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Artigo de método

Western Blotting de célula única para determinar a heterogeneidade celular

1.2K vistas

8 de julho de 2025

Neste artigo

Resumo

Fonte: Wang, L., et al., Quantificação da Atividade Quimiotática de Monócitos In Vivo e Caracterização de Macrófagos Derivados de Monócitos Sanguíneos. J. Vis. Exp. (2019).

O vídeo descreve uma técnica de western blotting de célula única que identifica a composição de células individuais capturadas em um chip de western blotting de célula única em uma suspensão heterogênea. A técnica detecta a intensidade de fluorescência do fluoróforo marcado com um marcador de proteína específico para a célula-alvo.

Protocolo

1. Determinando a composição celular na suspensão celular usando análise de Western Blot de célula única (scWB)

  1. Reidrate o chip scWB antes de usar em 15 mL de tampão de suspensão 1x em uma placa de Petri por pelo menos 10 min em RT.
  2. Adicione 1 mL da suspensão diluída de célula única (10.000-100.000 células/mL) ao chip reidratado. Coloque a superfície no fundo de uma placa de Petri de 10 cm. Certifique-se de que a superfície esteja plana.
  3. Cubra a placa de Petri com uma tampa para evitar o ressecamento e deixe as células assentarem por 5-15 min por um gradiente.
  4. Coloque o chip sob um microscópio de campo claro e inspecione os poços com ampliação de 10x.
    nota: Aproximadamente 15-20% dos micropoços devem ser ocupados por uma única célula, e menos de 2% dos poços devem conter 2 ou mais células.
  5. Incline a placa de Petri de 10 cm que contém o chip em 45 graus.
  6. Lave o chip com o buffer de suspensão 1x para remover as células não capturadas da superfície do chip pipetando suavemente de cima para baixo do chip. Repita 3 vezes.
  7. Prepare o instrumento ocidental de célula única.
  8. Defina o tempo de lise, o tempo de eletroforese e o tempo de captura de UV. Para analisar os macrófagos recrutados recuperados do tampão de gel derivado da membrana basal, use as seguintes configurações: tempo de lise: 0 s; tempo de eletroforese: 160 s; Tempo de captura UV 240 s.
  9. Carregue cuidadosamente o chip na célula de eletroforese do instrumento ocidental de célula única, voltado para o lado do gel. Tenha cuidado para não danificar o lado do gel do chip.
  10. Despeje a lise/tampão de corrida na câmara e cubra completamente todo o chip Western de célula única. Inicie a lise celular.
  11. Execute o instrumento scWB usando a configuração listada em 1.8.
  12. Quando a execução estiver concluída, transfira o chip para uma placa de Petri de 10 cm e lave o chip duas vezes com 1x tampão de lavagem por 10 min em RT.
  13. Prepare diluições de anticorpo primário (anti-vinculina: 1:10; anti-CD45: 1:15, anti-CD11b: 1:20, anti-F4 / 80: 1:10) em um volume total de 80 μL de diluente de anticorpo (misture 8 μL de anticorpo 1 mais 8 μL de anticorpo 2 mais 64 μL de diluente).
  14. Adicione 80 μL da solução de anticorpo primário à câmara de sondagem de anticorpos e abaixe o chip com o lado do gel para baixo para que a solução de anticorpos seja absorvida pelo chip.
  15. Incubar com a solução de anticorpos primários durante 2 h à RT.
  16. Lave o cavaco três vezes por 10 min em 1x tampão de lavagem no shaker.
  17. Lave o chip uma vez por 10 min na água do shaker para dessalinizar o gel.
  18. Preparar uma diluição de 1:20 de anticorpo secundário num volume total de 80 μL (misturar 2 μL de anticorpo secundário mais 78 μL de diluente).
  19. Incubar a pastilha com um anticorpo secundário durante 1 h a RT protegido da luz.
  20. Lave o cavaco três vezes por 10 min com 1x tampão de lavagem no shaker.
  21. Gire o chip usando um girador de slides para remover qualquer tampão de lavagem restante.
  22. Digitalize o chip em um scanner de microarray de laser duplo com resolução de 5 μm no canal espectral do fluoróforo acoplado aos anticorpos secundários.
  23. Analise os dados usando um software específico do scWB.

