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Transfecção baseada em magnetofecção in vitro: uma técnica assistida por campo magnético para entregar plasmídeos em células neuronais primárias de camundongos usando nanopartículas magnéticas

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

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Fonte: Jacquier, A. et al. Modelando a doença de Charcot-Marie-Tooth in vitro pela transfecção de motoneurônios primários de camundongos. J. Vis. Exp. (2019)

Neste vídeo, demonstramos a transfecção guiada magneticamente do DNA do plasmídeo em cultura de células neuronais primárias. A magnetofecção usa um campo magnético externo para guiar a entrega de plasmídeos ligados a nanopartículas magnéticas no citoplasma celular.

Protocolo

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1. Revestimento de Pratos de Poli-ornitina/Laminina (Po/L)

NOTA: Os volumes são adaptados para revestir uma placa de 24 poços.

  1. Se necessário, coloque uma lamínula estéril de 12 mm no poço.
  2. Cubra os alvéolos com 500 μL de solução de poli-L-ornitina a 10 μg/mL dissolvida em água.
  3. Deixe os poços assentarem em temperatura ambiente por 1 h.
  4. Remova a solução de poli-L-ornitina e seque ao ar por 30 min.
  5. Revestir os alvéolos durante a noite a 37 °C com 500 μL de 3 μg/ml de laminina em bicarbonato L-15.
    nota: Os poços podem ser armazenados a 37 °C por 7 dias na incubadora. Para incubações longas, a adição de PBS estéril entre os poços pode ajudar a evitar a evaporação do meio.

2. Cultura de neurônios motores

  1. Dilua os MNs para a densidade apropriada, geralmente 5.000 a 10.000 células em 500 μL de meio de cultura por poço em uma placa de 24 poços.
    nota: A densidade de semeadura é de cerca de 30.000 e 1.500 células para placas de 6 e 96 poços, respectivamente.
  2. Remova a solução de laminina com um P1000.
  3. Transfira imediatamente os MNs diluídos em meio de cultura para as placas de revestimento para evitar a secagem.
  4. Incubar a cultura durante 2 dias a 37 °C.

3. Magnetofecção de neurônios motores

NOTA: Nas etapas a seguir, as quantidades utilizadas destinam-se à transfecção de um poço de uma placa de 24 poços. Consulte o protocolo do fabricante para outro formato.

  1. Para a preparação do DNA, ressuspenda 1 μg de DNA em 50 μL de meio de cultura neuronal e vórtice por 5 s. Aqui, são usados plasmídeos de 9 kb com um promotor CAGGS (pCAGEN) controlando o cDNA do neurofilamento.
  2. Para a preparação do tubo de contas, ressuspenda 1,5 μL de esferas em 50 μL de meio de cultura neuronal.
  3. Adicione a solução de 50 μL à solução de DNA de 50 μL e incube por 20 min à temperatura ambiente (volume total = 100 μL).
  4. Durante esta incubação, retirar 100 μL de meio de cultura do poço que será transfectado.
    NOTA: Coloque a placa magnética na incubadora para aquecê-la a 37 °C.
  5. Transfira 100 μL da mistura de DNA / grânulo para o poço e incube a placa 20–30 min na placa magnética a 37 ° C.

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Divulgações

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Plasmídeo pCAGENAddgene#11160
Meio de cultura de células de neurôniosThermoFisher ScientificA3582901Meio Neurobasal Plus
Poli-DL-OrnitinaSigma-AldrichPág. 8638
LamininaSigma-AldrichL2020
bicarbonato de sódioThermoFisher Scientific25080094
L-15 médioThermoFisher Scientific11415056
PBS sem Ca MgThermoFisher Scientific14190144Sem Mg2+ Ca2+
lamínula redondaNeuVitro, vidro de malhaGG-12-Pré12 milímetros

Reimpressões e permissões

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Etiquetas

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