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Cromatografia em camada delgada de alta eficiência: uma técnica para separação preliminar e quantificação de lipídios de neutrófilos

July 8th, 2025

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Abstract

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Fonte: Brogden, G., et al. Métodos para estudar alterações lipídicas em neutrófilos e a subsequente formação de armadilhas extracelulares de neutrófilos. J. Vis. Exp. (2017).

Este vídeo demonstra uma técnica para a separação preliminar e quantificação de lipídios de neutrófilos derivados do sangue periférico humano. Essa técnica auxilia na avaliação inicial dos analitos alvo antes de prosseguir com a HPLC.

Protocol

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1. Cromatografia em camada delgada de alta eficiência (HPTLC) para semiquantificar a quantidade de vários lipídios, incluindo colesterol, fosfolipídios e esfingomielina

  1. Prepare as quatro soluções de execução e soluções de coloração a seguir.
    1. Solução 1: Misture acetato de etila (26,6%), 1-propanol (26,6%), clorofórmio (26,6%), metanol (26,6%) e cloreto de potássio (9,6%). Prepare o KCl dissolvendo 0,25 g de KCl em 100 mL de água com qualidade de HPLC.
    2. Solução 2: Misture n-hexano (73%), éter dietílico (23%) e ácido cítrico (2%).
    3. Solução 3: 100% n-hexano.
    4. Prepare a solução de coloração misturando água destilada (90 mL) com 7,5 g de sulfato de cobre e, em seguida, adicione 10 mL de ácido fosfórico.
  2. Encher até 5 mm de cada solução numa câmara de vidro separada. Adicione qualquer tipo de papel de filtro para aumentar a velocidade de funcionamento em cada câmara.
  3. Pré-incubar uma placa de vidro HPTLC sílica gel 60 de 20 x 10 cm na primeira solução em funcionamento até que a solução em curso atinja o topo da placa. Em seguida, seque por 10 min a 110 °C.
    nota: Essas placas podem ser armazenadas para uso futuro em papel alumínio e secas por 10 min a 110 °C antes do uso.
  4. Dissolver um sedimento lipídico obtido a partir de neutrófilos derivados do sangue periférico humano em 200 μL de solução de clorofórmio/metanol (1:1) e incubar durante 15 min a 37 °C para dissolver.
  5. Use uma régua e um lápis macio para marcar os pontos de carregamento para o número desejado de amostras, além de pelo menos um padrão. Marque a distância de corrida em aproximadamente 4 cm e 6 cm para a primeira e segunda solução de corrida, respectivamente.
  6. Para carregar as amostras, lave a seringa de 10 μL 3 vezes em clorofórmio/metanol (1:1) antes de carregar cada nova amostra. Carregue 10 μL de cada amostra gota a gota, tentando concentrar a amostra na menor área possível. As amostras devem ser carregadas pelo menos em duplicado.
  7. Colocar a placa verticalmente na primeira câmara com a solução corrente 1 (passo 1.1.1). Certifique-se de que a placa esteja paralela à parede da câmara de vidro para obter uma velocidade de migração uniforme.
  8. Quando a linha de solvente atingir a primeira marca, remova a placa, seque-a e coloque-a na segunda solução. Repita etapas semelhantes para a segunda e para a terceira soluções em execução; deixar a placa na solução até que a frente do solvente atinja o topo da placa, depois retirá-la e secá-la à temperatura dos ovos durante 1 min.
  9. Coloque o prato na solução de sulfato de cobre por 7 s. Remova o prato, seque-o bem e leve ao forno por 7 min a 170 ° C. Espere o prato esfriar.
  10. Usando um software de análise de cromatografia e gel em camada fina, bem como um software de processamento de imagem, escaneie e analise para identificar as bandas resolvidas de lipídios.

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Disclosures

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Não há conflitos de interesse declarados.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1-propanolSigma-AldrichRolamento 33538
Seringa de 10 μLHamilton701 NR 10 μl
Éter dietílicoSigma-Aldrich346136
Acetato de etiloCarl Roth7336.2
Sulfato de cobre (II) pentahidratadoMerck1027805000
clorofórmioCarl Roth7331.1
Software CP ATLASLazarsoftwarealgarismo
metanolCarl Roth7342.1
n-hexanoCarl Roth7339.1
Ácido fosfóricoSigma-AldrichRolamento 30417
Cloreto de potássioMerck49.361.000
Sílica gel HPTLC 60Merck105553

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High Performance Thin Layer ChromatographyLipid SeparationNeutrophil LipidsThin Layer ChromatographyLipid QuantificationHPTLC AnalysisLipid StainingCapillary ActionSolvent MigrationPlate Activation

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