2. Removendo o chip scWB

  1. Armazene o chip digitalizado em um tampão de lavagem até que esteja pronto para descascar.
  2. Coloque o banho-maria em uma hotte.
  3. Coloque um suporte para tubos de 50 mL no banho-maria com a água apenas 1 cm acima do suporte e ajuste a temperatura da água para 60 °C.
  4. Prepare o tampão de decapagem. Para 1 L de solução tampão de decapagem, dissolver 9,85 g de Tris-HCl (pH 6,8) e 20 g de SDS em 900 mL de água destilada e ajustar o pH. Em seguida, encha com água destilada a 1L. Adicione 0,8% (v/v) de β-mercaptoetanol (β-ME; 14,3 M) imediatamente antes de cada uso.
  5. Após a varredura inicial, coloque o chip em uma placa de Petri de 10 cm antes de descascar.
  6. Para cada chip, pegue 40 mL de tampão de decapagem e adicione 320 μl de β-ME.
    CUIDADO: β-ME é tóxico e perigoso para os seres humanos e para o meio ambiente. O procedimento a seguir deve ser feito em uma capela de exaustão.
  7. Coloque o chip no recipiente e sele-o com parafilme para evitar que a água vaze para dentro do recipiente
  8. Coloque o recipiente dentro do suporte para tubos no banho-maria pré-aquecido.
  9. Incubar por 90 min.
  10. Remova cuidadosamente o chip do recipiente e coloque-o em uma placa de Petri fresca.
  11. Lave brevemente o chip uma vez com 1x tampão de lavagem. Em seguida, adicione 15 mL de 1x tampão de lavagem à placa de Petri.
  12. Lave o chip por 15 min em uma coqueteleira. Repita a etapa de lavagem quatro vezes.
    nota: O chip está pronto para o próximo anticorpo primário (consulte as etapas 1.12 a 1.21)

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Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Placa de Petri de 10 cmGriner Bio-One664 160
10x amortecedor de suspensãode proteínassimplesR101
Placa de Petri de 15 cmfalcão353025
2-MercaptoetanolMP BIOMÉDICOS2194705
5% de tampão de lavagemde proteínassimplesR252
Diluente de anticorposde proteínassimplesNº 042-203
Centrífuga de bancadaBeckman CoulterCentrífuga Microfuge 22R
Albumina de soro bovinoSigma-AldrichA7906-100G
Calceína AMThermoFisherC30991 mL
CD11bNovus BiológicosNB110-89474
MAb de coelho CD45 (D4H7K)Tecnologias de Sinal Celular727987S
CD68/SR-D1 (FA-11)Novus BiológicosNBP2-33337SS
Visão do CelômetroNexcelom
ExibirBd354235100 mL
Tesoura de dissecação
Anticorpo secundário IgG anti-coelho de burro [NL557]Novus BiológicosNL004Conjugado NL 557
Anticorpo secundário anti-IgG (H + L) de burro [DyLight 650]Novus BiológicosNBP1-75655Conjugado DyLight 650
F4/80 (CI-A3-1)Novus BiológicosNB600-404SS
Bloco de calorEffendorf22331Termomisturador
Lysis/buffer de execuçãode proteínassimplesR200
Matriz Matrigel (Fator de Crescimento Reduzido)BdRolamento 35423010 ml
Scanner de microarrayPerkinElmerScanArray Gx
Tubo de microcentrífugaFisher Científico05-408-129
microscópioThermoFisherEvos fl
Milode proteínassimplesOcidental de célula única
agulhaBd30511126 gramas
Parafilme
Câmara de sondagemde proteínassimplesTelefone: 035-020
Proteína CCL2/JE/MCP-1 de camundongo recombinanteR&d479-JE-050
chip scWESTde proteínassimplesC300
shakerBioexpressAgitador orbital de companheiro de gene
Recipiente de chip ocidental de célula únicade proteínassimplesNº 035-118
Girador de slidesContato LabnetC1303-T
Dodecil Sulfato de Sódio (SDS)Fisher CientíficoBP 166-500
seringaBd3096021 mL
Tris-cloridratoFisher CientíficoBP 153-500
pinçade proteínassimplesTelefone: 035-020
Banho-mariaThermoFisher

Etiquetas

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