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Gerando Modelo de Carcinoma de Células Renais: Um Protocolo para Desenvolver Modelo Murino de CCR Ortotópico por Implantação Intrarrenal de Células Cancerígenas

30 de abril de 2023

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Murphy, K. A. et al. Um modelo de camundongo singênico de carcinoma de células renais metastático para avaliação quantitativa e longitudinal de terapias pré-clínicas. J. Vis. Exp. (2017)

Neste vídeo, desenvolvemos um modelo ortotópico de carcinoma de células renais em camundongos. Esse modelo resulta em tumores primários reprodutíveis no rim injetado e tumores metastáticos no pulmão, permitindo a avaliação da progressão da doença e do tratamento.

Protocolo

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1. Implantação de células

Para implantar células Renca intrarrenalmente, prepare as células Renca em uma suspensão unicelular a 2 x 106 células/mL em Hank's Balanced Salt Solution (HBSS).

  1. Remova as células Renca aderentes do frasco de cultura de tecidos usando tripsina a 0,25% em HBSS. Após ~ 5 min, adicione RPMI completo ao frasco para neutralizar a tripsina e transfira as células para um tubo de centrífuga para lavagem. Centrifugar as células a 300 g de força centrífuga relativa (rcf x g) durante 5 min a 25 °C.
  2. Transvasar o sobrenadante e ressuspender as células em HBSS. Conte as células usando um hemocitômetro e ajuste o volume com HBSS para produzir 2 x 106 células/mL.
  3. Puxe as células para uma seringa de 1 mL equipada com uma agulha de calibre 18 para evitar tensão de cisalhamento nas células. Substitua a agulha de calibre 18 por uma agulha de calibre 28 antes da injeção das células tumorais. Uma injeção de 0,1 mL fornece 2 x 105 células no rim.

2. Preparação da Área Cirúrgica

  1. Prepare uma área cirúrgica estéril em um gabinete de biossegurança, colocando uma cortina cirúrgica estéril sobre uma almofada de aquecimento. Reúna todos os suprimentos, incluindo fórceps, bisturi, tesoura, colírio, anti-séptico de iodopovidona a 5% e gaze estéril. Autoclave todos os instrumentos antes de usar.
  2. Realize a cirurgia usando uma técnica de ponta asséptica. Reesterilize os instrumentos entre os animais com um esterilizador de contas. Use luvas estéreis, jaleco e máscara facial.

3. Preparação Animal

  1. Anestesiar os camundongos com cetamina / xilazina (87,5 mg / kg e 12,5 mg / kg, respectivamente, i.p.) de acordo com as diretrizes institucionais. Determine a profundidade do anestésico realizando uma pinça no dedo do pé.
  2. Quando o animal for considerado não responsivo, prepare o local da injeção (por exemplo, flanco esquerdo) em camundongos Balb / c arrancando (com os dedos) ou raspando (usando uma tesoura) o pelo.
  3. Mova os camundongos da área de preparação da cirurgia (por exemplo, a gaiola de alojamento) para a área cirúrgica e aplique pomada veterinária nos olhos para evitar o ressecamento. Limpe generosamente o local da incisão preparado com anti-séptico de iodopovidona a 5%.
  4. Injete cloridrato de bupivacaína (0,1 mL de uma solução de 2,5 mg / mL, s.c.) na área onde a incisão será feita como analgesia pré-operatória.
  5. Faça uma única incisão (~1,0 a 1,5 cm) no flanco esquerdo do animal usando um bisturi estéril ou tesoura com cuidado para não penetrar no peritônio. Separe a derme do peritônio com uma tesoura estéril. Enxugue o local da incisão com gaze de algodão estéril para remover qualquer sangue.
  6. Segure o mouse com as duas mãos, usando a mão esquerda para segurar a cabeça e a mão direita para apoiar o flanco.
  7. Identifique o baço através do peritônio e, com um dedo da mão direita, palpe o camundongo por baixo; o rim agora deve ser visível através do peritônio. Mantenha um aperto firme do animal para fornecer tensão no peritônio e no rim.
  8. Peça a uma segunda pessoa que injete as células tumorais (preparadas na seção 1.2) através do peritônio intacto no centro do rim usando uma seringa de 1 mL equipada com uma agulha de calibre 28. Forneça lentamente 0,1 mL (2 x 105) de células. Depois que as células forem injetadas, segure a agulha no lugar por 5 a 10 segundos para reduzir o refluxo das células. É importante observar a necessidade de extrema cautela durante esta etapa, pois a pessoa que injeta as células aproximará a agulha dos dedos da pessoa que segura o mouse.
  9. Remova a agulha e feche a incisão com uma fina camada de adesivo tecidual de cianoacrilato.
  10. Coloque o animal de volta em uma gaiola limpa com uma toalha de papel estéril. Deixe os animais se recuperarem em uma almofada de aquecimento. Não deixe os animais sozinhos durante o período de recuperação. Não devolva os animais às condições normais de alojamento até que estejam na posição vertical e esternal. Siga as orientações institucionais em todos os procedimentos com animais de laboratório.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Pomada oftálmica de lágrimas artificiaisAkornNDC 17478-162-35
Adesivo de tecido Vetbond 3mCBGBIW011019
Solução de Betadine (Povidoniodina, 5%) NDC Produtos Purdue, L.P.Nº 67618-155-32
0,25% de marcaína (injeção de bupivavaine HCl)HospiraTelefone: 0409-1587-50
Almofada de aquecimento raio de sol
Seringas BD309659
gaze aventura908291
CetaminaPhoenix Farmacêutica NDCRolamento 57319-609-02
xilazina Akorn NDCRolamento 59399-111
Sais equilibrados de Hank Sigma-AldrichH2387
tesoura
fórceps
RencaATCCCRL-2947

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Etiquetas

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