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Artigo de método

Ensaio de Separação de Fase de Proteína: Um Método Optogenético para Separação de Fase de Proteína de Ligação a RNA Mutante em Neurônios Motores Espinhais de Larvas de Peixe-Zebra

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8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Asakawa, K. et al. Transição de fase optogenética de TDP-43 em neurônios motores espinhais de larvas de peixe-zebra. J. Vis. Exp. (2022)

Neste vídeo, descrevemos um ensaio de separação de fases, em que proteínas intracelulares compreendendo regiões intrinsecamente desordenadas fundidas a um domínio de oligomerização fotossensível são induzidas por meio de exposição à luz azul para se autoassociarem em condensados semelhantes a líquidos sem membrana.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo modelos animais foram revisados pelo comitê institucional local de cuidados com animais e pelo conselho de revisão veterinária JoVE

1. Preparação do LED para iluminação de luz azul

  1. Ligue um painel de LED usando o aplicativo associado instalado em um tablet/telefone. Coloque a sonda de um espectrômetro em um poço vazio de um prato de 6 poços e ajuste a luz LED para o comprimento de onda com pico de ~ 456 nm através da aplicação. Coloque o sensor óptico de um medidor de potência óptica no poço vazio e ajuste a potência da luz LED (~0.61 mW/cm2). A configuração da luz LED pode ser salva e pode ser recuperada no aplicativo.
  2. Introduza a configuração do painel de prato/LED na incubadora a 28 °C. Conclua esta etapa antes que a imagem dos peixes comece a 48 hpf.

2. Imagem de larvas de peixe-zebra expressando TDP-43 optogenético

  1. Selecione Tg[mnr2b-hs:opTDP-43h] Tg[mnr2b-hs:EGFP-TDP-43z] peixes duplamente transgênicos pelo menos antes de 47 hpf, com base na fluorescência RFP (opTDP-43h) ou EGFP (EGFP-TDP-43z) na coluna motora espinhal usando o microscópio de epifluorescência equipado com uma lente objetiva Plan-Neofluar 5x/0,15.
  2. Decorionate o Tg [mnr2b-hs: opTDP-43h] Tg [mnr2b-hs: EGFP-TDP-43z] peixe transgênico duplo.
  3. Pré-aqueça a 1% de agarose de baixa temperatura de fusão contendo 250 μg / mL de sal de metanossulfonato de etilo 3-aminobenzoato a 42 ° C.
  4. Anestesie brevemente Tg[mnr2b-hs:opTDP-43h] Tg[mnr2b-hs:EGFP-TDP-43] peixes duplamente transgênicos a 48 hpf em tampão E3 contendo a mesma concentração de tricano.
  5. Coloque uma gota da agarose pré-aquecida de baixa temperatura de fusão a 1% no prato de base de vidro à temperatura ambiente. O diâmetro da gota de agarose em forma de cúpula no prato de vidro é de 8 a 10 mm.
  6. Usando uma pipeta Pasteur, adicione o peixe anestesiado à agarose de baixa temperatura de fusão no prato de base de vidro e, em seguida, misture pipetando algumas vezes. Minimize a quantidade de tampão E3 adicionado à agarose junto com o peixe.
  7. Mantenha o peixe de lado usando uma agulha de seringa durante a solidificação da agarose (normalmente ~ 1 min) para garantir que a medula espinhal esteja em uma posição horizontal apropriada. Após a solidificação, coloque algumas gotas de tampão E3 no peixe montado em agarose em forma de cúpula.
  8. Adquira seções z confocais seriais da medula espinhal por varredura com um microscópio confocal equipado com uma lente objetiva de imersão em água de 20x com a abertura numérica de 1,00, usando uma velocidade de varredura de 4,0 μs por pixel (12 bits por pixel), um tamanho de passo de 1,0 μm por fatia para a objetiva e uma combinação de comprimentos de onda de excitação/emissão: Canal 1) 473/510 nm para EGFP e Canal 2) 559/583 nm para mRFP1.
    nota: A cloaca no lado ventral do peixe está incluída nas regiões de interesse (ROI) como referência, o que ajuda a identificar e comparar os segmentos da coluna vertebral (níveis 16-17) ao longo dos pontos de tempo.
  9. Remova o peixe da agarose quebrando-a cuidadosamente com uma agulha de seringa assim que a imagem estiver concluída. Mantenha a quantidade de tempo que o peixe fica embebido na agarose o mais curto possível, embora a incorporação de agarose por <30 min não afete a viabilidade do peixe.

3. Estimulação luminosa de peixes que expressam opTDP-43h por iluminação de campo de uma luz de diodo emissor de luz azul (LED)

  1. Adicione 7,5 mL de tampão E3 ao poço e coloque o peixe transgênico duplo Tg[mnr2b-hs:opTDP-43h] Tg[mnr2b-hs:EGFP-TDP-43z] com imagem no poço. Coloque o prato de seis poços no painel de LED, mantendo o prato e o painel de LED separados por 5 mm com um espaçador (por ex.ample, com cinco copos de lâmina empilhados).
  2. Ligue a luz LED azul. Mantenha alguns dos peixes transgênicos duplos Tg[mnr2b-hs:opTDP-43h] Tg[mnr2b-hs:EGFP-TDP-43z] em um prato separado de seis poços coberto com papel alumínio quando peixes de controle não iluminados forem necessários (ou seja, em condições escuras).
  3. Após a iluminação (por exemplo, por 24 h a 72 hpf na Figura 1), crie uma imagem da medula espinhal do peixe iluminado repetindo as etapas 2.3 - 2.9.

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Resultados

figure-results-1
Figura 1: Comparações raciométricas de opTDP-43h e EGFP-TDP-43z antes e depois da estimulação luminosa. (A) As ROIs cobrindo os somas de quatro células únicas positivas para mnr2b a 48 e 72 hpf foram desenhadas com base no sinal EGFP-TDP-43z e são mostradas em magenta. As ROIs retangulares (bg) foram usadas para subtrair o sinal de fundo (ROI de fundo). As figuras são adaptadas de As...

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Microscópio confocalOlimpoFV1200
Microscópio de epifluorescênciaZeissAxioimager Z1
Estereomicroscópio de fluorescênciaLeicaMZ16FA
Prato baixo de vidroIWAKIRolamento 3910-035
incubadoraMEECN-25C
Painel de LEDNanoleaf LimitadaKit mais inteligente Nanoleaf AURORA
Lente objetivaOlimpoXLUMPlanFL N 20×/1.00
Lente objetivaZeissPlano-Neofluar 5x/0,15
Medidor de potência ópticaHIOKI3664
Sensor ópticoHIOKIRolamento 9742-10
Prato de seis poçosfalcão353046
Sonda para espectrômetro BLUE-WaveStellerNet Inc.VIS-50
Agulha de seringaTERUMONN-2725R
TricanaSigma-AldrichRolamento A5040
NuSieve GTG AgaroseLONZARolamento 50181

Etiquetas

Ensaio OptogenéticoProteínas de Ligação ao RNAMicroscopia ConfocalExposição à Luz AzulCondensados Sem MembranaMutantes de TDP-43Repórter Fluorescente