 h a uma pressão constante de 40 mmHg.
nota: O rim ficará transparente após 8 h.
- Para remover SDS residual, perfundir a amostra com penicilina a 1% em água destilada (6 L) por 18 h (durante a noite) e depois com DPBS estéril (500 mL) e 16 U/mL de heparina por 90 min.